The studies were carried out to investigate the effects of bisection method and with and without-zona pellucida of embryos on in vitro developmental rate bisected embryos by micromanipulator, micropipette and pipetting. The ovaries were obtained from slaughtered Korean native cows. The follicular oocytes were cultured in TCM-199 mediurn containing 10 IU /ml의 PMSG(Sigma, USA), 10 IU /ml의 hCG, 1$\mu$g /ml의 $\beta$-estradiol(Sigma, USA) and 10% FCS for 24~48 hrs in incubator with 5% $CO_2$ in air at 38.5$^{\circ}C$ and then, matured oocytes were again cultured for 12~ 18 hrs with motile capacitated sperm by preincubation of heparin. Bisected embryos cultured for 1~5 days in 20% FCS + TCM-199 medium. Survival rate was defined as developmental rate on in vitro culture or FDA-test. The results are summarized as follows :1. The survival rates of bisected bovine embryos by micromanipulator and micropipett were 29.2% and 19.1%, respectively. The rates of non-bisection embryos(46.7%) were significantly higher than those of bisection embryos. 2. The in vitro developmental rates of bisected bovine embryos by micromanipulator, micropipett and pipetting method were 32.4%, 19.4% and 25.6%, respectively.3. The in vitro developmental rates of with and without-zona pellucida of bisected bovine embryos by raicromanipulator were 30.8% and 25.0%, respectively. The rates of nonbisection embryos(53.1%) were significantly higher than those of bisection embryos.
Fahrudin, Mokhamad;Otoi, Takeshige;Karja, Ni Wayan Kurniani;Murakami, Masako;Suzuki, Tatsuyuki
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제14권8호
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pp.1057-1061
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2001
In this study we explored the possibility of performing nuclear transfer in the domestic cat and assessed the ability of different culture media to support in vitro development of reconstructed cat embryos. Donor somatic cells were derived from cultured cumulus cells or explants of oviduct tissue, and recipient cytoplasts from in vitro matured oocytes. A higher percentage of cleavage (84.6% and 86.5%) and development to the morula stage (35.9% and 44.2%) was found when reconstructed embryos receiving cumulus or oviduct cells were cultured in MK1 medium, compared with those cultured in CR1aa (58.7% and 72.5%, 13.8% and 13.6%, respectively). There was no significant difference between MK1 and CR1aa media with respect to the proportion developing to the blastocyst stage (15.4% and 17.3% vs 6.8% and 8.6%, respectively, p>0.05). There was no significant effect (p>0.05) of donor cell type (cumulus and oviduct cells) on the rates of fusion (65.0% and 52.5%), cleavage (84.6% and 86.5%), development to the morula (35.9% and 44.2%), and blastocyst (15.4% and 17.3%) stages when reconstructed embryos were cultured in MK1 medium. Similar results were found for the reconstructed embryos cultured in CR1aa medium. These results show that culture medium has a significant impact on the early development of reconstructed cat embryos, whereas donor cell type does not have a significant effect.
Early development of bovine oocytes fertilized in vitro in the medium with caffeine and heparin was examined in different culture systems. When the oocytes were transferred into culture medium 8 h after insemination, 12%(7/60) of penetrated oocytes cleaved to 4-cell stage 24 h after insemination. The proportions of oocytes cleaved to 80to 16-cell stage 48 h after insemination had also a to be higher in oocytes transferred into culture medium 8 h (29%) than 16 h(10%) or 24 h(4%) after insemination. 52% of the 4-cell embryos developed to morula and blastocyst stages when they were co-cultured with oviductal epithelia, whereas only 5% of embryos cultured without the epithelial cells(P<0.001). In another experiment, embryos were co-cultured with ampulla, isthmus or utero-tubal junction of oviducts. There are no significant differences in the proportions of embryos developed to morula and blastocyst stage.
Effects of ochratoxin A (OTA) on embryo development were studied in cultured whole embryos from 9.5 day gestation rat for 48 h. OTA (more than $0.5{\mu}g/ml$) induced microcephaly in the cultured rat whole embryos. Protein and DNA content, and DNA synthesis were significantly inhibited by OTA. We next examined whether the microcephaly seen in cultured whole embryo partially results from inhibition of differentiation of embryonic midbrain cells. Embryonic midbrain cells were extracted from 12 day gestation rat embryos, and cultured for 96 hr. OTA ibhibited cell differentiation about 50% over control. We also tested whether OTA-induced embryotoxicity would be associated with oxidative damages. We measured the ${\gamma}$-glutamyltranspeptidase (${\gamma}$-GT) and glutathione peroxidase (GPX) activities, and glutathione (GSH) content in both cultured whole embryos and embryonic midbrain cells. OTA decreased GSH content, whereas slightly increased ${\gamma}$-GT activity, but GPX activity was not significantly changed. These results show that OTA caused the microcephaly and its effect may be partially due to the inhibition of cell differentiation of embryonic midbrain cells, but the role of oxidative damages is not clear in embryotoxicity.
This study was carried out to investigate on the survival rates and in vitro developmental rates of bisected bovine embryos by micromanipulator and micropipette. Bisected embryos were cultured for 1∼5 days in 20% FCS+TCM-199 medium. Survival rate and in vitro developmental rate were defined as development rate on in vitro culture or FDA-test. The results are summarized as follows ; 1. The survival rates of intact or free zona pellucida of bisected embryos were 30.3 and 25.0%, respectively. And the survival rates of bisected embryos by micromanipulator and micropipette were 33.3 and 26.7%, respectively. The survival rate of bisected embryos was significantly lower than that of non-bisection embryos(65.0%). 2. The survival rates of bisection embryos in cultured for 12, 24, 48, 72 hrs with 20% FCS+TCM-199 medium were 40.0, 30.0, 23.3 and 13.3%, respectively. 3. The in vitro developmental rates of intact of free zona pellucida of bisected embryos by micromainipulator and micropipettes were 33.3 and 26.7%, respectively. The survival rate of bisection embryos was significantly lower than that of non-bisection embryos(45.0%).
The effects of in vitro maturation and sperm treatment condition on the in vitro fertilization (IVF) and developmental capacity of bovine oocytes were investigated and the development of embryos was compared under the 2 different co-culture system, with GC or BOEC. The cultured embryo to 16 cell or morula wre transferred into recipients or frozen by 2 different freezing method. The results obtained were summarized as follows; 1. In vitro maturation rates of vovine follicular oocytes cultrued in TCM199 with 10% FCS or ECS were 64.0% and 72.7%, but the case of addition of 10% FCS or ECS to TCM199 co-cultured with granulosa cells were 81.3% and 84.0%, respectively. IVM rate of three TCM199 added to granulosa cells was higher than that of media without granulosa cells. 2. When bovine follicular oocytes were matured in TCM199 with 10% FCS and GC and then fertilized in vitro by sperm treated with caffeine, embryo developments of bovine oocytes co-cultured with BOEC were 38.4% and 51.4%, respectively. But those of bovine oocytes co-cultured with GC were 52.2% by sperm treated with caffeine-heparin. 3. Cleavage rates of bovine oocytes cultured with 10% FCS alone and fertilized in vitro by sperm treated with caffeine-heparin was 33.0%. 4. When bovine follicular oocytes were matured in TCM199 with 10% FCS and GC, embryo developments of bovine ooctyes co-cultured with BOEC of GC were 46.0% and 50.2%, respectively. 5. When bovine follicular oocytes were matured in TCM199 with 10% ECS and GC, embryo developments co-cultured with BOEC or GC were 45.2% and 51.4%, respectively. 6. When Korean Native cow's follicular oocytes matured in TCM199 with 10% FCS and GC, embryo developed co-cultured with BOEC or GC were 45.2% and 51.4%, respectively. 6. When Korean Native cow's follicular oocytes matured in TCM199 with 10% FCS and GC, embryo developments of the bovine oocyte co-cultured with BOEC and GC were 41.8% and 60.1%. But with FCS 10% those of the bovine oocytes co-cultured with BOEC and GC were 42.0% and 48.4%, respectively. 7. When Holstein's follicular oocytes were matured in TCM199 with 10% ECS and GC, embryo developments fo the bovine oocytes co-cultured with BOEC and GC were 50.0% and 57.7%, but with ECS 10% those of the bovine oocytes co-cultured with BOEC and GC were 52.2% and 56.5%, respectively. 8. The viability of frozen-thawed embryos ranged from 60~80% and those of frozen-thawed embryos from vitrification was lower than that from conventional metiod. 9. The selected fresh embryos were transferred nonsurgically to 7 recipients but did not result in pregnancy.
In mammalian development, the embryo which is in the process of compaction, involves a progressive flattening of blastomeres against each other with the consequence that the embryo assumes a spherical shape. This stage happens in the first differentiation. The present study was aimed to examine the involvement of other metal ions in compaction by treating with various divalent cations in the absence of $Ca^{++}$. When 8-cell embryos were cultured in $Ca^{++}$-free medium for 24hrs, they developed to 16-cell stage but did not compaction, and degenerated after 48hrs of culture. Embryos were cultured in $Ca^{++}$-free medium for 24hrs and then transferred to the control medium showed the normal compaction afterwards. When 8-cell embryos were cultured in the presence of $Ni^{++}$, known as a $Ca^{++}$ inhibitor, they cleaved to 16-cell stage but did not compact in the absence of $Ca^{++}$. On the other hand, embryos cultured in the media containing both $Ca^{++}$ and $Ni^{++}$ developed normally so that they underwent compaction during culture for 48hrs. However, they failed to hatch during further 24hrs in the same medium, indicationg that $Ni^{++}$ may exert some harmful effects. Embryos grow in the control medium that contained $Ca^{++}$ but not $Ni^{++}$, developed to the hatched blastocysts. The treatment with $Cd^{++}$$10^{-1}$,$10^{-2}{\mu}M$, $Mn^{++}$ or $Ba^{++}$ 10,100, $1000{\mu}M$ in $Ca^{++}$-free medium, respectively, inhibited compaction and embryonic degeneration began as in $Ca^{++}$-free medium. When 3, 5, 10mM of $Sr^{++}$, known as a substitute for $Ca^{++}$ in cell, was added to $Ca^{++}$-free medium, respectively, compaction was induced unlike the above metal ions. Embryos were cultured in $Sr^{++}$ developed to blastocysts, but failed to hatch after 72hrs and degenrated. On the other hand, when embryos were cultured in 3, 5, 10mM of $Sr^{++}$ but in $Ca^{++}$-free medium for 24hrs respectively and then transferred to the control, they showed the similiar development as that in the control.
The purpose of this study was to investigate the effects of developmental stage and equilibration time on survival of rabbit embryos following freezing by vitrification. Adult New Zealand White female rabbits were superovulated with PMSG and hCG. The 8-cell stage embryos were collected from 40 to 45 hours after hCG injection by flushing oviducts with Dulbecco's phosphated buffered saline and in vitro cultured in TCM-199 containing 10% fetal calf serum(FCS). Each embryos developed in vitro to 16-cell, compact morula and blastocyst was cryopreserved and cultured following thawing to examine their developmental potential to expanded blastocyst stage in vitro. The frozen-thawed-cultured embryos were stained with Hoechst 33342, and their nuclei were counted using a fluorescence microscope. On the toxicity test of EFS solution as cryopreservation, the survival rates of 8-cell stage embryos was decreased in reverse to increasing of exposure time over 5 minutes. The post-thaw survival rates of embryos on equilibration times was significantly(P<0.05) higher for 2 min. than for 5 or 10 minutes. From morula to blastocyst of rabbit embryos was more suitable than 8-cell stage for cryopreservation by vitrification. The higher post-thaw survival rate of embryos can be achieved by keeping the cryoprotectant at $4^{\circ}C$ than at $20^{\circ}C$. The mean number of nuclei per embryo following freezing by vitrification and in vitro culture to expanded blastocyst at compacted morula and blastcyst was not significantly differ from fresh blastocyst.
The study was conducted to investigate on in vitro developmental rates of bisected bovine embryos co-culture in 10% FCS+TCM-199 media containing hormones, oviductal epithelial cells and cumulus cells 0 to 7 days after bisection. In vitro developmental rates was defined as development rates on in vitro culture or FDA-test. The results are summarized as follows : 1. In vitro developmental rates of bisected bovine embryos co-cultured in 10% FCS+TCM-199 media containing PMSG+hCG, PMSG+$\beta$-estradiol, hCG+$\beta$-estradiol, PMSG, hCG 0 to 3 days and 4 to 7 days were 16.7~30.0% and 11.1~25.0%, respectively. In vitro developmental rates of bisected embryos co-cultured in 10% FCS+TCM-199 media containing hormones significantly higher than that of non co-culture. 2. In vitro developmental rates of bisected bovine embryos co-cultured 10% FCS+TCM-199 media containing oviductal epithelial cells 0 to 3 days and 4 to 7 days were 25.0% and 22.2%, respectively.
Objective: The study was performed to compare the survival rate and the development of day 2 mouse embryos which had freezing procedures done. Methods: We used three different vitrification solutions (EFS, VS14, DPS) and a ultrarapid freezing solution (UFS) for cryopreservation of day 2 mouse embryo. Results: We tested toxicity by exposing embryos to vitirification solutions and a ultrarapid freezing solution. The survival rates are 100%, 97.8%, 95.6% and 100% (EFS, VS14, DPS and UFS). After cultured for 96 hours, hatching rates of each group are 93.5% (no freezing), 95.6% (EFS), 86.4% (VS14), 93.0% (DPS), and 93.0% (UFS). There is no significant differences among groups. The survival rates after thawing cryopreserved embryos are 80.2%, 91.7%, 69.5%, 0% and 91.8% (slow freezing, EFS, VS14, DPS and UFS). Also cultured for 96 hours, the hatching rates are 93.5% (no freezing), 84.1% (slow freezing), 93.9% (EFS), 48.5% (VS14) and 70.1% (UFS). Conclusion: The survival rates of vitrification in EFS solution and ultrarapid freezing are higher than slow freezing (p<0.05). The hatching rate of vitrification in EFS solution cultured for 96 hours is highest, so vitrification of day 2 mouse embryos in EFS solution considered as more effective for cryopreservation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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