Two curcumin derivatives, demethoxycurcumin (DMC) and bisdemethoxycurcumin (BDMC), isolated from Curcuma longa were analyzed for their inhibitory activities against two isoforms of monoamine oxidase (MAO), which is involved in the catalysis of neurotransmitting monoamines. In the study, DMC and BDMC potently inhibited human MAO-B, with $IC_{50}$ values of 2.45 and $2.59{\mu}M$, respectively, and both compounds showed effective inhibitory activities against human MAO-A, with $IC_{50}$ values of 3.24 and $3.09{\mu}M$, respectively. The inhibitory activities of the two compounds were higher than those of curcumin. The removal of the methoxy or dimethoxy groups in curcumin might increase the inhibitory activities against human MAO-A and MAO-B. The inhibited activities were recovered to almost the values of the reversible references in the dialysis experiments with DMC and BDMC. DMC and BDMC showed competitive inhibition for MAO-A and MAO-B, respectively, with $K_i$ values of 0.91 and $0.80{\mu}M$, respectively. These results suggest that the two curcumin derivatives may be useful or lead compounds in the treatment of related disorders as potent reversible MAO inhibitors.
The effects of ethanol on Na-K-ATPase activity were investigated with cat kidney homogenate. The results were summarized as follows: 1. Na-K-ATPase activity was inhibited with dose-dependent manner by ethanol of higher concentration than 1%, and showed an estimated $I_{50}$ (the inhibitor concentration to cause 50% inhibition) of 7.5%. 2. Hydrolysis of ATP was linear with the incubation time in the absence and presence of 8% ethanol, whereas it was different with preincubation time in the presence of 15% ethanol. 3. Inhibition of Na-K-ATPase activity by ethanol was not affected by increased enzyme concentration, and showed the reversibility of the inhibitory pattern. 4. Kinetic studies of cationic-substrate activation of Na-K-ATPase showed that ethanol had both properties of classical competitive inhibition for $Mg^{{+}{+}}$ or $K^+ and non-competitive inhibition for ATP or $Na^+$. 5. Arrhenius plot yield two break point at $21^{\circ}$ and $30^{\circ}C$ in the absence of ethanol, whereas showing only one break point at $18^{\circ}C$ in the presence of 8% ethanol. These results suggested that ethanol inhibited Na-K-ATPase activity reversible through a disturbance of microenvironment of lipids associated with the enzyme.
Kinetic parameters of various substrates and inhibitors were measured to elucidate the binding requirements of the active site of intracellular adenosine deaminase (ADA) in Aspergillus oryzae. 3'-Deoxyadenosine was the best substrate according to the value of relative kcat/$K_m$. Purine riboside was found to be the strongest inhibitor with the $K_i$ value of $3.7{\times}10^{-5}$M. Adenine acted neither as a substrate nor as an inhibitor, suggesting the presence of ribose at N-9 of adenosine was crucial to binding. ADA also catalyzed the dechlorination of 6-chloropurine riboside, generating inosine and chloride ions. Substrate specificity of 6-chloropurine riboside was 0.86% of adenosine. Purine riboside, a competitive inhibitor of ADA, inhibit the dechlorination with similar $K_i$ value, suggesting that the same binding site was involved in deamination and dechlorination. Among the sulfhydryl group reagents, mercurials, pchloromercuribenzoate (PCMB), mersalyl acid and $HgCl_2$ inactivated the enzyme. Mersalyl acid-inactivated ADA was reactivated by thiol reagents, but PCMB-inactivated enzyme was not. When ADA was treated with the mercurial reagents, the inhibition constants and inhibition patterns were determined. Each inhibition was competitive with substrate. The $K_i$ values of these mercurial reagents were lower in 10 mM phosphate buffer than in 100 mM phosphate buffer, showing phosphate dependency.
Chung, Myung Chul;Hyo Kon Chun;Ho Jae Lee;Choong Hwan Lee;Su Il Kim;Yung Hee Kho
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.6
no.1
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pp.7-11
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1996
MR-387Al (ARPA-Val-Pro) and A2 (AHPA-Val-Hyp) were prepared as aminopeptidase N inhibitors through the synthesis of peptide MR-387A and B analogues which contained 3-amino-2-hydroxy-4-phenyl butanoic acid (ARPA) as a zinc-chelating moiety. They are competitive inhibitors of aminopeptidase N with inhibition constants(Ki) of 4.1 $\times 10^{-7}\;and 1.1 \times 10^{-6}$ M, respectively. MR-387Al also strongly inhibited aminopeptidase B of human myelogenous leukemia K-562 cell with $IC_50$ of 0.35 $\mu$ M. Inhibitions of aminopeptidase N activity by ARPA-bearing inhibitors of various peptide chain lengths also have been studied. $IC_ 50$ values of AHPA-Val (bestatin), ARPA-Val-Pro (MR-387Al) and ARPA-Val-Pro-Leu (MR-387C) compared against porcine kidney aminopeptidase N were 20.1, 0.60 and 0.08 $\mu$ M, respectively. These results support that a multiple interaction between the $S_1\to S'_3$ sites of aminopeptidase N and the $P_1\to P'_3$ of the inhibitor plays a crucial role in stabilizing strongly the enzyme-inhibitor complex.
Kinetic studies of L-Alanine dehydrogenase from Bacillus subtilis-catalyzed reactions in the presence of $Zn^{2+}$ were carried out. The substrate (L-alanine) saturation curve is hyperbolic in the absence of the metal ion but it becomes sigmoidal when $Zn^{2+}$ is added to the reaction mixture indicating the positive cooperative binding of the substrate in the presence of zinc ion. The cooperativity of substrate binding depends on the xinc ion concentration: the Hill coefficients ($n_H$) varied from 1.0 to 1.95 when the zinc ion concentration varied from 0 to $60\;{\mu}m$. The inhibition of AlaDH by $Zn^{2+}$ is reversible and noncompetitive with respect to $NAD^+$ ($K_i\;=\;5.28{\times}10^{-5}\;M$). $Zn^{2+}$ itself binds to AlaDH with positive cooperativity and the cooperativity is independent of substrate concentration. The Hill coefficients of substrate biding in the presence of $Zn^{2+}$ are not affected by the enzyme concentration indicating that $Zn^{2+}$ binding does not change the polymerization-depolymerization equilibria of the enzyme. Among other metal ions, $Zn^{2+}$ appears to be a specific reversible inhibitor inducing conformational change through the intersubunit interaction. These results indicate that $Zn^{2+}$ is an allosteric competitive inhibitor and substrate being a non-cooperative per se, excludes the $Zn^{2+}$ from its binding site and thus exhibits positive cooperativity. The allosteric mechanism of AlaDh from Bacillus subtilis is consistent with both MWC and Koshland's allosteric model.
Escitalopram is one of selective serotonin reuptake inhibitor antidepressants. As an S-enantiomer of citalopram, it shows better therapeutic outcome in depression and anxiety disorder treatment because it has higher selectivity for serotonin reuptake transporter than citalopram. The objective of this study was to determine the direct inhibitory effect of escitalopram on 5-hydroxytryptamine type 3 ($5-HT_3$) receptor currents and study its blocking mechanism to explore additional pharmacological effects of escitalopram through $5-HT_3$ receptors. Using a wholecell voltage clamp method, we recorded currents of $5-HT_3$ receptors when 5-HT was applied alone or co-applied with escitalopram in cultured NCB-20 neuroblastoma cells known to express $5-HT_3$ receptors. 5-HT induced currents were inhibited by escitalopram in a concentration-dependent manner. $EC_{50}$ of 5-HT on $5-HT_3$ receptor currents was increased by escitalopram while the maximal peak amplitude was reduced by escitalopram. The inhibitory effect of escitalopram was voltage independent. Escitalopram worked more effectively when it was co-applied with 5-HT than pre-application of escitalopram. Moreover, escitalopram showed fast association and dissociation to the open state of $5-HT_3$ receptor channel with accelerating receptor desensitization. Although escitalopram accelerated $5-HT_3$ receptor desensitization, it did not change the time course of desensitization recovery. These results suggest that escitalopram can inhibit $5-HT_3$ receptor currents in a non-competitive manner with the mechanism of open channel blocking.
Pravastatin sodium, competitive inhibitors of HMG-CoA(3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A) reductase, is produced from the culture broth of Streptomyces carbophilus KCCM 10370, The production of Pravastatin sodium was increased about 45 fold compared to wild type by UV mutation. Production of Pravastatin was also improved by continuous feeding of Compactin sodium to 24% and bioconversion ratio was also increased to 4.3% by intermittent addition. In main culture, concentration of Compactin sodium was kept less than 0.1%(w/v) under continuous feeding of Compactin sodium then product was 0.49% and bioconversion was 70%. After finishing the fermentation, Pravastatin was purified by various chromatographies such as Diaion HP20 resin column, Partition, and ODS(Octa-Decylsilyl Silicagel) resin column with a final yield of 70~72% and over 99.7% purity. The IR, UV, and NMR study of the purified Pravastatin sodium showed the same pattern as that of EP(European Pharmacopoeia).
Kim, Kyung-Jae;Lee, Shung-Hee;Kim, Jung-Woo;Kim, Ha-Won;Shim, Mi-Ja;Choi, Eung-Chil;Kim, Byong-Kak
The Korean Journal of Mycology
/
v.13
no.4
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pp.203-212
/
1985
Of 450 strains isolated from the soil microbes collected in various locations in Korea, a strain had a strong inhibitory activity against bacterial ${\alpha}-amylase$ and was named strain DMC-72 of the genus Streptomyces. The amylase inhibitory metabolite produced by this strain was purified by means of acetone precipitation, adsorption on Amberlite IRC-50 and SP-Sephadex C-25. The inhibitor was found to be a derivative of oligosaccharides by spectral and chemical data. The inhibitor was stable at the pH range of $1{\sim}13$ and at $100^{\circ}C$ for half an hour, also inhibited other amylases such as salivary ${\alpha}-amylase$, pancreatic ${\alpha}-amylase$, fungal ${\alpha}-amylase$ and glucoamylase. However, it showed no inhibitory activity against ${\alpha}-glucosidase$, ${\beta}-glucosidase$, dextranase, and ${\beta}-amylase$. The kinetic studies of the inhibitor showed that its inhibitory effects on starch hydrolysis by ${\alpha}-amylase$ were noncompetitive.
A thermostable adenylate kinase isolated from the sonic extracts of Thermus caldophilus cells revealed higher substrate-specificity to the nucleoside monophosphate than to the nucleoside triphosphate. A $P', P^5$-di(adenosine-5') pentaphosphate was acted as a competitive inhibitor to the various substrates. Various divalent cations were activated the enzyme activity following orders: $Mg^{2+}, Ca^{2+}, Mn^{2+}, Ba^[2+}, $ and $Fe^{2+}$-. The enzyme activity was not affected by the sulfurhydryl reagent, p-chloromeric uribenzoic acid and activated by addition of the sodium chloride or phosphoenol pyruvate to the reaction mixture.
The aqueous extract from the fruit body of Lentinus edodes was evaluated for inhibitory activities against $\alpha$-glucosidase isolated from Spargue-Dawley male rats. A aqueous extract of Lentinus edodes exhibited 13.8% inhibitory activity on using 2 mM p-nitrophenyl $\alpha$-D-glucopyranoside as a substrate ($IC_{50}$ 75.3 mg/ml). The aqueous extract of Lentinus edodes inhibition type on $\alpha$-glucosidase was determined to be competitive inhibition. When it was oral administered to increase of blood glucose levels after STZ-induced in a dose dependent dietary. These results suggest that aqueous extract of Lentinus edodes effect a metabolism of intestine, and thereby reducing the increase of blood glucose after STZ-induced.
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