To determine the reason of individual variation of the effect of caffeine, the absorption and the disposition of caffeine were studied in caffeine sensitive and caffeine nonsensitive volunteers. And also to study the effect of obesity on caffeine pharmacokinetics, the caffeine disposition in the obese rat and in the lean rat were investigated respectively. In result the caffeine sensitive group showed a longer terminal half-life of caffeine(7.35$\pm$0.71 hr : 5.49$\pm$0.73 hr) and a larger AUC (55.42$\pm$9.09 $\mu\textrm{g}$.$ml^{-1}$.hr:44.0$\pm$7.81$\mu\textrm{g}$.$ml^{-1}$.hr) than that of caffeine non-sensitive group without statistical significance. The obese rat showed a longer terminal half-life (3.47 hr : 2.31 hr) and a larger AUC(35.3 $\mu\textrm{g}$.$ml^{-1}$.hr:26.97$\mu\textrm{g}$.$ml^{-1}$.hr) than that of the lean rat. But there was no correlation in the amount of daily caffeine consumption and obesity. In conclusion, we suggest that the individual variation of the effect of caffeine are being caused from the individual differences of caffeine susceptibility or tolerance rather than the differences of the genetic metabolic capacity or metabolic tolerance.
Caffeine has a long history of human consumption but the consumption of caffeine due to caffeinated energy drinks(CEDs) is rapidly growing. Marketing targets of CED sales are children, adolescents and young adults, possibly caffeine-sensitive groups and its effect for them can be significantly different from healthy adults. Caffeine-related toxicities among these groups are growing in number and a number of countries are recognizing severity of caffeine toxicities. Previous research showed prediction of maximal plasma caffeine concentration profiles after the single CED ingestion and the primary aim of this study is to visually predict plasma caffeine concentration after the single and multiple ingestion of standard servings of CED. Based on the population pharmacokinetic model using Monte Carlo simulation, prediction of caffeine concentration leading to caffeine intoxication in the sensitive groups is quantitatively presented and visualized. This research also broadens the perspective by creating and utilizing diverse open science tools including R package, Edison Science App and Shiny apps.
Kim, Sung-Joon;Kim, Jin-Kyung;So, In-Suk;Suh, Suk-Hyo;Lee, Sang-Jin;Kim, Ki-Whan
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제2권3호
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pp.313-322
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1998
In a myocyte freshly isolated from rabbit cerebral artery, the characteristics of $Ca^{2+}$ release by histamine or caffeine were studied by microspectrofluorimetry using a $Ca^{2+}-binding$ fluorescent dye, fura-2. Histamine (5 ${\mu}M$) or caffeine (10 mM) induced a phasic rise of cytoplasmic free $Ca^{2+}$ concentration $([Ca^{2+}]_C)$ which could occur repetitively with extracellular $Ca^{2+}$ but only once or twice in $Ca^{2+}-free$ bathing solution. Also, the treatment with inhibitor of sarcoplasmic reticulum $Ca^{2+}-ATPase$ suppressed the rise of $[Ca^{2+}]_C$ by histamine or caffeine. In $Ca^{2+}-free$ bathing solution, short application of caffeine in advance markedly attenuated the effect of histamine, and vice versa. In normal $Ca^{2+}-containing$ solution with ryanodine (2 ${\mu}M$), the caffeine-induced rise of $[Ca^{2+}]_C$ occurred only once and in this condition, the response to histamine was also suppressed. On the other hand, in the presence of ryanodine, histamine could induce repetitive rise of $[Ca^{2+}]_C$ while the amplitude of peak rise became stepwisely decreased and eventually disappeared. These results suggest that two different $Ca^{2+}-release$ mechanisms (caffeine-sensitive and histamine-sensitive) are present in rabbit cerebral artery myocyte and the corresponding pools overlap each other functionally. Increase of $[Ca^{2+}]_C$ by histamine seems to partially activate ryanodine receptors present in caffeine-sensitive pool.
It has been reported that overconsumption of caffeine during pregnancy leads to a deleterious effect within the nervous tissues during embryonic development. In this study, we further extrapolated the effect of caffeine in the developing retinas, which is known to be one of the most sensitive tissues in chick embryos. Morphological changes of retinal thickness and organization of neuroretinal epithelium were monitored using three gene markers, Atoh7, FoxN4, and Lim1. Upon treating with a single dose of caffeine (15 µmol at embryonic day 1 [E1]), relative thicknesses of developing retinas (particularly of E7 and E9) were significantly altered. Among the three genes studied, the expression pattern of Atoh7 was notably altered while those of FoxN4, and Lim1 mRNA showed only a slight change in these developing retinas. Quantitative polymerase chain reaction results supported the most notable changes of Atoh7 but not FoxN4, and Lim1 gene in the developing retinas, particularly at E7. The effect of caffeine towards other organs during development should be extrapolated and the awareness of its intensive consumption should be raised.
The secretion of insulin from pancreatic ${\beta}$-cells is triggered by the influx of $Ca^{2+}$ through voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels. The resulting elevation of intracellular calcium ($[Ca^{2+}]_i$) triggers additional $Ca^{2+}$ release from internal stores. Less well understood are the mechanisms involved in $Ca^{2+}$ mobilization from internal stores after activation of $Ca^{2+}$ influx. The mobilization process is known as calcium-induced calcium release (CICR). In this study, our goal was to investigate the existence of and the role of caffeine-sensitive ryanodine receptors (RyRs) in a rat pancreatic ${\beta}$-cell line, INS-1 cells. To measure cytosolic and stored $Ca^{2+}$, respectively, cultured INS-1 cells were loaded with fura-2/AM or furaptra/AM. $[Ca^{2+}]_i$ was repetitively increased by caffeine stimulation in normal $Ca^{2+}$ buffer. However, peak $[Ca^{2+}]_i$ was only observed after the first caffeine stimulation in $Ca^{2+}$ free buffer and this increase was markedly blocked by ruthenium red, a RyR blocker. KCl-induced elevations in $[Ca^{2+}]_i$ were reduced by pretreatment with ruthenium red, as well as by depletion of internal $Ca^{2+}$ stores using cyclopiazonic acid (CPA) or caffeine. Caffeine-induced $Ca^{2+}$ mobilization ceased after the internal stores were depleted by carbamylcholine (CCh) or CPA. In permeabilized INS-1 cells,$Ca^{2+}$ release from internal stores was activated by caffeine, $Ca^{2+}$, or ryanodine. Furthermore, ruthenium red completely blocked the CICR response in perrneabilized cells. RyRs were widely distributed throughout the intracellular compartment of INS-1 cells. These results suggest that caffeine-sensitive RyRs exist and modulate the CICR response from internal stores in INS-1 pancreatic ${\beta}$-cells.
Objective: A case report on the improvement of sleep disorders using Ortho-Cellular Nutrition Therapy (OCNT) Methods: The study subject is a Korean woman in her 40s who is very sensitive to caffeine and suffers from sleep disorders. Results: She no longer complained of discomfort due to sleep disorders after undergoing OCNT. Conclusion: OCNT can be helpful in the treatment of patients with sleep disorders.
Kim, Won-Jae;Lee, Jong-Un;Park, Yong-Hyun;Nam, Sang-Chae
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제1권5호
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pp.529-535
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1997
The present study was aimed at investigating whether the vascular calcium regulation is altered in hypertension. Two-kidney, one clip (2K1C) and deoxycorticosterone acetate (DOCA)-salt hypertension were made in rats, and their thoracic aortae were taken 4 weeks later. The isometric contractile response and calcium uptake of the endothelium-denuded aortic preparations were determined. Caffeine ($0.1{\sim}35\;mmol/L$) induced a greater contraction in 2K1C and DOCA-salt hypertension than in normotensive control. When the vascular calcium store was functionally-depleted by a repeated exposure to caffeine, it took longer to reload the store and to resume the initial contraction force in response to caffeine in both 2K1C and DOCA-salt hypertension. The vascular $^{45}Ca$ uptake following the functional depletion of the cellular store was also greater in both models of hypertension than in control. Ryanodine, calcium channel activator of the sarcoplasmic reticulum, attenuated the restoration of caffeine-induced vascular contraction, which was not affected by either 2K1C or DOCA-salt hypertension. Nifedipine, an L-type $Ca^{2+}$ channel blocker, attenuated the restoration of caffeine-induced contraction, which was not affected by DOCA-salt hypertension, but was more pronounced in 2K1C hypertension. Nifedipine also diminished the vascular $^{45}Ca$ uptake, which was not affected by DOCA-salt hypertension, but was more pronounced in 2K1C hypertension. Ouabain, a $Na^+,\;K^+-ATPase$ inhibitor, increased the caffeine-induced contraction by a similar magnitude in control and 2K1C hypertension, which was, however, markedly attenuated in DOCA-salt hypertension. Ouabain enhanced the vascular $^{45}Ca$ uptake, the degree of which was not affected by 2K1C hypertension, but was markedly attenuated in DOCA-salt hypertension compared with that in control. Cyclopiazonic acid, a selective inhibitor of $Ca^{2+}-ATPase$ of the sarcoplasmic reticulum, attenuated the restoration of caffeine-induced contraction, which was not affected by 2K1C hypertension, but was more marked in DOCA-salt hypertension. These results suggest that the increased vascular calcium storage may be attributed to an enhanced calcium influx in 2K1C hypertension, and to an impaired $Na^+-K^+$ pump activity of the cell membrane and subsequently increased calcium pump activity of the cellular store in DOCA-salt hypertension.
During depolarization, extrusion of $Ca^{2+}$ from sarcoplasmic reticulum through forward-mode $Na^+-Ca^{2+}$ exchange was studied in the rat ventricular myocytes patch-clamped in whole-cell configuration. In order to confine the $Ca^{2+}$ responses in a micro-domain by limiting the $Ca^{2+}$ diffusion time, rat ventricular myocytes were dialyzed with high (14 mM) EGTA. $K^+$ current was suppressed by substituting KCl with 105 mM CsCl and 20 mM TEA in the pipette filling solution and by omitting KCl in the external Tyrode solution. $Cl^-$ current was suppressed by adding 0.1 mM DIDS in the external Tyrode solution. During stimulation roughly mimicking action potential, the initial outward current was converted into inward current, $47{\pm}1%$ of which was suppressed by 0.1 mM $CdCl_2.$ 10 mM caffeine increased the remaining inward current after $CdCl_2$ in a cAMP-dependent manner. This caffeine-induced inward current was blocked by $1\;{\mu}M$ ryanodine, $10\;{\mu}M$ thapsigargin, 5 mM $NiCl_2,$ or by $Na^+\;and\;Ca^{2+}$ omission, but not by $0.1\;{\mu}M$ isoproterenol. The $I{\sim}V$ relationship of the caffeine-induced current elicited inward current from -45 mV to +3 mV with the peak at -25 mV. Taken together, it is concluded that, during activation of the rat ventricular myocyte, forward-mode $Na^+-Ca^{2+}$ exchange extrudes a fraction of $Ca^{2+}$ released from sarcoplasmic reticulum mainly by voltage-sensitive release mechanism in a micro-domain in the t-tubule, which is functionally separable from global $Ca^{2+}{_i}$ by EGTA.
Pang, Minyeong;Lee, Jaehyeok;Jeon, Ji-Hyeon;Song, Im-Sook;Han, Young Taek;Choi, Min-Koo
Mass Spectrometry Letters
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제12권4호
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pp.200-205
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2021
Polynemoraline C, a pyridocoumarin alkaloid, exhibits anticholinergic, anti-inflammatory, antitumor, and antimicrobial activities. A sensitive analytical method of polynemoraline C in mouse plasma was developed and validated using liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). Polynemoraline C and 13C-caffeine (internal standard) in mouse plasma were extracted using a liquid-liquid extraction method coupled with ethyl acetate. This extraction method resulted in high and reproducible extraction recovery in the range of 73.49%-77.31% with no interfering peaks around the peak retention time of polynemoraline C and 13C-caffeine. The standard calibration curves for polynemoraline C were linear over the range of 0.5-200 ng/mL with r2 > 0.985. The accuracy, precision, and the stability of the data were within acceptable limits on the FDA guideline. After intravenous and oral administration of polynemoraline C at doses of 5 and 30 mg/kg, respectively, the present method was successfully applied to the pharmacokinetic study of polynemoraline C. Polynemoraline C in mouse plasma showed a multi-exponential elimination pattern with a high volume of distribution values. This compound's absolute oral bioavailability was found to be 17.0%. Polynemoraline C's newly developed LC-MS/MS method can be used for further studies on the efficacy, toxicity, and biopharmaceutics of polynemoraline C, as well as its pharmacokinetic studies.
Voltage-sensitive release mechanism was pharmacologically dissected from the $Ca^{2+}-induced\;Ca^{2+}\;release$ in the SR $Ca^{2+}$ release in the rat ventricular myocytes patch-clamped in a whole-cell mode. SR $Ca^{2+}$ release process was monitored by using forward-mode $Na^+-Ca^{2+}$ exchange after restriction of the interactions between $Ca^{2+}$ from SR and $Na^+-Ca^{2+}$ exchange within micro-domains with heavy cytosolic $Ca^{2+}$ buffering with 10 mM BAPTA. During stimulation every 10 s with a pulse roughly mimicking action potential, the initial outward current gradually turned into a huge inward current of $-12.9{\pm}0.5\;pA/pF$. From the inward current, two different inward $I_{NCX}s$ were identified. One was $10\;{\mu}M$ ryanodine-sensitive, constituting $14.2{\pm}2.3%$. It was completely blocked by $CdCl_2$ (0.1 mM and 0.5 mM) and by $Na^+-depletion$. The other was identified by 5 mM $NiCl_2$ after suppression of $I_{CaL}$ and ryanodine receptor, constituting $14.8{\pm}1.6%$. This latter was blocked by either 10 mM caffeine-induced SR $Ca^{2+}-depletion$ or 1 mM tetracaine. IV-relationships illustrated that the latter was activated until the peak in $30{\sim}35\;mV$ lower voltages than the former. Overall, it was concluded that the SR $Ca^{2+}$ release process in the rat ventricular myocytes is mediated by the voltage-sensitive release mechanism in addition to the $Ca^{2+}-induced-Ca^{2+}\;release$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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