Various antimicrobial peptides (AMPs) from microalgae have shown antibacterial, antiviral, antifungal, anticancer, and antioxidant effects, and play crucial roles in medical applications, aquaculture-related disease management, and the food industry. Magainin 2 (MAG2), an AMP, exhibits high antibacterial and antitumor activity, necessitating an efficient recombinant expression system for low-cost, large-scale production. To enhance MAG2 secretion efficiency in Chlorella, we constructed the SS:MAG2:His vector using the known Chlamydomonas reinhardtii CA1 signal sequence (SS) and obtained a stable transformant via an Agrobacterium-mediated transformation method and RT-qPCR. ELISA results revealed that the MAG2 content secreted into the medium by the SS:MAG2:His transformants increased proportionally with mRNA expression. These findings offer a strategy for high MAG2 secretion in the Chlorella vulgaris platform, potentially minimizing downstream processing costs.
In the present study, we performed electroporation to deliver protein into microalgae using previously developed digital electroporation system. Green fluorescence protein was successfully delivered into a live microalgae cell nucleus without cell wall removal. By investigating the effects of applied voltage on the protein delivery efficiency, optimal electroporation electric field condition was found (960 V/cm). We also investigated the delivery of Yo-Pro-1 into cell to examine the size effects of delivered materials and found that there is little size effects on the optimal condition. Finally, the implications of the present results and future work are discussed.
Tingting Lin;Yuanyuan Ge;Qing Gao;Di Zhang;Xiaofeng Chen;Yafang Hu;Jun Fan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.12
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pp.1681-1691
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2023
Flavin mononucleotide-binding proteins or domains emit cyan-green fluorescence under aerobic and anaerobic conditions, but relatively low fluorescence and less thermostability limit their application as reporters. In this work, we incorporated the codon-optimized fluorescent protein from Chlamydomonas reinhardtii with two different linkers independently into the redox-responsive split intein construct, overexpressed the precursors in hyperoxic Escherichia coli SHuffle T7 strain, and cyclized the target proteins in vitro in the presence of the reducing agent. Compared with the purified linear protein, the cyclic protein with the short linker displayed enhanced fluorescence. In contrast, cyclized protein with incorporation of the long linker including the myc-tag and human rhinovirus 3C protease cleavable sequence emitted slightly increased fluorescence compared with the protein linearized with the protease cleavage. The cyclic protein with the short linker also exhibited increased thermal stability and exopeptidase resistance. Moreover, induction of the target proteins in an oxygen-deficient culture rendered fluorescent E. coli BL21 (DE3) cells brighter than those overexpressing the linear construct. Thus, the cyclic reporter can hopefully be used in certain thermophilic anaerobes.
Cho, Kichul;Jeon, Hancheol;Hwang, Hyun-Ju;Hong, Ji Won;Lee, Dae-Sung;Han, Jong Won
Journal of Marine Bioscience and Biotechnology
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v.11
no.2
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pp.52-61
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2019
Over the past few decades, microalgae-based biotechnology conjugated with innovative CRISPR/Cas9-mediated genetic engineering has been attracted much attention for the cost-effective and eco-friendly value-added compounds production. However, the discharge of reproducible living modified organism (LMO) into environmental condition potentially causes serious problem in aquatic environment, and thus it is essential to assess potential environmental risk for human health. Accordingly, in this study, we monitored discharged genetically modified microalgae (GMM) near the research complex which is located in Daejeon, South Korea. After testing samples obtained from 6 points of near streams, several green-colored microalgal colonies were detected under hygromicin-containing agar plate. By identification of selection marker genes, the GMM was not detected from all the samples. For the lab-scale environmental risk assessment of GMM, acute toxicity test using rotifer Brachionus calcyflorus was performed by feeding GMM. After feeding, there was no significant difference in mortality between WT and transformant Chlamydomonas reinhardtii. According to further analysis of horizontal transfer of green fluorescence protein (GFP)-coding gene after 24 h of incubation in synthetic freshwater, we concluded that the GFP-expressed gene not transferred into predator. However, further risk assessments and construction of standard methods including prolonged toxicity test are required for the accurate ecological risk assessment.
In this exploratory study, eight types of microalgae from different phyla (Chlamydomonas reinhardtii, Chlorella species, Haematococcus pluvialis, Porphyridium purpureum, Porphyridium cruentum, Isochrysis species, Isochrysis galbana, and Pavlova lutheri) were tested for their antibacterial activities against eight target pathogenic bacterial strains. The agar well diffusion method and broth micro dilution assay were conducted to estimate the antibacterial activity. Microalgae cell-free supernatants, exopolysaccharides (EPS), water, and organic solvent extracts were used for inhibition analysis. EPS extracted from P. lutheri showed activity against Bacillus subtilis and Pseudomonas aeruginosa. Inhibition zone diameters of 14-20 mm were recorded on agar plates, while the minimum inhibitory concentrations in the broth micro dilution assay were $0.39-25mg\;ml^{-1}$. During this study, haptophyte microalgae, Isochrysis species, and P. lutheri extracts showed the highest activity against most of the tested pathogenic bacterial strains, while most of the extracts were active against the important foodborne pathogen P. aeruginosa. This study showed promising results regarding important microalgae phyla, which will further aid research related to extracts and exploitation of bioactive metabolic compounds in the food and pharmaceutical industries.
Kim, Jung-Tae;Lee, Geon;Park, Do-Hyeon;Kang, Kyeong-Hwan;Kim, Joong-Kyun;Lee, Sang-Joon
Journal of Environmental Science International
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v.23
no.4
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pp.681-695
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2014
In a pilot-scale dyeing wastewater treatment using two-type fluidizing media, each thickness of biofilm was 15 and 30 ${\mu}m$, respectively. The numbers of protozoa inhabited in small-size (PEMT A) and big-size (PEMT B) media were $7.5{\times}10^4$ and $1.25{\times}10^5$ cells/ml, respectively, and dominant species were Entosiphon sulcatus var sulcatus in PEMT A and Chlamydomonas reinhardtii in PEMT B, respectively. Flask experiments using the two media revealed that the percentages of color removal were 25.8% in PEMT A and 27.1% in PEMT B after 72-h cultivation, indicating the necessity of bioaugmentation. Experiments for bioaugmentation effect on color removal were carried out in the pilot-scale treatment for 75 d by three-step operation under the control of wastewater loading rate and microbial input rate. Dye degradation occurred mainly in the second reaction tank, and the attachment of augmented dye-degrading microorganisms to media took at least 35 d. Final value of chromaticity in effluent was 227, meeting the required standard. Therefore bioaugmentation onto media was good for color treatment. In summary, thickness of biofilm formed on the media depended upon the size of media, resulting in different ecosystem inside the media. Hence, this affected microbial community and color treatment further. Accordingly, the reduction of operation cost is expected by efficient color-treatment process using bioaugmented media.
An increase in seawater temperature owing to global warming is expected to substantially limit the growth of marine algae, including Pyropia yezoensis, a commercially valuable red alga. To improve our knowledge of the genes involved in the acquisition of heat tolerance in P. yezoensis, transcriptomes sequences were obtained from both the wild-type SG104 P. yezoensis and heat-tolerant mutant Gy500. We selected 1,251 differentially expressed genes that were up- or downregulated in response to the heat stress condition and in the heat-tolerant mutant Gy500, based on fragment per million reads expression values. Among them, PyHRG1 was downregulated under heat stress in SG104 and expressed at a low level in Gy500. PyHRG1 encodes a secretory protein of 26.5 kDa. PyHRG1 shows no significant sequence homology with any known genes deposited in public databases to date. However, PyHRG1 homologs were found in other red algae, including other Pyropia species. When PyHRG1 was introduced into the single-cell green alga Chlamydomonas reinhardtii, transformed cells overexpressing PyHRG1 showed severely retarded growth. These results demonstrate that PyHRG1 encodes a novel red algae-specific protein and plays a role in heat tolerance in algae. The transcriptome sequences obtained in this study, which include PyHRG1, will facilitate future studies to understand the molecular mechanisms involved in heat tolerance in red algae.
Yu Jeong Jeong;Hee Gyung Min;Won Young Lee;Sung Chun Kim
Journal of Marine Bioscience and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.45-54
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2024
Microalgae have great potential in the biomedical and pharmaceutical industries as a new type of bioreactor that can produce proteins for specific purposes, including recombinant proteins, pharmaceuticals, and industrial enzymes. Despite the production advantages and importance of microalgae-based expression systems, studies on secretion efficiency are limited. In this study, for stable expression and efficient secretion of the heterologous protein (human SCF and human INFγ) in Chlorella vulgaris, we constructed SP:hSCF:His and SP:hINFγ:His plant binary vectors using the signal peptide (SP) of Chlamydomonas reinhardtii, and we obtained stable transformants through the effective agrobacterium-mediated transformation of these vectors. Transformants with accurately inserted hSCF and hINFγ demonstrated stably increased mRNA and protein expression using RT-PCR and western blotting under the same culture conditions. Following the analysis of the proteins secreted into the culture medium using ELISA, it was confirmed that hINFγ was effectively produced in the transformed C. vulgaris culture medium. The overall findings indicate that the combination of heterologous protein and SP may be crucial for ensuring the expression and secretion of recombinant proteins in Chlorella culture systems.
Green algae are important primary producers in aquatic ecosystem, and they are sensitive test species in bioassay. Green algae are broadly used to assess the adverse effects of various chemicals by measuring the inhibition of metabolism, reproduction and survival. In this study, we extensively gathered domestic and foreign toxicity test methods conducted using green algae, which are distributed in Korean water environment. Selected eight domestic green algae were Chlamydomonas reinhardtii, Desmodesmus subspicatus (=Scenedesmus subspicatus), Scenedesmus abundans, Scenedesmus acutus, Scenedesmus quadricauda, Podohedriella falcata (=Ankistrodesmus falcatus), Pseudokirchneriella subcapitata (=Selenastrum capricornutum), and Chlorella vulgaris. Forty four test methods were collected from the standard test ones, government reports, SCI papers and Korean research papers. P. subcapitata and D. subspicatus are the most common test species recommended by the standard test methods. Initial cell density and dilution water were the main differences among the test methods we collected. We proposed the suitable ecotoxicity test methods based on domestic green algae in Korea. This study could be a fundamental basis to establish the ecotoxicity test methods by green algae distributed in Korea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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