In this paper, a rapid and reliable gene-targeted species-specific polymerase chain reaction (PCR) technique based on a two-step process was established to identify bifidobacteria in dairy products. The first step was the PCR assay for genus Bifidobacterium with genus specific primers followed by the second step, which identified the species level with species-specific primer mixtures. Ten specific primer pairs, designed from nucleotide sequences of the 16-23S rRNA region, were developed for the Bifidobacterium species including B. angulatum, B. animalis, B. bifidum, B. breve, B. catenulatum, B. infantis, B. longum, B. minimum, B. subtile, and B. thermophilum. This technique was applied to the identification of Bifidobacterium species isolated from 6 probiotic products, and four different Bifidobacterium spp. (B. bifidum, B. longum, B. infantis, and B. breve) were identified. The findings indicated that the 16S-23S rDNA gene-targeted species-specific PCR technique is a simple and reliable method for identification of bifidobacteria in probiotic products. PCR combined with Denaturing Gradient Gel Electrophoresis (DGGE) for identification of the bifidobacteria was also evaluated and compared with the gene-targeted species-specific technique. Results indicated that for fermented milk products consistency was found for both species-specific PCR and PCR-DGGE in detecting species. However, in some lyophilized products, the bands corresponding to these species were not visualized in the DGGE profile but the specific PCR gave a positive result.
To verify the dominance of microorganisms in wastewater biological treatment, PCR-DGGE (denaturing gradient gel electrophoresis) was performed as a supplementary support method for screening of the dominant microorganisms from activated sludge. Results suggest that the dominant microorganisms in activated sludge are primarily responsible for strengthening its effectiveness as a biological treatment system, followed by the non-main dominant microorganisms, whereas the non-dominant microorganisms showed no effects. The degree of microbial abundance present on the profile of PCR-DGGE was in line with the treatment efficiency of augmented activated sludge with isolated cultures, suggesting that PCR-DGGE can be used as an effective supplementary method for verifying culturable dominant microorganisms in activated sludge of coking wastewater.
This study employed two PCR-based 16S rDNA approaches, amplified rDNA restriction analysis (ARDRA) and denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE), to characterize the bacterial community structure in groundwater. Samples were collected from groundwater for the use by private residences, as well as for industrial and agricultural purposes, in Ansan City. Each PCR product was obtained by PCR with eubacteria 16S rDNA and variable V3 region specific primer sets. After amplification, the 16S rDNA PCR products were digested with 4-base site specific restriction endonucleases, and the restriction pattern analyzed. The genetic diversity and similarity of the groundwater bacterial community was analyzed by eubacteria universal primer sets for the amplification of variable V3 regions of the bacterial 16S rDNA. The result of the bacterial community analysis, by ARDRA and DGGE, revealed the same pattern. The highest diversity was found in groundwater from site G1, which was used in residences. In the DGGE profile, a high intensity band was sequenced, and revealed to be Pseudomonas sp. strain P51.
Soil microbial community analysis of farmland soil sprayed with lye in order to use fertilizer in Nigeria was performed. As a control, two kinds of soils not sprayed with lye, located in Eungo and Lagos with general practice in agriculture was selected. Soil sprayed with lye was pH 8.25 through alkalization reaction, while the other soil samples were pH 6.22 and 5.94. Substrate utilization and species diversity index of soil sprayed with lye were low than that of the other soils with the analysis of Biolog ecoplate. As a result of principal component analysis, the relationship between three samples was low. Microbial community analysis was performed by DGGE and most of them were soil uncultured bacterium. Especially, Uncultured Acidobacteria and Uncultured Methylocystis sp., which had been isolated from the rhizosphere of soybean grown in that site were discovered in the soil sprayed with lye.
Two culture-independent methods, namely ribosomal DNA libraries and denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE), were adopted to examine the microbial community of a Malaysian light crude oil. In this study, both 16S and 18S rDNAs were PCR-amplified from bulk DNA of crude oil samples, cloned, and sequenced. Analyses of restriction fragment length polymorphism (RFLP) and phylogenetics clustered the 16S and 18S rDNA sequences into seven and six groups, respectively. The ribosomal DNA sequences obtained showed sequence similarity between 90 to 100% to those available in the GenBank database. The closest relatives documented for the 16S rDNAs include member species of Thermoincola and Rhodopseudomonas, whereas the closest fungal relatives include Acremonium, Ceriporiopsis, Xeromyces, Lecythophora, and Candida. Others were affiliated to uncultured bacteria and uncultured ascomycete. The 16S rDNA library demonstrated predomination by a single uncultured bacterial type by >80% relative abundance. The predomination was confirmed by DGGE analysis.
Kim, Yeong-Jin;Cho, Hyo-Jin;Yu, Sun-Nyoung;Kim, Kwang-Youn;Kim, Hyeung-Rak;Ahn, Soon-Cheol
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.40
no.6
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pp.356-361
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2007
Recently, the development of various culture-independent identification techniques for environmental microbes has greatly enhanced our knowledge of microbial diversity. In particular, denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) of 16S rDNA fragments, generated using the polymerase chain reaction (PCR) is frequently used to examine the diversity of environmental bacterial populations. This method consists of direct extraction of the environmental DNA, amplification of the 200-600 bp 16S rDNA fragments with universal primers, and separation of the fragments according to their melting point on a denaturing gradient gel. In this study, we investigated the seaside microbial community in coastal areas of Busan, Korea, using culture-independent techniques. First, marine genomic DNA was extracted from seawater samples collected at Songjeong, Gwangahn, and Songdo Beaches. Then, PCR was used to amplify the bacterial 16S rDNA using universal primers, and DGGE was used to separate the amplified 500 bp 16S rDNA fragments. Finally, the tested 16S rDNA genes were further analyzed by sequencing. Based on these experiments, we found that DGGE analysis clearly showed variation among the regional groups. It can be used to monitor rapid changes in the bacterial diversity of various environments. In addition, the sequence analysis indicated the existence of many unculturable bacteria, in addition to Arcobacter, Pseudoaltermonas, and Vibrio species.
The bacterial community structure of two marine sponges, Spirastrella abata and Cinachyrella sp. collected from Jeju Island, in April 2009, was analyzed by 16S rDNA-denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE). DGGE banding patterns indicated 8 and 7 bands for Spirastrella abata and Cinachyrella sp., respectively. Comparative sequence analysis of variable DGGE bands revealed from 92% to 100% similarity to the known published sequences. The bacterial groups associated with Spirastrella abata were Alphaproteobacteria and Deltaproteobacteria. The bacterial community of Cinachyrella sp. consisted of Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, and Actinobacteria. Alphaproteobacteria was common and predominant in both the sponge species. Deltaproteobacteria was found only in Spirastrella abata while Actinobacteria and Gammaproteobacteria were found only in Cinachyrella sp. The results revealed that though the common bacterial group was found in both the sponges, the bacterial community profiles differed between the two sponge species obtained from the same geographical location.
The consumption of fresh-cut agricultural materials is increasing due to increased public interest in health and the increase of single-person households. Most fresh-cut agricultural materials can be eaten without heating, thus easily exposing the consumer to food-borne pathogens. As a result, food-borne diseases are increasing worldwide. In the analysis of food-borne pathogens, it is important to detect the strains, but this is time consuming and laborious. Alternative detection methods that have been introduced, include polymerase chain reaction-denaturing gradient gel electrophoresis (PCR-DGGE), which is performed without prior culturing. Samples of fresh-cut agricultural materials, such as vegetables, were analyzed by the culture-based method. In 129 samples, non-pathogenic Escherichia coli (3.9%), Bacillus cereus (31.8%), Clostridium perfringens (5.4%), Yersinia enterocolitica (0.8%), and enterohemorrhagic E. coli (0.8%) were detected. Eight samples contaminated with bacteria were randomly selected, further analyzed by PCR-DGGE, and compared with the culture-based method. Two cases detected non-pathogenic E. coli by PCR-DGGE only, despite a lack of detection by the culture method. It was supposed there was possibility of sample loss during its 10-fold dilution for appropriate cultivation. In the detection of high-risk food-borne pathogens, it was found that the detection limit was lower in PCR-DGGE than in the culture-based method (10 CFU/g). This suggests that PCR-DGGE can be alternatively used to detect strains. On the other hand, low-risk food-borne pathogens seem to have higher detection limits in PCR-DGGE. Consequentially, this study contributes to the improvement of food-borne pathogen detection and the prevention of its related-diseases in fresh-cut agricultural materials.
Soil microbes are important integral components of soil ecosystem which have significant and diverse role in organic matter decomposition, nitrogen cycling, and nitrogen fixation. In this study an effective denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) method was employed for paddy soil microbial diversity survey. For optimum paddy soil microbial DNA extraction, different methods such as Lysis buffer, skim milk bead, sodium phosphate buffer, Epicentre Soil Master DNA extraction kit (Epicentre, USA) and Mo Bio Power Soil DNA kit (MO BIO, USA) methods were utilized. Among all the method, using Mo Bio Power Soil kit was most effective. DGGE analysis of Bacteria was carried out at 6% polyacylamide gel and 45-60% denaturing gradient in the optimal conditions. Whereas DGGE analysis of fungi was done at 6% polyacrylamide gel and 45-80% denaturing gradient in the optimal conditions. By applying the above assay, it was found that variation within the microbial community of paddy soil occurs by a factor of time. DGGE assay used in this study through for a variety of soil microbial analysis suggests the potential use of this method.
The aim of this study is to examine feeding habits of the Korean water deer(Hydropotes inermis argyropus) from its rumen contents using a PCR-DGGE method. For this study, rumen contents were collected from water deer causalities by natural death or road-kill in two different sites(Cheorwon, Gangwon province and the Eastern part of Jeonnam province). DNA was extracted from rumen contents of a total of 44 individuals. Two primers, rbcLZ1aF(GC) and rbcL19bR, were used for PCR amplifications of ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase large subunit (rbcL) gene. Among 44 samples, twenty-nine samples were successfully amplified by PCRs. The 29 PCR products of partial rbcL gene were applied for PCR-DGGE. Totally, six families of plants were detected from the diet analyses. Five families of plants were found in Cheorwon, Gangwon province, but only three families of plants were found in the Eastern part of Jeonnam province. The PCR-DGGE method will provide us with a potential tool to study feeding habits of ungulates including water deer, even though our results failed to identify the prey plants at the level of species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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