Journal of the Korean institute of surface engineering
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v.41
no.2
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pp.69-75
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2008
Electrochemical behaviors of surface modified and MC3T3-E1 cell cultured Ti-30Ta alloys have been investigated using various electrochemical methods. The Ti alloys containing Ta were melted by using a vacuum furnace and then homogenized for 6 hrs at $1000^{\circ}C$. MC3T3-E1 cell culture was performed with MC3T3-E1 mouse osteoblasts for 2 days. The microstructures and corrosion resistance were measured using FE-SEM, XRD, EIS and potentiodynamic test in artificial saliva solution at $36.5{\pm}1^{\circ}C$. Ti-Ta alloy showed the martensite structure of ${\alpha}+{\beta}$ phase and micro-structure was changed from lamellar structure to needle-like structure as Ta content increased. Corrosion resistance increased as Ta content increased. Corrosion resistance of cell cultured Ti-Ta alloy increased predominantly in compared with non cell cultured Ti- Ta alloy due to inhibition of the dissolution of metal ion by covered cell. $R_p$ value of MC3T3-E1 cell cultured Ti-40 Ta alloy showed $1.60{\times}10^6{\Omega}cm^2$ which was higher than those of other Ti alloy. Polarization resistance of cell-cultured Ti-Ta alloy increased in compared with non-cell cultured Ti alloy.
Purpose: Zinc (Zn) is an essential trace element for bone mineralization and osteoblast function. We examined the effects of Zn deficiency on osteoblast differentiation and mineralization in MC3T3-E1 cells. Methods: Osteoblastic MC3T3-E1 cells were cultured at concentration of 1 to $15{\mu}M$$ZnCl_2$ (Zn- or Zn+) for 5, 15 and 25 days up to the calcification period. Extracellular matrix mineralization was detected by staining Ca and P deposits using Alizarin Red and von Kossa stain respectively, and alkaline phosphatase (ALP) activity was detected by ALP staining and colorimetric method. Results: Extracellular matrix mineralization was decreased in Zn deficiency over 5, 15, and 25 days. Similarly, staining of ALP activity as the sign of an osteoblast differentiation, was also decreased by Zn deficiency over the same period. Interestingly, the gene expression of bone-related markers (ALP, PTHR; parathyroid hormone receptor, OPN; osteopontin, OC; osteocalcin and COLI; collagen type I), and bone-specific transcription factor Runx2 were downregulated by Zn deficiency for 5 or 15 days, however, this was restored at 25 days. Conclusion: Our data suggests that Zn deficiency inhibits osteoblast differentiation by retarding bone marker gene expression and also inhibits bone mineralization by decreasing Ca/P deposition as well as ALP activity.
Journal of the Korean institute of surface engineering
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v.42
no.5
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pp.203-207
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2009
Interaction between human osteoblast (hFOB 1.19) and CrN films was conducted in vitro. CrN films were produced by cathodic arc plasma deposition. The surface was characterized by atomic force microscopy (AFM). CrN films, glass substrates and TiN films were cultured with human osteoblasts for 48 and 72 hours. Actin stress fiber patterns and cell adhesion of osteoblasts were found less organized and weak on CrN films compared to those on the glass substrates and the TiN films. Human osteoblasts also showed less proliferation and less distributed microtubule on CrN films compared to those on glass substrates and TiN films. Focal contact adhesion was not observed in the cells cultured on CrN films, whereas focal contact adhesion was observed well in the cells cultured on glass substrates and TiN films. As a result, the CrN film is a potential candidate as a surface coating to be used for implantable devices which requires minimal cellular adhesion.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.36
no.1
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pp.7-15
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2010
Complex human tissues harbor stem cells and precursor cells, which are responsible for tissue development or repair. Recently, dental tissues such as dental pulp, periodontal ligament (PDL), dental follicle have been identified as easily accessible sources of undifferentiated cells. These tissues contain mesenchymal stem cells that can be differentiate into bone, cartilage, fat or muscle by exposing them to specific growth conditions. In this study, the authors procured the stem cell from pulp, PDL, and dental follicle and differentiate them into osteoblast and examine the bone induction capacity. Dental pulp stem cell (DPSC), periodontal ligament stem cell (PDLSC), and dental follicle precursor cell (DFPC) were obtained from human 3rd molar and cultured. Each cell was analyzed for presence of stem cell by fluorescence activated cell sorter (FACs) against CD44, CD105 and CD34, CD45. Each stem cell was cultured, expanded and grown in an osteogenic culture medium to allow formation of a layer of extracellular bone matrix. Osteogenic pathway was checked by alizarin red staining, alkaline phosphatase (ALP) activity test and RT-PCR for ALP and osteocalcin (OCN) gene expression. According to results from FACs, mesenchymal stem cell existed in pulp, PDL, and dental follicle. As culturing with bone differentiation medium, stem cells were differentiated to osteoblast like cell. Compare with stem cell from pulp, PDL and dental follicle-originated stem cell has more osteogenic effect and it was assumed that the character of donor cell was able to affect on differential potency of stem cell. From this article, we are able to verify the pulp, PDL, and dental follicle from extracted tooth, and these can be a source of osteoblast and stem cell for tissue engineering.
Proceedings of the Korean Fiber Society Conference
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2003.10a
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pp.41-42
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2003
Osteoblasts (MC3T3-E1) were cultured on polysaccharide type polyelectrolyte complex (PEC). The growth of the MC3T3-E1 on the PEC with carbxyl group (c-type) was slightly suppressed and exhibited aggregation morphology. On the other hand, cell growth on the PEC with sulfate group (s-type) was enhanced and the cell exhibited spreading form. Differentiation markers of osteoblast (ALPase activity, calcification, expression of osteocalsin) were enhanced and localized around cell aggregates on c-type PECs. These results suggest that PEC has the ability to control osteoblast proliferation and differentiation.
Seo, Hyun-Ju;Jeong, Jin Boo;Cho, Young-Eun;Kwun, In-Sook
Journal of Nutrition and Health
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v.53
no.4
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pp.347-355
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2020
Purpose: Zinc is known to be associated with osteoblast proliferation and differentiation. Osterix as zinc-finger transcription factor is also related to osteoblast differentiation and bone formation. In the present study, we aimed to investigate whether zinc modulates osterix gene and protein expression in osteoblastic MC3T3-E1 cells. Methods: MC3T3-E1 cells were cultured in zinc-dependent concentrations (0, 0.5, 1, 5, or 15 µM Zn), along with osteogenic control (normal osteogenic medium) for 1 and 3 days. The gene and protein expression levels of osterix were analyzed by real-time reverse transcription polymerase chain reaction and Western blotting, respectively. Results: Zinc increased osteoblast proliferation in a concentration-dependent manner at day 1 and 3. Similarly, zinc increased the activity of osteoblast marker enzyme alkaline phosphatase in cells and media in a zinc concentration-dependent manner. Moreover, our results showed that the pattern of osterix gene expression by zinc was down-regulated within the low levels of zinc treatments (0.5-1 µM) at day 1, but it was up-regulated after extended culture period at day 3. Osterix protein expression by zinc showed the similar pattern of gene expression, which down-regulated by low zinc levels at day 1 and up-regulated back at day 3 as the early stage of osteoblast differentiation. Conclusion: Our results suggest that zinc modulates osterix gene and protein expression in osteoblasts, particularly in low level of zinc at early stage of osteoblast differentiation period.
It is the aim of this study to investigate the effects of sodium fluoride and sodium orthovanadate upon the proliferation and activity of the osteoblast (MC3T3-E1 cells). MC3T3-E1 cells were cultured in $\alpha-MEM$ containing $10\%$ FBS and various concentration of sodium fluoride and sodium orthovanadate was appended to serum free media. DNA synthesis was examined through the $[^3H]$ thymidine incorporation into DNA. Collagen synthesis was examined through the $[^3H]$ proline incorporation into collagenase digestible protein and noncollagen protein. The following results were drawn; 1. Sodium fluoride stimulated the DNA synthesis of osteoblast significantly in dose-dependent manner within the concentration from $2{\mu}M$ to $10{\mu}M$ (P < 0.005). 2. Sodium orthovanadate stimulated the DNA synthesis of osteoblast significantly in dose-dependent manner within the concentration from $2{\mu}M\;to\;8{\mu}M$, however showed diminution at $10{\mu}M$ (P < 0.001). 3. Sodium fluoride and sodium orthovanadate stimulated the percent collagen synthesis of osteoblast significantly in dose-dependent manner within the concentration from $5{\mu}M$ to $10{\mu}M$ (P < 0.001). 4. Sodium fluoride and sodium orthovanadate stimulated the noncollagen synthesis of osteoblast significantly in dose-dependent manner within the concentration from $5{\mu}M\;to\;10{\mu}M$ (P < 0.001). In conclusion, sodium fluoride and sodium orthovanadate stimulate the proliferation and activity of osteoblast by stimulation of DNA synthesis and collagen and noncollagen synthesis in osteoblast.
Osteoblasts from alveolar bone may have an important role in the bone regeneration for periodontium, but their culture and characterization are not determined yet. The purpose of this study was to investigate the biological characteristics of primary explant cultured osteoblasts(PECO) from alveolar bone. Osteoblasts were isolated and cultured from alveolar socket of extracted tooth in children. To compare the characteristics, osteoblasts and gingival fibroblasts were cultured with DMEM at $37^{\circ}C$, 5% $CO_2$, l00% humidity incubator, and human fetal osteoblasts cell line(hFOB1) were cultured with DMEM at $34^{\circ}C$, 5%, $CO_2$ 100% humidity incubator. To characterize the isolated bone cells, morphologic change, cell proliferation and differentiation were measured. Morphology of PECO was small round body or cuboidal shape on inverted microscope and was similar with hFOB1. PECO became polygonal shape with stellate and had an amorphous shape at 9th passage in culture. PECO had significantly higher activity than that of gingival fibroblasts and hFOB1 in alkaline phosphatase activity. The expression of osteocalcin and bone sialoprotein in PECO was notably increased when compared with hFOB1 and gingival fibroblasts. These result indicated that PECO from alveolar bone in children has an obvious characteristics of osteoblast, maybe applied for the regeneration of bone.
Chicken calvarial bone is known to contain various cell types, but their exact composition is unknown. By characterizing the chicken calvarial bone biochemically, it can be used to study biochemical, histochemical actions of bone cells in general. Calvaria of 18-day-old white leg horn embryo was aseptically dissected and bone cell populations were isolated by sequential enzymatic digestion. Histochemical study for osteoclast-like bone cell. population was performed with tartrate resistant acid phosphatase(TRAP) stain and for osteoblast-like bone cell population, alkaline phosphatase(ALP) stain was performed. Biochemical study for osteoblast-like bone cell population was performed using alkaline phosphatase(ALP) assay. Following conclusions were obtained from this study. 1. TRAP positive multi and mononuclear cells were mostly observed in group I and II, indicating that osteoclast-like bone cell population is mostly found in these groups. 2. All the cultured groups showed almost equal ALP activities and were positive for ALP stain, indicating that osteoblast-like bone cell population is evenly dispersed in all culture groups. 3. Experimental group treated with $1,25(OH)_{2}D_3$ showed increase in ALP activity in contrast to the control group, confirming previous studies that $1,25(OH)_{2}D_3$ increases ALP activities in in vitro bone cultures. 4. Results from von Kossa's stain indicated that in vitro bone formation had occured after 3 weeks of culture with beta-glycero phosphate.
Statement of problem. The effects of surface roughness have not or insufficiently been analyzed on earlier events such as cell adhesion though cell behavior most germane to implant performance is cell adhesion. Purpose. The purpose of this study was to evaluate cell adhesion of osteoblast-like cells (MG63) onto three types of titanium disks with varying roughness using the Elisa assay. Materials and methods. Representative disks from each group (SLA, HA, machined) were subjected to surface analysis and surface roughness was measured by the optical interferometer (Accura 2000, Intekplus Co., Seoul, Korea). Following this, MG63 cells were cultured on the titanium disks and released. Cell adhesion measurements using the Elisa assay were performed specifically at three points: after 24, 48, and 72 hours of culture. Results. Among the 3 types of surface analyzed, the SLA surface was the roughest with a Ra value of $1.114{\mu}m$ followed by HA coated surface and machined surface, consecutively. The optical density values for the SLA surface group was significantly higher than that of the machined and HA coated surface groups following 24 and 48 hours of culture. The cell culture on HA coated surface showed significantly higher values compared to the machined surface following 24, 48 and 72 hours of culture. Conclusion. The results suggest that surface treatment of titanium surfaces enhanced cell adhesion of human osteoblast-like cells (MG63).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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