Purpose: Since the report of artificial dermis manufacturing method using collagen by Yannas in 1980, collagen has been effectively used as dermal substitute with its merits such as, lower antigeneicity, controllable biodegradation rate, and minimal inflammatory cytotoxic properties in the dermal tissue engineering field. However, weak mechanical durability was the main drawback of collagen dermal substitute. To improve its stability, mechanical or chemical cross-linking was used. Despite of such process, its clinical use was restricted due to weak durability. To improve the durability of collagen matrix, we designed elastin-incorporated collagen matrix and compared its durability with conventional collagen matrix. Methods: 15mm diameter with 4mm thick collagen dermal matrix was made according to Yannas protocol by mixing 0.5% bovine collagen and chondroitin-6-sulfate followed by degassing, freeze drying, dehydrodermal cross-linking and chemical cross-linking procedure. In elastin incorporated collagen matrix, same procedure was performed by mixing elastin to previous collagen matrix in 4:1 ratio(collagen 80% elastin 20%). In comparison of the two dermal matrix in vitro tests, matrix contracture rate, strain, tensile strength, was measured and stiffness was calculated from comparative analysis. Results: In terms of matrix contracture, the elastin-incorperated added collagen dermis matrix showed 1.2 times more contraction compared to conventional collagen matrix. However, tensile strength showed 1.6 times and stiffness showed 1.6 times increase in elastin-incorporated matrix. Conclusion: Elastin incorperated collagen matrix manufactured by our team showed increased durability due to improvement in tensile strength and stiffness compared to previous collagen matrix($Integra^{(R)}$).
Yam extracts (Dioscorea batatas) have been reported to possess a variety of functions. However, studies on its osteogenic properties are limited. In this study, we investigated the effect of ethanol and water extracts on osteoblast proliferation and bone matrix protein synthesis, type I collagen and alkaline phosphatase (ALP), using osteoblastic MC3T3-E1 cell model. MC3T3-E1 cells were cultured with yam ethanol and water extracts (0~30 mg/L) within 39 days of osteoblast differentiation period. Cell proliferation was measured by MTT assay. Bone matrix proteins were assessed by the accumulation of type I collagen and ALP activity by staining the cell layers for matrix staining. Also, the secreted (media) matrix protein concentration (type I collagen) and enzyme activity (ALP) were measured colorimetrically. Yam ethanol and water extracts stimulated cell proliferation within the range of 15~30 mg/L at 15 day treatment. The accumulation of type I collagen in the extracellular matrix, as well as secreted collagen in the media, increased with increasing doses of yam ethanol (3~15 mg/L) and water (3~30 mg/L) extracts. ALP activity was not affected by yam ethanol extracts. Our results demonstrated that yam extracts stimulated osteoblast proliferation and enhanced the accumulation of the collagenous bone matrix protein type I collagen in the extracellular matrix. These results suggest that yam extracts may be a potential activator for bone formation by increasing osteoblast proliferation and increasing bone matrix protein type I collagen. Before confirming the osteogenic action of yam, further studies for clarifying how and whereby yam extracts can stimulate this ostegenesis action are required.
The purpose of this study was to regenerate human dental pulp tissues similar to native pulp tissues. Using the mixture of type I collagen solution, primary cells collected from the different tissues (pulp, gingiva, and skin) and NIH 3T3 ($1{\;}{\times}{\;}10^5{\;}cells/ml/well$) were cultured at 12-well plate at $37^{\circ}C$ for 14 days. Standardized photographs were taken with digital camera during 14 days and the diameter of the contracted collagen gel matrix was measured and statistically analyzed with student t-test. As one of the pulp tissue engineering, normal human dental pulp tissue and collagen gel matrix cultured with dental pulp cells for 14 days were fixed and stained with Hematoxyline & Eosin. According to this study, the results were as follows: 1. The contraction of collagen gel matrix cultured with pulp cells for 14 days was significantly higher than other fibroblasts (gingiva, skin) (p < 0.05), 2. The diameter of collagen gel matrix cultured with pulp cells was reduced to 70.4% after 7 days, and 57.1% after 14 days. 3. The collagen gel without any cells did not contract, whereas the collagen gel cultured with gingiva and skin showed mild contraction after 14 days (88.1% and 87.6% respectively). 4. The contraction of the collagen gel cultured with NIH 3T3 cells after 14 days was higher than those cultured with gingival and skin fibroblasts, but it was not statistically significant (72.1%, p > 0.05). 5. The collagen gel matrix cultured with pulp cells for 14 days showed similar shape with native pulp tissue without blood vessels. This approach may provide a means of engineering a variety of other oral tissue as well and these cell behaviors may provide information needed to establish pulp tissue engineering protocols.
The bone is composed of the bone matrix of collagen and hydroxyapatite, the mixture of calcium and phosphours. The bone tissue is considered to the special connective tissue that possesses extracellular matrix made by collagen fiber deposited with mineral complex. In order to maintain bone mass measured by the sum of bone matrix and hydroxyapatite, bone resorption by osteoclast during lifetime and bone remodeling to form bone by osteoblast in its resorption region repeat continuously. The osteoblast has a mesodermic fetal origin like fibroblast for the formation of form tissues. Two cells express identical genes and synthesize the identical collagen type I as the major component of the formation of bone matrix and skin. Therefore, it is considered that the decrease of skinfold thickness and the decrease of bone mass related to the age, the change of two tissues composed of collagen type I is caused by the same genetic mechanism. The decrease of bone mass is caused by the change of the amount and structure of bone matrix by several factors and the amount of minerals deposited on bone matrix. Especially, in case of female, the deficiency of estrogen by menopause makes these changes rapidly increased. The decrease of bone mass and skinfold thickness is due to the decrease of the amount of collagen and its structural change the common component of bone tissue and skin tissue. Therefore, the relationship of the amount of cross-linked peptide N-telopeptide, collagen metabolite which excretes as urine. Based upon the proved results about the significant relationship of bone mass, the amount of bone collagen, the amount of skin collagen and skinfold thickness, the bone mass may be expected through a facile determination of skinfold thickness.
Purpose: The purpose of this study was to evaluate the regenerative capacity of stem cells combined with bone graft material and a collagen matrix in rabbit calvarial defect models according to the type and form of the scaffolds, which included type I collagen matrix and synthetic bone. Methods: Mesenchymal stem cells (MSCs) were obtained from the periosteum of participants. Four symmetrical 6-mm-diameter circular defects were made in New Zealand white rabbits using a trephine drill. The defects were grafted with (1) group 1: synthetic bone (β-tricalcium phosphate/hydroxyapatite [β-TCP/HA]) and 1×105 MSCs; (2) group 2: collagen matrix and 1×105 MSCs; (3) group 3: β-TCP/HA, collagen matrix covering β-TCP/HA, and 1×105 MSCs; or (4) group 4: β-TCP/HA, chipped collagen matrix mixed with β-TCP/HA, and 1×105 MSCs. Cellular viability and cell migration rates were analyzed. Results: Uneventful healing was achieved in all areas where the defects were made at 4 weeks, and no signs of infection were identified during the healing period or at the time of retrieval. New bone formation was more evident in groups 3 and 4 than in the other groups. A densitometric analysis of the calvarium at 8 weeks post-surgery showed the highest values in group 3. Conclusions: This study showed that the highest regeneration was found when the stem cells were applied to synthetic bone along with a collagen matrix.
Purpose: The purpose of this study was to evaluate the effect of collagen matrix with apically positioned flap (APF) on the width of keratinized gingiva, comparing to the results of APF only and APF combined with free gingival graft (FGG) at the second implant surgery. Methods: Nine patients were selected from those who had received treatments at the Department of Periodontics, Chosun University Dental Hospital, Gwangju, Korea. We performed APF, APF combined with FGG, and APF combined with collagen matrix coverage respectively. Clinical evaluation of keratinized gingival was performed by measuring the distance from the gingival crest to the mucogingival junction at the mid-buccal point, using a periodontal probe before and after the surgery. Results: The ratio of an increase was 0.3, 0.6, and 0.6 for the three subjects in the APF cases, 3, 5, and 7 for the three in the APF combined with FGG case, and 1.5, 0.5, and 3 for the three in the APF combined with collagen matrix coverage case. Conclusions: This study suggests that the collagen matrix when used as a soft tissue substitute with the aim of increasing the width of keratinized tissue or mucosa, was as effective and predictable as the FGG.
Solar ultraviolet (UV) irradiation leads to distinct changes in the skin connective tissues by degradation of collagen, which is a major structural component in the extracellular matrix. UV irradiation induces the production of matrix metalloproteinases (MMP) capable of attacking native fibrillar collagen and responsible for inhibiting the construction of collagenous extracellular matrix. In this study, we attempted to investigate the protective actions of Rubus coreanus ethanol extract (RCE) on the MMP production and the consequent procollagen/collagen degradation in UV-B-irradiated human dermal fibroblasts. The analytical data showed that Rubus coreanus ethanol extract was mostly comprised of cyanidin 3-rutinoside. Pre-treatment of fibroblasts with this extract inhibited UV-B-induced production of MMP-1, MMP-8 and MMP-13 in dose-dependent manners. In addition, Western blot analysis and immunocytochemical staining assay revealed that RCE markedly augmented the cellular levels of procollagen/collagen declined in UV-B-exposed dermal fibroblasts. These results demonstrate that RCE blocks UV-B-induced increase of the collagen degradation by inhibiting MMP production. Thus, RCE may act as an agent inhibiting excessive dermal collagen degradation leading to the skin photoaging.
Extensive research with polarimetry and Mueller matrix has been done for chemical measurements and possible cancer detection. However, the effect of thermally denatured biological tissue on polarization changes is not well known. The purpose of this study is to characterize polarization changes in collagen due to thermal denaturation. The variations in polarized state caused by thermal damage were investigated by obtaining the Mueller matrix elements of collagen sample at multiple thermal damage levels. The changes in birefringence of denatured collagen were also investigated. This information could be used to determine the extent of thermal damage level of clinically heat treated tissues.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제38권6호
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pp.321-325
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2012
Collagen is widely used for regenerative therapy and pharmaceutical applications as one of the most useful scaffolds. Collagen is the most abundant protein in vertebrates and the natural substrate of various types of animal cells. Bone and dentin are mineralized tissues and almost similar in chemical components. They consist of collagen (18%), non-collagenous proteins (2%), hydroxyapatite (70%) and body fluid (10%) in weight volume. Pepsin-digested, type I collagen (atelocollagen) and heat-denatured collagen (gelatin) are basic collagenous materials for medical use. Demineralized dentin matrix (DDM) and demineralized bone matrix (DBM) belong to acid-insoluble group, and vital tooth-derived DDM is a unique dentin material including cementum and growth factors. In this review, collagen-based materials will be introduced and discussed for bone regenerative surgery.
The mechanical cues that adherent cells derive from the extracellular matrix (ECM) can effect dramatic changes in cell migration, proliferation, and differentiation. Using a thin film of Type I collagen fibrils comprised of 100 nm to 200 nm collagen fibrils overlaying a bed of smaller fibrils, changes in cellular response to systematically controlled changes in mechanical properties of collagen was investigated. Further, an experimental and modeling approaches to calculate the elastic modulus of individual collagen fibrils, and thereby the effective stiffness of the entire collagen thin film matrix, from atomic force microscopy force spectroscopy data was performed. These results demonstrate an approach to analysis of fundamental properties of thin, heterogeneous, organic films, and add further insights into the mechanical properties of collagen fibrils that are of relevance to cell response to the ECM.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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