The present study was conducted to evaluate whether vitrification could be used for ovarian tissue preservation. The important issue here is that the vitrification is very simple, easy, and economical compared to the conventional cryopreserving method that using automatic freezing instrument. Human ovarian cortical tissues were cryopreserved by vitrification with 5.5 M ethylene glycol and 1.0 M sucrose as cryoprotectant. Three points of temperature ($4^{\circ}C$, room temperature, and $37^{\circ}C$) and two points of duration (5 or 10 minutes) for cryoprotectant treatment were examined to determine the best condition for vitrification of the human ovarian cortical tissues. After thawing, viability of the isolated primordial follicles was examined by dye-exclusion method. Histological appearance of tissues before and after the cryopreservation was evaluated. There was no toxic effect of the 5.5 M ethylene glycol on the primordial follicles. However, when the tissues were treated with cryoprotectant at $37^{\circ}C$ for 10 minutes and exposed to liquid nitrogen, it seems likely that there is certain deleterious effects on the viability of the primordial follicles. The highest viability of the primordial follicles was obtained with the treatment of cryoprotectant at room temperature for 10 minutes. Follicles and oocytes survived after freezing and thawing had the similar normal shapes as was seen in the specimens before cryopreservation. It would be useful to apply vitrification in establishing ovarian tissue banking for clinical purposes.
The use of hormonal stimulation in human in vitro fertilization and embryo transfer (IVF-ET) leads to increased production of embryos for ET. So to avoid high pregnancies and to allow conception in future, unstimulated cycles, cryopreservation of spare embryos is desirable. One of the improvement of cryopreservation methods is vitrification. We cryopreserved mouse day 3 embryos by vitrification using the three different vitrification solution (EFS40, VS11 and VS3a). EFS40 solution is consisted of 40% (v/v) ethylene glycol, Ficol170 30% (w/v) and 0.5M sucrose and VS11 is 6.0M ethylene glycol and 1.8M glycerol. And VS3a is 6.5M glycerol and 6% (w/v) BSA (bovine serum albumin). First we tested the toxicity of three vitrification solution by exposure to these solution during 3 min. After washing by thawing solution, the survival rates of each groups are 95.5%, 90.9% and 84.4% (EFS40, VS11 and VS3a). High percentages of them developed to expanded blastocyst and hatching embryos in culture 48hrs 94.2%, 97.7%, 100% and 97.4% (no treatment group, EFS40, VS11 and VS3a). So there is no significant differences among the each group. Second, after thawing of vitirfied embryos, the survival rates of each groups are 96.8% (slow freeze), 94.1% (EFS40), 85.5% (VS11) and 80.0% (VS3a, P vs. no freeze or EFS40 is 0.01). Vitrified embryos exhibited a high rate of development in vitro after 48hrs culture. The percentages of each group to blastocyst and hatching embryos are 88.7% (no freeze), 91.8% (slow freeze), 93.4% (EFS40), 87.7% (VS11) and 73.0% (VS3a, P vs. other group is 0.01). The results suggest that there is no significant differences in exposure of various vitrification solution and day 3 mouse embryos can be vitrified in solution EFS40 and VS11 by simple procedure.
The purpose of this study was to compare the efficiency of slow freezing with that of vitrification method for the cryopreservation of human embryos. Human embryos were derived from in vitro fertilization (IVF) or intracytoplasmic sperm injection (ICSI) and the mixed solution of propanedial (1.5, 1.0, 0.5M PROH) and sucrose (0.1M), ethylene glycol (7.5, 15%), dimethyl sulfoxide (7.5, 15% DMSO), sucrose (0.5, 1.0M) and SPS (Serum Protein Substitute) was used for a cryoprotectant for slow freezing and vitrification solution, respectively. Rates of recovery after thawing, morphological normality, post-thaw viability, arrest, morphological abnormality and preimplantation development were compared between two protocols. After freezing-thawing, recovery and survial rate of slow freezing was (88.6% and 73.4%), whereas vitrification was (99.2% and 96.2%) (p<0.05). The arrest rate of slow freezing was significantly lower compared with those of vitrification(8.7% vs 29.9%) (p<0.05). Preimplantation development to the 2-cell (83.8% vs 67.7%), 4-cell (69.0% vs 47.2%) and 8-cell (62.4% vs 37.8%) stages 24, 48 and 72 h after thawing, respectively, were higher in the slow freezing than the vitrification. After slow freezing and vitrification of human embryo at 2-8cell stage, the rate of recovery rate, survival rate and partial damage rate were 92.0% vs 100%, 80.4% vs 96.2% and 52.2% vs 19.0%, respectively. And partial damage rate was significantly lower than those of slow freezing method (p<0.05). These results demonstrate that a slow freezing using PROH is more efficient than a vitrification for cryopreserving the human zygotes, although the vitrification yielded better recovery, survival and partial damage of frozen-thawed 2-8 cell stage embryos than slow freezing method.
Kim, Jin-Woo;Kim, Tae-Yi;Kim, Ye-mi;Pang, Eun-Kyoung;Kim, Sun-Jong
Journal of Korean Dental Science
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제8권2호
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pp.57-64
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2015
Purpose: This study was conducted to determine cell viability and differentiation capability of human periodontal ligament (PDL) cells and to elucidate the effects of cryopreservation on the activity of human third molar PDL cells by comparing PDL cells with and without cryopreservation. Materials and Methods: Human PDL fibroblasts obtained from immature third molars were cultured and divided into two groups. The experimental group was cryopreserved with a slow freezing rate of $0.5^{\circ}C/min$ from $4^{\circ}C$ to $-35^{\circ}C$ followed by plunging in liquid nitrogen at $-196^{\circ}C$ and cultured after fast thawing. The control group was cultured without cryopreservation. Cell viability, growth capacity and morphology were evaluated in both groups. Bivariate statistics were used to compare 2 groups and linear mixed model analysis was used to investigate the growth trends difference over time. Result: Cell viability and growth capacity were not significantly different between the 2 groups (P>0.05). Cultured cell of both groups showed fibroblast-like in appearance, and there were no significant differences in morphology between 2 groups. The mixed model analysis revealed no significant difference of growth capacity between 2 groups over time (${\beta}=-0.0009$; P=0.138). Conclusion: This study demonstrates that cryopreservation under control does not affect the biological properties of PDL cells, supporting the feasibility of autotransplantation of cryopreserved impacted third molars.
감성돔 (Acanthopagrus schlegeli) 정자의 냉동 보존시 정자의 생리활성과 보존효과를 비교하기 위하여, 순환여과 사육시스템에서 사육한 전장 $25.9{\pm}1.7$ cm, 체중$292.8{\pm}53.7$ g의 성어로부터 얻은 정액을 재료로 하여 희석액별, 동해방지제별 해동후 정자의 활성, 생존율 및 알에 대한 수정능력을 평가하였다. 희석액별 냉동보존에서 해동정자의 생존율은 3% sodium citrate에서 $80{\pm}1.4$%로 가장 높았으나, 수정률은 5.4% glucose에서 $63.4{\pm}4.4$%로 가장 높았다. 동해방지제별 냉동보존에서 해동정자의 수정률은 5~15% glycerol을 동해방지제로 사용하였을 때, 50.1~69.4%로 DMSO 보다 나은 효과를 보였다. 감성돔 정자의 냉동보존을 위한 적정 희석액과 동해방지제는 5% glucose와 5% glycerol이었다. 냉동하지 않은 감성돔 정자의 머리는 구형으로 직경 $1.5{\pm}0.1$${\mu}$m, 길이 $1.3{\pm}0.1$${\mu}$m였으며, 치밀한 핵질로 채워져 있었다. 편모는 전형적인 9+2 구조를 나타냈다. 그러나 냉동후 해동시킨 정자중에서는 염색질의 과립화, 세포막의 이탈에 의한 그 용적이 커지는 구조변화를 보였다.
Marine microalgae are a key diet component in finfish and shellfish aquaculture. Cryopreservation of the microalgae is suggested by many other studies as the best method for long-term storage. To test cryopreservation efficacy, 19 taxas of marine microalgal species were examined. In the first experiment we compared dimethylsulfoxide ($Me_2SO$) and glycerol, which are most widely used as cryoprotectant agents (CPAs). The cryopreservation comprised two freezing procedures. Firstly, the samples containing the CPAs were kept at $4^{\circ}C$ for 10 min before being plunged into liquid nitrogen ($-196^{\circ}C$). Secondly, samples containing CPAs were pre-cooled ($-1^{\circ}C$$min^{-1}$ to $-80^{\circ}C$ before being plunged into liquid nitrogen. Most of the species were successfully cryopreserved using $Me_2SO$, whereas the Prasinophyceae (T. striata and T. suecica) were successfully cryopreserved using glycerol. In general, the cooling method had no influence on the survival of the microalgae except in the case of the Tetraselmis species. In the second experiment, the cultured solution was divided before cryopreservation into concentrated and non-concentrated groups to identify the effect of cell density during cryopreservation. After 12 months of storage, the samples were again divided into centrifugation and non-centrifugation groups to learn the effect of $Me_2SO$ on the culture. Viability and growth of the microalgae were not influenced by cell density or the centrifugal removal of the $Me_2SO$ after thawing.
Kim, Joon-Chul;Li, Yuhua;Lee, Sunwoo;Yi, Young-Joo;Park, Chang-Sik;Woo, Sun-Hee
Molecules and Cells
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제26권6호
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pp.558-565
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2008
Although the fertilizing ability of spermatozoa is greatly reduced after freezing, complete understanding of alterations induced by cryopreservation has not been elucidated. The present study evaluates the effects of cryopreservation on the $Ca^{2+}$ handling of boar spermatozoa using several sperm activators. Intracellular $Ca^{2+}$ signals from single spermatozoa were measured using confocal $Ca^{2+}$ imaging of unfrozen samples and of other spermatozoa after having been frozen. Elevation of the external $K^{2+}$ concentration elicited a three times larger $Ca^{2+}$ increase in fresh spermatozoa than in cryopreserved spermatozoa. Caffeine elicited $Ca^{2+}$ transients with some oscillations in the fresh spermatozoa, but not in the thawed spermatozoa. Depletion of the $Ca^{2+}$ store with thapsigargin induced a rapid rise in $Ca^{2+}$ in the control but generated a smaller increase of $Ca^{2+}$ after thawing. Exposure to progesterone induced a biphasic rise of the $Ca^{2+}$ level in the fresh spermatozoa only. Sperm viability was reduced by cryopreservation. Resting $Ca^{2+}$ levels in fresh and cryopreserved spermatozoa were similar. Longer incubation (2.5 h) of thawed spermatozoa partly recovered the $Ca^{2+}$ response to the interventions. These results suggest that cryopreservation reduces the responsiveness of spermatozoa to depolarization, modulators of the internal $Ca^{2+}$ store and progesterone in terms of the $Ca^{2+}$ signal, thus providing a possible mechanism for reduced fertility observed in cryopreserved boar spermatozoa.
Cryopreservation is able to store the surplus pre-embryos for freezing and furthermore thawing and transfer in a subsequent cycle. Cryopreserving cells which are maintaining their viability are the very complex process. This study has been carried out in order to find the effects of cryopreservation steps, freezing media and embryonic stages on the rates of viability and development of cryopreserved mouse embryos. Female ICR mice ($6{\sim}8$ weeks old) were induced to superovulate by sequential intraperitoneal injection of 5 IU PMSG and 5 IU hCG 48h apart. Mouse embryos were collected according to its developmental stage after the injection of hCG. Embryos were cryopreserved not only by cryoprotectant step (1 step${\sim}$4 step) but also in a variety of media (HTF, IVF medium, D-PBS) and cell stage. The results were as follows: There is no clear advantage in these freezing media of rapid method, but 4 cell and 8 cell of slow method (2, 3, 4 step) have advantage in D-PBS. The development of embryos according to cell stage become greater in 8 cell stage. In the treatment steps of cryopreservation, the development of embryo to blastocyst was similar among rapid method, but the development of 4 cell and 8 cell embryos to blastocyst according to slow method was better than rapid method.
본 연구에서 생쥐 초기 배아를 이용하여 동결 보존된 배아의 생존율 또는 발달율에 영향을 미치는 요인들의 상관관계를 알아본 결과, 배아의 발달 단계에 따른 동결 - 해동 후 생존율에 있어서는 2세포기 배아가 4~8세포기 배아보다 유의하게 높았으나(p<0.01), 배 발달율에 있어서는 4~8세포기 배아가 유의하게(p<0.01), 높아 생존율과 배 발달율과는 상관관계가 없는 것으로 사료된다. 또한, 동결 보호제에 따른 배아의 생존율에 있어서는 2, 4~8세포기 배아 모두 DMSO에서 유의하게 높았으나(p<0.01), 배 발달율에 있어서는 EG가 DMSO에 비해 더 유의하게 높은 성적을 나타내어(p<0.01, p<0.05) 동해로 인한 상해가 적은 것으로 생각되어 2, 4~8세포기 배아에서 EG가 더 효과적인 동결 보호제로 사료되며, 동결 프로그램으로는 완만 동결 - 급속 해동법이 더 우수한 프로그램으로 보인다.
This study was carried out to efficiently use the ultrarapid freezing method in the cryopreservation of mouse ova. For this, the effects of dehydration method, oval vigour and $0^{\circ}C$ controlling method on post-thawing viability were investigated. Fresh mouse ova were dehydrated in mPBS with 3.5M DMSO and /or 0.25M sucrose, and directly immersed in L$N_2$ for ultrarapidly freezing. The frozen ova were thawed at 37$^{\circ}C$, rehydrated in mPBS with 0.25M sucrose, and then repeatedly washed in HAM's Fl0 before evaluating the morphological normality of frozen-thawed ova. The results obtained showed that there was difference between treatments in a experiment. 1) The post-thawing viability of ova dehydrated in multi-step (48.4$\pm$13.8%) was higher than that of ova in two-step (40.9$\pm$14.0%). 2) The post-thawing viability of fertilized ova (87$\pm$14.0%) was significantly(p<0.0l) higher than that of unfertilized ova (5.4$\pm$5.4%). 3) The post-thawing viability of ova dehydrated and rehydrated using a cooling machine (95.8$\pm$4.2%) was significantly(p<0.05) higher than that on ice(84.1$\pm$9.9). In conclusion, in order to efficiently cryopreserve ova in vitro with ultrarapidly freezing method, highly viable embryos should be selected, heavy osmotic shock to the dehydrating ova should be avoided, and embryos in high osmotic condition were dehydrated and rehydrated in a constantly low temperature.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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