When DNA double-strand breaks (DSBs) were induced in mammalian cells, many DNA damage response proteins are accumulated at damage sites to form nuclear foci called IR-induced foci. Although the formation of foci has been shown to promote repair efficiency, the structural organization of chromatin in foci remains obscure. BAF53 is an actin-related protein which is required for maintenance of chromosome territory. In this study, we show that the formation of IR-induced foci by $\gamma$-H2AX and 53BP1 were reduced when BAF53 is depleted, while DSB- activated ATM pathway and the phosphorylation of H2AX remains intact after DNA damage in BAF53 knockdown cells. We also found that DSB repair efficiency was largely compromised in BAF53 knockdown cells. These results indicate that BAF53 is critical for formation of foci by $\gamma$-H2AX decorated chromatin at damage sites and the structural organization of chromatin in foci is an important factor to achieve the maximum efficiency of DNA repair.
Dose response of DNA repair synthesis induced by bleomycin was dose-dependent in lower doses, and maximum rate of it at 5 $\\mu$g/ml represents about 15% of total cells analyzed. At higher doses DNA-repair synthesis was reduced and the rate of it remained unchanged even prolonged treatment. Pretreatment with BUdR or IUdR was found to enhance DNA repair synthesis and also to interfere with semiconservative DNA synthesis at higher doses. Time dependence study showed that DNA repair synthesis occurred as long as for 24 hours after removal of bleomycin. These results seem to suggest that bleomycin is not to be an effective chemical in inducing excision repair and that damages induced in DNA by this drug might include not only strand breaks but other types of DNA damage.
The effects of aphidicolin (APC), an inhibitor of DNA polymerase alpha, or 2', 3'-dideoxythymidine 5'-triphosphate (ddTTP), an inhibitor of DNA polymerase beta, on the repair of DNA damage induced by ethyl methanesulfonate (EMS) or bleomycin (BLM) were investigated in Chinese hamster ovary (CHO)-K1 cells. Three assays were employed in this study: unscheduled DNA synthesis, alkaline elution and alkaline sucrose gradient sedimentation. It was shown that APC or ddTTP inhibited DNA induced by EMS, and thus, the post-treatment with APC or ddTTP following EMS treatment was resulted in the more amount of unscheduled DNA synthesis, and the more accumulation of DNA single-stand breaks than the cells post-incubated without APC or ddTTP. While, in the BLM induced DNA repair, only ddTTP inhibited DNA repair induced by BLM. And thus, the groups post-incubated with or without APC after BLM treatment had the same value in the amount of unscheduled DNA synthesis and of DNA single-strand breaks, while post-treatment with ddTTP was resulted in the increased amount of unscheduled DNA synthesis and the increased DNA sin -strand breaks than the group without ddTTP. These results suggested that both of DNA polymerase $\alpha$ and $\beta$ participated in the repair of DNA damage induced by EMS, but in BLM-induced DNA repair, polymerase $\beta$ participated.ipated.
Seventeen transformation-deficient mutants of streptococcus pneumoniae, which are defective in competence induction (com), DNA uptake(ent) of recombination(rec), were investigated to determine sensitivity to ethylmethane sulfonate(EMS), methylmethane sulfonate(MMS), UV and mitomycin C. In ethylmethane sulfonate assay, the viability of most $com^-, \; rec^-\; and ent^-$ mutants was decreased about 2-10 times and the viability of ent-9 and ent-13 mutant was decreased about 33 and 25 times, respectively. On the other hand only half of the transformation-deficient mutants tested was sensitive to methylmethane sulfonate about 2 times and ent-12 mutant was sensitive to 2.0% MMS about 8 times. After UV and mitomycin C treatment, most of the mutants are not sensitive to UV and mitomycin C, although the viability of some transformation-deficient mutants was decreased slightly. Especially none of the com mutants were sensitive to DNA damage suggesting that competence is not involved in DNA repair. Also DNA uptake and recombination gane might be related to DNA repair function.
UV-induced DNA damage causes cell killing and mutations leading to carcinogenesis. In normal human cells, UV damage such as cyclobutane pyrimidine dimers (CPDs) and primidine-prymidone (6-4) photoproducts are mainly repaired by nucleotide excision repair mechanism. The molecular processes have been well characterized recently. To know the influence of mitochondrial genome on the nucleotide excision repair mechanism against CPDs, we comparatively examined the production of CPDs by UVC irradiation and their repair kinetics in human cells completely lacking mitochondrial DNA (mtDNA) and the parental HeLa S cells. Whole DNA extracted from the cells exposed to UVC was treated with T4-endonuclease V to break the phosphodiester bond adjacent to CPDs. The DNA was electrophoresed in a denaturing agarose gel, which was visualized by ethidium bromide staining. The relative amount of CPDs was determined by image analysis using NIH Image software. MtDNA- less (rho-O) cells were apparently more sensitive to UVC than HeLa S cells, while the level of induction of CPDs in rho-O and HeLa cells was comparable. The repair of CPDs was less efficient in rho-O cells compared with HeLa cells. The residual amount of CPDs after 24-h repair was larger in rho-O cells than in HeLa cells where more than 90 % of CPDs were repaired by then. The non-repaired CPDs would lead to apoptosis in rho-O cells. These results suggest that mitochondrial genome may contribute to some ATP-dependent steps in nucletide excision repair by supplying sufficient ATP which is generated through a respiratory chain in mitochondria.
The effect of novobiocin (NOV), and inhibitor of topoisomerase II, on ethyl methanesulfonate (EMS)-or bleomycin (BLM)-induced DNA repair synthesis was examined during the cell cycle of Chinese hamster ovary (CHO)-K1 cells. Three assays were employed in this study: cell survival, alkaline elution and unscheduled DNA synthesis. EMS was effective at killing CHO cells in G1 phase, wheras BLM preferentially killed cells in G2 and S phases. EMS induced the much more amount of DNA damage in G1 phase, while BLM induced in G2 phase than the other phases. The both of pre- and post-treatment with BOV inhibitied EMS- or BLM-induced DNA repair synthesis in G1 and G2 phases, and pretreatment with NOV inhibited more effectively than the post-treated group. These results suggested that CHO cells exhibited a differential sensitivity to cell lethality and DNA damage in relation to cell cycle according to used chemical agents, and that DNA topoisomerase II participated in an initial stage of DNA repair.
The effect of 3-aminobenzamide (3AB), an inhibitor of poly (ADP-ribose) polymerase, on ethyl methanesulfonate (EMS)-or bleomycin (BLM)-induced DNA repair synthesis and chromosome aberrations was examined during the cell cycle of Chinese hamster ovary (CHO)-K$_1$ cells. The synchronized cells were obtained by using thymidine double block method and mitotic selection method. Three assays were employed in this study: unscheduled DNA synthesis, alkaline elution and chromosome aberrations. 3AB alone did not induce DNA repair and chromosome aberrations in all phases. The post-treatment with 3AB inhibited DNA repair synthesis induced by EMS or BLM in G$_2$ phase, whereas 3AB did not affect chromosome aberrations induced by EMS or BLM in all phases. These results suggest that 3AB aggravates the cell cycle disturbance which occur after DNA damage, and leads to an accumulation of cells at G$_2$ phase, and inhibits DNA repair synthesis, while the effect 3AB on chromosome aberrations may need reevaluated.
The cells of metazoans respond to DNA damage by either arresting their cell cycle in order to repair the DNA, or by undergoing apoptosis. This response is highly conserved across species, and many of the genes involved in this DNA damage response have been shown to be inactivated in human cancers. This suggests the importance of DNA damage response with regard to the prevention of cancer. The DNA damage checkpoint responses vary greatly depending on the developmental context, cell type, gene expression profile, and the degree and nature of the DNA lesions. More valuable information can be obtained from studies utilizing whole organisms in which the molecular basis of development has been well established, such as Drosophila. Since the discovery of the Drosophila p53 orthologue, various aspects of DNA damage responses have been studied in Drosophila. In this review, I will summarize the current knowledge on the DNA damage checkpoint response in Drosophila. With the ease of genetic, cellular, and cytological approaches, Drosophila will become an increasingly valuable model organism for the study of mechanisms inherent to cancer formation associated with defects in the DNA damage pathway.
In this study, we investigated the protective effects of Ulva lactuca methanol extracts against ultraviolet B (UVB)-induced DNA damage in HaCaT cells. First, the contents of general and antioxidative nutrient contents of Ulva lactuca were measured. The moisture, carbohydrate, crude protein, crude fat and ash were 14.01%, 44.80%, 23.19%, 3.10% and 14.90%, respectively. Magnesium that acts as DNA repair enzyme cofactor was the most abundant mineral followed by Ca, P and Fe. The total phenolic and anthocyanoside contents of Ulva lactuca were 2.69 mg/g and 0.13 mg/g, respectively. Cells treated with Ulva lactuca methanol extracts for 24 hours post UVB exposure increased cell viability in a concentration-dependent manner compared to the non-treated control. Also, Ulva lactuca methanol extracts decreased the levels of UVB-induced DNA damage such as cyclobutane pyrimidine dimer and DNA damage response (DDR) proteins such as p-p53 and p21. These results suggest that Ulva lactuca methanol extracts comprising physiological active substances such as Mg, polyphenols and anthocyanosides promote DNA repair by regulating genes related with DDR.
DNA repair means a collection of processes that a cell identifies and corrects damage to genome sequence. The DNA repair processes are important because a genome would not be able to maintain its essential cellular functions without the processes. In this research, we make some gene regulatory networks of DNA repair in S. cerevisiae to know how each gene interacts with others. Two approaches are adapted to make the networks; Bayesian Network and ARACNE. After construction of gene regulatory networks based on the two approaches, the two networks are compared to each other to predict which genes have important roles in the DNA repair processes by finding conserved interactions and looking for hubs. In addition, each interaction between genes in the networks is validated with interaction information in S. cerevisiae genome database to support the meaning of predicted interactions in the networks.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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