Adao, Davin Edric V.;Herrera, Charles Michael T.;Galarion, Luiza H.;Bolo, Nicole R.;Carlos, Rhodora S.;Carlos, Enrique T.;Carlos, Sixto S.;Rivera, Windell L.
Korean Journal of Veterinary Research
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v.57
no.2
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pp.79-88
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2017
The study of canine vector-borne diseases in the Philippines started in the 1970s but only gained interest in the past decade. Characterization of such diseases in the Philippines remains incomplete, thus, it is necessary to obtain additional information on the prevalence and diversity of canine tick-borne diseases in the country. In this study, blood samples were obtained at two veterinary clinics in Metro Manila, Philippines from 114 dogs suspected of having canine tick-borne pathogens. Polymerase chain reaction (PCR) was performed on whole blood DNA extracts followed by sequencing, and the following pathogens were detected: Hepatozoon (H.) canis (5.26%), Babesia (B.) vogeli (5.26%), Ehrlichia (E.) canis (4.39%), and Anaplasma platys (3.51%). Additionally, a set of multiplex PCR primers were developed to detect H. canis, Babesia spp. (B. canis and B. vogeli), and E. canis in canine blood. Multiplex and conventional single-reaction PCR results for the 114 dog blood samples were similar, except for one H. canis sample. Multiplex PCR is, therefore, a useful tool in screening infected dogs in veterinary clinics. This study's results, together with those of previous studies in the country, show that canine vector-borne pathogens are an emerging veterinary concern in the Philippines.
A new reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) method for the Potato leafroll virus (PLRV) was developed and compared with conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) to address its advantages over RTPCR. RT-LAMP primers were designed from the open reading frame 3 (ORF3) sequence of PLRV. The RT-LAMP reactions were conducted without or with a set of loop primers. By real-time monitoring using Turbimeter, the RT-LAMP (with loop primers) detects PLRV in less than 30 min, compared to 120 min of RT-PCR. By adding fluorescent reagent during the reaction, final products of the RT-LAMP were fluorescently visualized under UV light or could be differentiated by naked-eye inspection under normal light. The RT-LAMP was extremely sensitive, about 2000-fold more sensitive than RT-PCR. This study presents great potential of the RT-LAMP for diagnosis and PLRV epidemiology because RT-LAMP method is speedy, sensitive, inexpensive, and convenient.
Kyung Ok Lee;Sung Hoi Hong;Moom Ju Oh;Kyung In Kim;Min Jung Kim
Biomedical Science Letters
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v.2
no.2
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pp.223-229
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1996
HLA-B27 gene, one of the HLA-class I molecule, is strongly associated with ankylosing spondylitis. It has been most frequently used as a disease-correlated HLA gene by clinicians. In most laboratories, conventional HLA-B27 typing is still performed by cell cytotoxicity tests or fluorescence serology with specific antibodies. In this study, DNA typing method for HLA-B27 was developed by using group specific Polymerase Chain Reaction (PCR). Four HLA-B27 cell lines (HOM-2, JESTHOM, WT24 and BTB) and fifty six B27 Korean individuals defined by serology were used. The results of control cell and B-27 positive individual samples were correlated well with the data which was performed by serological method. All of B27 positive PCR products gave positive signals on Southern blot hybridization with B27 specific probe. This study shows that the HLA-B27 DNA typing is a relatively simple, fast and practical tool for the determination of the HLA-B27 gene in routine clinical laboratory work.
Cysts of Entamoebn histoIMtica are still found from humans in Korea, but notall of the cysts are known as pathogenic. The non-pathogenic strain is regarded as a differenL species, E. nispnr. In this study, Korean isolates of conventional E. histolvticn were subjected for the differentiation by polymerase chain reaction (PCR) and restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis. Human stools were screened by routine microscopic examination, and cyst or trophozoite positive stools were inoculated into Robinson media. The cultivated trophozoites were prepared for DNA extraction, and the DNAs were used for PCR with common primers of Pl gene. The PCR products were divested with 3 restriction enzymes and RFLP was observed. Also anti-sense primers containing the cleavage site of each restriction eWe were designed for differentiation only by PCR. The PCR products of Korean isolates 59,512, YS-6, and YS-27 were spliced by Taq I and Xmnl but not byAccl, and the isolates S1, S3, S11, S15, S16, S17, S20, YS- l7, and YS-44 were spliced by Acc I but not by Taq I and Xmn I. These RFLP pattern correlated well with PCR products by the species specific primers. The findings confirm that the Korean isolates 59,512, YS-6, and YS-27 are E. histolwtico and others are E. dispar. In Korea, most of the asymptomatic cyst carriers are infected by E. dispar, not by E. histolytica. Key words: Entcmoebc histolytica, Entcmoebn dispar Korean isolates, polymerase chain reaction (PCR), restriction fragment length polymorphism (RFLP)
Cymbidium mosaic virus (CymMV) is one of economically important viruses that cause significant losses of orchids in the world. In the present study, a reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay combined with a lateral flow immunostrip (LFI) assay was developed for the detection of CymMV in orchid plants. A pair of primers containing fluorescent probes at each terminus that amplifies highly specifically a part of the coat protein gene of CymMV was determined for RT-RPA assay. The RT-RPA assay involved incubation at an isothermal temperature (39℃) and could be performed rapidly within 30 min. In addition, no cross-reactivity was observed to occur with odontoglossum ringspot virus and cymbidium chlorotic mosaic virus. The RT-RPA with LFI assay (RT-RPA-LFI) for CymMV showed 100 times more sensitivity than conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). Furthermore, the RT-PCR-LFI assay demonstrated the simplicity and the rapidity of CymMV detection since the assay did not require any equipment, by comparing results with those of conventional RT-PCR. On-site application of the RT-RPA-LFI assay was validated for the detection of CymMV in field-collected orchids, indicating a simple, rapid, sensitive, and reliable method for detecting CymMV in orchids.
Human Astrovirus (HuAstV), known as a waterborne virus, is a group IV positive-sense single-stranded RNA that belongs to Astroviridae. The first outbreak of HuAstV was reported in England in 1975. HuAstV can exist not only among clinical patients but also in various water environments, such as water for agriculture and vegetables. For diagnosis of HuAstV from water samples, a polymerase chain reaction (PCR) system has been developed. However, the PCR-based diagnostic method has problems in field application, such as reaction time, sensitivity and specificity. For this reason, in this study we developed the loop-mediated isothermal amplification assay (LAMP) system, aimed specifically at HuAstV. Three prepared LAMP primer sets were tested by specificity, non-specificity and sensitivity; one LAMP primer set was selected with optimum reaction temperature. The developed LAMP primer set reaction conditions were confirmed at 62℃, and detection sensitivity was 1 fg/μL. In addition, restriction enzyme HaeIII (GG/CC) was introduced to confirm that the LAMP reaction was positive. As a result, selected LAMP primer set was 100 - 1000 times more specific, rapid, and sensitive than conventional-nested PCR methods. For verification of the developed LAMP assay, twenty samples of cDNA from groundwater samples were tested. We expect that the developed LAMP assay will be used to diagnose HuAstV from various samples.
Kim, Eun-Mi;Jeon, Hyo-Sung;Kim, Ji Jung;Kim, Hee-Jung;Shin, Yeun-Kyung;Song, Jae-Young;Yeo, Sang-Geon;Park, Choi-Kyu
Korean Journal of Veterinary Service
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v.38
no.2
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pp.107-116
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2015
In this study, we developed a rapid, sensitive and specific reverse-transcriptase loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) assay for detection of swine influenza viruse (SIV) including major subtypes of swine influenza viruses H1N1, H1N2 and H3N2, and a novel subtype of influenza A virus that accidentally infected in pig population. The RT-LAMP was completed in 40 min at $58^{\circ}C$ and the sensitivity of the RT-LAMP ($1copy/{\mu}L$) was 10-fold higher than conventional reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) ($10copy/{\mu}L$) and the same to real time RT-PCR ($1copy/{\mu}L$). Also, the result of the RT-LAMP can be confirmed without any detection system. Therefore, the RT-LAMP could be a alternative diagnostic method for SIV detection in national SIV monitoring system and clinical diagnostic laboratory in the future.
Background: The main goal of this study was to evaluate the diagnostic efficacy of reverse transcription-nested polymerase chain reaction (RT-nested PCR) in bronchial washing fluid with MAGE A1-6 common primers for the detection of lung cancers invisible by bronchoscopy. Methods: To determine the expression of MAGE A1-6 gene in 189 lung cancers diagnosed by conventional fluoroscopy-guided lung biopsy and 89 cancer-free controls, RT-nested PCR was performed in bronchial washing specimens. We analyzed MAGE A1-6 RT-nested PCR data according to tumor histology, stage, size, and compared them with cytological data. Results: 189 patients (111 cases in adenocarcinoma, 47 cases in squamous cell carcinoma, 22 cases in small cell lung carcinoma, and 9 cases in other cancers) and 89 benign patients were investigated. The expression of MAGE was performed by nested RT-PCR using common MAGE primer. Among 189 cancer patients, the expression rate of MAGE was 49.2%, and the positive predictive value was 89.4%. However, the expression rate of MAGE in patients with benign lesions was 12.4%. In peripheral lung cancer, the positive rate of MAGE expression was 57.4% in squamous cell carcinoma, 44.1% in adenocarcinoma and 59.1% in small cell lung cancer. Whereas the expression rate of bronchial washing cytology in peripheral lung cancer was 9.0% (p=0.011). Conclusion: MAGE RT-PCR in bronchial washing fluid gave us promising data for the detection of peripheral lung cancer. It could be a useful method for selecting diagnostic tools for peripheral lesions.
Chromosome microdissection and the reverse FISH technique is one of the most useful methods for the identification of structurally abnormal chromosomes. In particular, the laser microbeam microdissection (LMM) method allows rapid isolation of a target chromosome or a specific region of chromosomes without damage of genetic materials and contamination. Isolated chromosomes were directly amplified by the degenerate oligonucleotide-primed polymerase chain reaction (DOP-PCR), and then the FISH probes labeled with spectrum green- or spectrum red-dUTP were generated by nick-translation. Whole chromosome painting (WCP) probes were successfully generated from only 5 copies of the chromosome. With this method, we produced 24 WCP probes for each human chromosome. We also tried to characterize a marker chromosome, which seemed to be originated from chromosome 11 on conventional banding technique. The marker chromosomes were isolated by the LMM method and analyzed by reverse FISH. We elucidated that the marker chromosome was originated from the short arm of chromosome 5 ($5p11{\to}pter$). A fully automated and computer-controlled LMM method is a very simple laboratory procedure, and enables rapid and precise characterization of various chromosome abnormalities.
The dairy industry has consistently grown via the expansion of dairy-based food categories. Dairy product consumption is stable since the nutrient composition in dairy products is ideal for human health. However, dairy products are highly susceptible to food-borne pathogens. Controlling the safety of dairy products is thus important when considering the nutrient-rich matrix of this food category. Currently, immunoassays or molecular biology techniques have been used to evaluate the safety of dairy products in Korea. These methods are based on the detection of proteins and thus have low reproducibility and sensitivity. Recent techniques to detect food-borne pathogens have focused on genetic analyses. Rapid detection methods for food-borne pathogens in milk and dairy products using polymerase chain reaction (PCR) techniques, such as conventional PCR, real-time PCR, repetitive sequence-based (rep)-PCR, PCR-denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE), and digital PCR, are reviewed in this article. The aim of this review was to contribute knowledge of the relationship between microflora and the quality of dairy products. This study will also assist in the immediate monitoring of food-borne pathogens in milk and dairy products when an outbreak related to this food category occurs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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