This study investigated the characterization and functionality of Undaria pinnatifida root (UPT) extracts, degraded using a crude enzyme from Shewanella oneidensis PKA1008. To obtain the optimum degrading conditions, the UPT was mixed with alginate degrading enzymes from S. oneidensis PKA 1008 and was incubated at 30℃ for 0, 3, 6, 12, 24, and 48 h. The alginate degrading ability of these enzymes was then evaluated by measuring the reducing sugar, viscosity, pH and chromaticity. Enzymatic extract at 24 h revealed the highest alginate degrading ability and the lowest pH value. As the incubation time increased, the lightness (L ⁎) also decreased and was measured at its lowest value, 39.84, at 12 hours. The redness and yellowness increased gradually to 10.27 at 6 h and to 63.95 at 3 h, respectively. Moreover, the alginate oligosaccharides exhibited significant anti-inflammatory activity. These results indicate that a crude enzyme from S. oneidensis PKA 1008 can be used to enhance the polysaccharide degradation of UPT and the alginate oligosaccharides may also enhance the anti-inflammatory effect.
To isolate a nonylphenol (NP)-degrading bacterium, we isolated a single colony from the NP-degrading microbial consortium SW-3, which was previously isolated from an aqueous environment. Ten colonies that exhibited different cell morphologies were isolated and the strains were named SW-3-A, -B, -C, -D, -E, -F1, -F2, -G, -H, and -I. The ability of isolates to degrade NP was evaluated by kinetic analysis by the constant of NP degradation rate ($k_1$) and the half-life time of NP degradation ($t_{1/2}$). SW-3-F1, -F2, -G, and -I strains were superior at degrading NP. The $k_1$ and $t_{1/2}$ values of the four strains were sixfold higher and one-sixth lower, respectively, than those of the consortium strain. Additionally, SW-3-F1, -G, and -I strains were tested for their ability to degrade NP during coculture. NP degradation by coculture with a combination of all three strains was inferior to that of culture conducted with single isolates, suggesting that the three strains are antagonistic toward each other during NP degradation.
Three strains capable of degrading a chlorophenol were isolated by selective enrichment from soils contaminated with industrial wastewater. A Pseudomonas solanacearum TCP114 could use 2,4,6-trichlorophenol (TCP) as sole carbon and energy source, while two strains of Pseudomonas testosteroni CPW301 and Arthrobacter ureafaciens CPR706 could use 4-CP. All isolates also grew well on phenol. The degradation of one component by a pure strain was strongly affected by the presence of other compounds in the medium, CPW301 and CPR706 entirely lost the ability to degrade 4-CP and phenol in the presence of TCP. TCP114 also lost the ability to degrade phenol when 4-CP was added to the culture medium. These restrictions on the degradability could be overcome by employing defined mixed cultures (TCP114 and one strain of 4-CP degrading strains). All three components were successfully degraded by defined mixed cultures through their cooperative activities. It was also demonstrated that defined mixed cultures could be immobilized by using calcium alginate for the semi-continuous degradation of the three component mixture. Immobilization could not only accelerate the degradation rate, but also allowed the reuse of the cell mass several times without loss of the cells' degrading capabilities.
The optimal physical factors affecting enzyme production in an airlift fermenter have not been studied so far. Therefore, the physical parameters such as aeration rate, pH, and temperature affecting PLA-degrading enzyme production by Actinomadura keratinilytica strain T16-1 in a 3 l airlift fermenter were investigated. The response surface methodology (RSM) was used to optimize PLA-degrading enzyme production by implementing the central composite design. The optimal conditions for higher production of PLA-degrading enzyme were aeration rate of 0.43 vvm, pH of 6.85, and temperature at $46^{\circ}C$. Under these conditions, the model predicted a PLA-degrading activity of 254 U/ml. Verification of the optimization showed that PLA-degrading enzyme production of 257 U/ml was observed after 3 days cultivation under the optimal conditions in a 3 l airlift fermenter. The production under the optimized condition in the airlift fermenter was higher than un-optimized condition by 1.7 folds and 12 folds with un-optimized medium or condition in shake flasks. This is the first report on the optimization of environmental conditions for improvement of PLA-degrading enzyme production in a 3 l airlift fermenter by using a statistical analysis method. Moreover, the crude PLA-degrading enzyme could be adsorbed to the substrate and degraded PLA powder to produce lactic acid as degradation products. Therefore, this incident indicates that PLA-degrading enzyme produced by Actinomadura keratinilytica NBRC 104111 strain T16-1 has a potential to degrade PLA to lactic acid as a monomer and can be used for the recycle of PLA polymer.
38 strains were isolated in order to utilize lignin degrading ability from soil and compost. A organism having high lignin degrading ability of the isolated strains determined morphologcal and biochemical characteristics. Enrichment technique yielded a lignin degrading bacterium characterized as Pseudomonas sp. LC-2. This strain was able to degrade lignin which are the true representatives of native lignin and transform lignin to a lot of aromatic compounds as HPLC analysis of culture. By polyacrylamide gel analysis, it was determined that peroxidase consisted of three enzymes, with only one, the lignin peroxidase having high activity.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2001.06a
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pp.116-117
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2001
A thermotolerant bacterium, designated as PHS1, was isolated from a hot spring in Pohang, Korea, on the basis of its ability to grow on BTEX as a sole carbon source. We cloned and sequenced the entire BTEX-degrading pathway genes of PHS1 and found that two multicomponent mono-oxygenases together with meta-pathway genes are responsible for the BTEX biodegradation.
A kerosene fungus of Cladosporium resinae NK-1 was examined for its ability to degrade individual n-alkanes and aromatic hydrocarbons by gas chromatography-mass spectrometry, and its organic solvent-tolerance was investigated by making use of the water-organic solvent suspension culture method. It grew on a wide range of solvents of varying hydrophobicities and it was found to have tolerance to various kinds of toxic organic solvents (10%, v/v) such as n-alkanes, cyclohexane, xylene, styrene, and toluene. A hydrocarbon degradation experiment indicated that NK-1 had a greater n-alkane degrading ability compared to that of the other selected strains. C. resinae NK-1, which could utilize 8-16 carbon chain-length n-alkanes of medium chain-length as a carbon source, could not assimilate the shorter chain-length n-alkanes and aromatic hydrocarbons tested so far. The n-alkane degrading enzyme activity was found in the mycelial extract of the organism.
From the soil and river samples, some bacterial strains degrading chlorinated aromatic hydrocarbons were isolated and identified. Of the isolates, seven strains of Pseudomonas sp. harbouring plasmids were selected for their prominent degradative ability to 2-methyl-4-chlorophenoxyacetic acid. By agarose gel electrophoresis and curing experiment it was found that the genes for 2-methyl-4-chlorophenoxyacetic acid degradaiton were encoded on the plasmids in these selected strains. Antobiotic resistance and degradative ability for other herbicides of the strains were tested.
From several sites of petroleum storage basement in South Coasts in Korea, various petroleum degrading bacteria have been isolated and characterized as Pseudomonas fluorescens, Acinetobacter baumanii, Pseudomonas maltophila and Pseudomonas aeruginosa, respectively. They show the ability of petroleum degradation on minimal media which contains petroleum as sole carbon source and loose the ability at high concentration of NaCl as increasing the concentration of NaCl from 0.5% to 6%. It has been confirmed that such bacteria have utilized the simple saturate hydrocarbon; n-decane, n-hexane, n-octane and n-decane because petroleum consists of various kinds of organic compounds. It has been also identified that petroleum degrading bacteria habor the plasmid and show the antibiotic resistance against ampicillin, tetracycline and chloramphenicol. These results strongly suggest that the petroleum degrading gene and antibiotic resistance gene might be located on the high molecular weight plasmid.
Macroorganisms capable of utilizing sodium dodecylbenzenesulfonate(SDBS, soft type) as a sole carbon source were isolated from nature by using SDBS agar plate technique. Iwolated bacteria were examined primarily for biodegradation ability of SDBS, and followed by testing for resistance to several kinds of metal compounds and antibiotics. Among them(152 strains), one strain showed a excellent SDBS-degrading ability with a resistance to amipicillin and rifampicin was selected. This bacterium was identified as Klebsiella sp. and harbored two plasmids of about 4 and 5 kilobases. SDBS-degrading ability was lost when the plasmids were cured by mitomycin C. It was revealed that the degradation of SDBS was controlled by the plasmid DNA encoding genes. The two plasmids were stably maintained in Escherichia coli C600.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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