The experiment was divided into two phases. In phase-I fresh embryos were transferred and in Phase-II frozen embryos were transferred. Embryos were collected by using Dulbecco's phosphate buffered saline. In phase-I total of 65 ova were collected out of 107 ovulation in 18 goats. Recovery of ova was 60.74%, of which 51 (78.46%) was fertilized. Sixteen embryos were transferred to 10 recipient goats and kidding was observed in 6 goats, that produced 10 kids. Thus, 62.50% embryo survival and 60% kidding were achieved in phase-I. In phase-II of the experiment, 17 regular cyclic Black Bengal goats were used. The main purpose was to study the viability of caprine embryos after cryopreservation. In this phase the embryos were collected and frozen using Bio-cool freezers. A two step addition of cryoprotectants (5% glycerol and 10% glycerol) and three-step dilution of cryoprotectants with 1mole (M) sucrose was used. Embryos were preserved for 10 to 45 days. Out of 27 embryos preserved, 18 were recovered after freezing and thawing (37$^{\circ}C$ water bath) with 33.33% embryonic loss. Seventeen frozen and thawed embryos were transferred in 9 recipient goats, out of which kidding was observed in 6 goats and 7 kids were produced, giving a 66.66% kidding and embryo survival of 41.17%. The technique utilized for fresh and frozen embryo transfer can be successfully utilized to produce goats of superior genetic merits. The protocol used for addition of cryoprotectant, freezing, thawing and dilution was found suitable for caprine embryo freezing.
The present study was to assess the in vitro viability and sexing rate of bovine embryos. Blastocysts were harvested on day 7~9 day after insemination(in vitro and in vivo), and the sex of the embryos was examined using the LAMP method. Embryo cell biopsy was carried out in a $80{\mu}l$ drop $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$ free D-PBS and, biopsied embryos viability were evaluated after more 12 h culture in IVMD culture medium. The formation of recovered embryo to expanded and hatching stages had ensued in higher of sexed embryo in vivo than in vitro (100% vs. 89%, p<0.05), and in vitro, the rates of degeneration after sexing were significantly (p<0.05) higher in vitro than in vivo(11% vs. 0.0%). The rates of the predicted sex were female 61% vs. 56%, and male 39% vs. 44% in vivo and in vitro, respectively. The rates of survival following different biopsy methods were seen between punching and bisection method in vivo and in vitro (100% vs. 89% and 100% vs, 78% respectively). Biopsy method by punching was significantly (p<0.05) higher than bisection between produced embryos in vivo and in vitro. The present data indicate that with microblade after punching for embryo sexing results in high incidence of survivability on development after embryo biopsy. It is also suggested that LAMP-based embryo sexing suitable for field applications.
Since the turn of the century, scientists have earnestly sought to develop a single laboratory assay or combination of laboratory assays which accurately predict the fertility of a semen sample. Most of these assays have focused on evaluating physical characteristics of sperm such as motility, viability, acrosomal integrity and morphology. In recent years new approches have been used to assess the functional aspects of a sperm that are needed to reach the oocyte, fertilize it and contribute to successful embryo development. Among these techniques are the ability of sperm to undergo a heparin induced acrosome reaction and in vitro fertilization, and the affinity of sperm to bind heparin binding protein. Intensification of research efforts in the area of control of sperm fertilizing ability should be a high priority, in view of undoubted benifits both to our basic understanding of sperm fertilizing ability and to our ability to modify it for Al industry.
One of the biggest problems involved in transgenic animal production is lack of appropriate market genes. To overcome this problem, we tested whether the genes of SEAP (secreted alkaline phosphatase) and GFP (green fluorescence protein) on our retrovirus vectors can be applicable to the transgenic animal production. The main advantage of these marker genes over other generally mainpulation can be selected without sacrificing viability. The results obtained in this study are summarized as follows: 1. Removal of zona pellucida from the mouse zygotes did not affect embryo developments to blastocysts. 2. Co-culture of zona-free embryos with virus-producing cells for 6 hours also did not affect embryo developments to blastocysts. 3. Among 58 blastocysts developed from the zona-free zygotes co-cultured with the virus-producing cells, SEAP expression was observed from the 6 blastocysts. 4. Expression of the GFP gene was detected from the virus- producing cells but no embryo expressing the gene was counted among 50 blastocysts developed from the zona-free zygotes co-cultured with the virus-producing cells.
Autocrine or paracrine mediators released by the early embryo are implicated in the support of embryonic development. Their mechanisms and optimal embryo density in the medium, however, are uncertain. This study was conducted to establish the optimal embryo density and culture medium volume in mouse parthenogenetic embryo culture. In experiment 1, culture of parthenogenetirally activated oocytes at a concentration of $2{\~}4$ embryos/${\mu}L$ significantly improved development to the blastoryst stage ($72{\%}{\leq}$) compared with culture at the lower ($0.2{\~}1$e mbryos/${\mu}L,\;0\~37.5\%$) and the higher ($5{\~}6$ embryos/${\mu}L,\;30\~53\%$) concentration for 120 h when the oocytes were cultured in a 5 ${\mu}L$ drop under mineral oil In experiment 2, the embryos cultured at a concentration of $2{\~}4$ embryos/${\mu}L$ in a 10 ${\mu}L$ drop ($81.1{\%}$) showed significantly higher blastocyst rates than those in a 5 ${\mu}L$ drop ($68.5{\%}$). This study optimizes in vitro culture condition by modifying embryo density and the volume of culture medium It may give appropriate level of autocrine and/or paracrine factors to enhance viability and subsequent normal development of mouse parthenogenetic embryos in vitro.
본 연구는 체내, 체외수정란 및 배양체계가 세포막투과력 및 GMP vitrification후 생존성에 미치는 영향을 조사하고자 실시하였다. 체내수정란은 6마리 한우를 FSH와 PG $F_{2{\alpha}}$ 에 의한 과배란처리하여 생산하였다. 체외수정란은 난관상피세포 공배양 (OCS) 및 HECM-6 (DCS) 방법으로 생산하였다. 생산된 배반포기 배는 세포력투과력과 GMP vitrification 후 생존성의 조사를 위하여 사용되었다. 세포력투과력은 35$^{\circ}C$ 가온판과 0.5 M sucrose 용액에서 0, 2, 5 및 7분간의 노출시간에 세포질의 “가로 $\times$ 세로”의 직경을 조사하였다. 세포질의 용적은 조사한 직경을 4/3.$\pi$$r^3$ 공식으로 계산하였다. 배반포의 동결보존은 GMP vitrification 방법으로 실시하였으며, 융해 후 0.25와 0.15 M sucrose 용액 및 TCM199에 각각 5분간 세척한 후 TCM199에 24 또는 48시간동안 배양하였다. 체내수정란의 0, 2, 5 및 7분 때의 용적변화(100, 37.1, 34.3 및 31.6%)는 OCS(100, 59.8, 48.9 및 47.9%)와 DCS(100, 57.2, 47.3 및 46.9%) 보다 유의적으로 높게 수축되었다(P<0.05). 또한 체내수정란(93.6%)의 동결융해 후 생존성은 OCS 및 DCS (81.9 및 83.6%) 보다 유의적으로 높았다(P<0.05). 현 배양체계에서 체외수정란의 형태는 체내수정란과 유사하였지만, 세포막투과력 및 응해 후 생존성 등의 질적인 면에서는 큰 차이를 보였다. 결론적으로 세포력 투과력 및 동결융해 후 생존성 등의 질적인 면에서 체내수정란은 OCS 또는 DCS 배양체계에서 생산된 체외수정란보다 우수하였다.
In this study, two epididymal spermatozoa recovery methods in relation to sperm number, motility, viability and acrosome reaction were examined. Seven bulls were castrated and 7 testicles with epididymides were transferred to the laboratoy. Epididymis in each bull was randomly used for flushing and mincing methods with semen extender (Optixcell, IMV, France). The recovered spermatozoa with adjusted sperm concentration to $40{\times}10^6cells/mL$ was diluted with optixcell and cryopreserved. In experiment 1, the difference in the total number of spermatozoa using flushing and mincing methods was insignificant (2570.0 and $2505.2{\times}10^6cells/mL$, respectively). For experiment 2, the percentage of motile spermatozoa and motility parameters between flushing and mincing methods were studied through the use of sperm class analyzer after frozen-thawing. The percentage of total motile sperm between flushing and mincing methods was almost the same with $89.5{\pm}12.8$ and $91.4{\pm}7.9%$, respectively. The same is the case with experiment 3 wherein the viability and acrosomal integrity of frozen-thawed epididymal spermatozoa by flushing and mincing was insignificantly different. The results from the study showed that both flushing and mincing methods can be used for epididymal spermatozoa recovery in bull.
Prediction of semen's fertilizing ability used in artificial insemination (AI) is one of very important factors on pig reproductive performance. In vitro fertilization (IVF) has been used for indirect evaluation of sperm's fertilizing ability and it has been showed as highly correlated index. In swine industry, increasing interest in preservation of boar semen raises questions on the sperm motility from semen used in commercial AI centers. Mitochondria in sperm mid-piece generate the energy to support motility and could be an explanation of impaired fertility. Objective of this study was to suggest usable sperm motility to farms in measuring the effect of sperm motility and sperm abnormality on in vitro production of embryo in which sperm's fertilizing ability can be determined indirectly. Semen samples were provided from local AI center and used within 3 days after collection. Semen samples were divided by 4 different motile groups (>70%; 61~70%; 51~60%; <50%) using CASA (computer-assisted sperm analysis) on the days of IVF. Developmental rate to the blastocyst stage from over 61% motile sperm group showed significantly higher rate than below 60% motile sperm group ($16.5{\pm}0.7{\sim}18.4{\pm}0.8%$ vs $6.3{\pm}0.8{\sim}11.5{\pm}0.7%$, p<0.05). In experiment to determine the relationship between sperm motility and viability and abnormality, over 61% motile sperm groups showed significantly higher viability rate compared to below 60% motile sperm groups ($84.8{\pm}4.0{\sim}88.1{\pm}4.0%$ vs $69.1{\pm}4.0{\sim}74.2{\pm}4.0%$, p<0.05). On the other hand, morphological sperm abnormality showed significantly higher in over 70% motile sperm group ($10.2{\pm}2.2$ vs $16.0{\pm}2.2{\sim}21.0{\pm}2.2%$, p<0.05). In experiment to find the correlation between sperm motility of 4 different motile groups and amount of mitochondria, lower motility group also showed lower level of mitochondria (p<0.05). The mitochondria parameter used in this study showed another possibility to differentiate the sperm motility. Taken together, because below 60% motile semen used in AI reduce the fertility, AI centers should provide the over 60% motile sperm to the farms at the time of AI.
Despite the rapid development of assisted reproductive technologies (ART) in recent years, implantation rates after replacement of embryos into the uterine cavity remains low. Several techniques such as culture conditions based on formulations of human tubal fluid and various ART techniques as GIFT, ZIFT, TET have been adopted in recent years to improve embryo viability in vitro and implantation rates. Also, coculture of human IVF-derived embryos have been used in an effort to increase the number of viable embryos following IVF and to improve synchrony between the developing embryo and the uterine environment. The aim of this study was to evaluate whether the use of co culture with autologous cumulus cells has a significant beneficial effect on the development of embryos in vitro and its relation to the pregnancy rates in 120 patients with previous failed IVF-ET from September, 1995 to January 1998. We obtained the results from which significant improvement in the quality of viable embryos were observed using a coculture system with autologous cumulus cells, but pregnancy rates in this group of patients did not differ from the rate in the standard IVF group during the same period. Our study shows that a simplified short-term coculture system with autologous cumulus cells may help rescue moderate quality embryos to cleave regularly.
To investigate the effect of co-transfer of trophoblastic vesicle (TV) with frozen-thawed in vitro Produced (IVP) bovine embryo on pregnancy rate, IVP blastocysts were transferred to synchronized recipients. Elongated blastocysts were recovered at Day 13 to 15, and dissected more than 4 pieces to removed the embryonic disc. Throphoblastic fragments were cultured for 48 hours to make throphoblastic vesicles (TVs). TVs were cryopreserved in ethylene glycol or vitrification solution and frozen-thawed TVs were co-transferred to recipients with frozen-thawed IVP embryos. 1 The recovery rate of elongated blastocyst on Day 13 to 15 was 22.5% (18/80) and the size of recovered elongated blastocysts was 0.2∼5.0mm. 2. Eighteen elongated blastocysts were dissected into 88 pieces and 61.4% of those pieces were formed to TV (54/88) 3. The viability of frozen-thawed TV in ethylene glycol was higher than in vitrified solution (92.8% vs. 68.8%) 4. The pregnancy rate in co-transfer with frozen-thawed TV and IVP blastocyst was better than transfer only IVP blastocysts (50.0% vs. 23.1%).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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