Subtilisin YaB, produced by alkalophilic Bacillus strain YaB, is an extracellular alkaline serine protease having 55% homology to subtilisin BPN'. It is synthesized as a 378-amino acid preproenzyme and secreted into the culture medium as a 265-amino acid mature protease. To examine the role of pro-sequence for the secretion of subtilisin YaB, we have studied the expression, in Bacillus subtilis, of a mutant preprosubtilisin YaB in which active site Ser214 is substituted with Cys. The use of a six protease-deficient strain, WB600, was required for its efficient production. The prosubtilisin YaB, thus produced, was indeed secreted into the culture medium and was processed to its mature form upon treatment with exogenously added active subtilisin YaB. From these results, we have concluded that the processing of pro-sequence is not essential for the secretion of the enzyme.
The effects of inorganic salts and feather concentrations on pretense production by Bacillus megaterium F7-1 were investigated. Pretense production was dependent on the presence of phosphates in the medium. Supplementation of medium with calcium ion slightly increased protease production. The highest protease production was obtained at $1.4\%$ feather. The optimal medium contained $2.0\%$ glucose, $0.8\%$ skim milk, $0.06\%\;K_{2}HPO_{4}\%,\;0.04\%\;KH_{2}PO{4},\;0.06\%\;NaCl,\;0.03\%\;MgCl_{2}\cdot6H_{2}O,\;0.002\%\;CaCl_{2}\cdot2H_{2}O,\;and\;1.4\%$ whole feather. By using this optimized medium, increased production of the protease was achieved compared with the cases of using basal medium.
Alkaline protease producing bacteria were isolated from soil and identified as Bacillus sp. CW-1121. It was found that the production of alkaline protease reached to maximum in 5 day of fermentation at 4$0^{\circ}C$. The enzyme was purified by ammonium sulfate precipitation, gel filtration on Sephadex G-150 and DEAE-cellulose ion-exchange chromatography. The homogeneity of the purified enzyme was verified by polyacrylamide gel electrophoresis. The enzyme was purified 5.72 fold and yield of the enzyme purification was 16.71%. When the purified enzyme was applied to sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis, the molecular weight was estimated to be 55, 000.
한국 전통 메주로부터 분리 동정한 Bacillus subtilis PCA20-3이 생산하는 protease의 생산조건과 특성을 조사하였다. Protease의 생산 최적조건을 0.2% soytone, 2% starch, 0.1% $(NH_4)_2SO_4,\;0.2%\;CaCl_2,\;0.01%\;yeast\;extract,\;0.1%\;K_2HPO_4,\;0.1%\;KH_2PO_4$, pH 7.0, 30에서 20시간이었다. 효소의 최적작용 pH와 온도는 6.0-11.0, $55^{\circ}C$였고 pH $6.0{\sim}11.0$의 범위와 $50^{\circ}C$이하에서 안정하였다. 금속이온중 $Fe^{(2+)}$와 $Cu^{(2+)}$에 의해 효소활성이 저해되었다. 2mM의 phenymethanesulfonyl fluoride에 의해 89.2%의 활성이 저하되어, 활성 serine을 가진 serine protease임이 시사되었다. 조효소액의 Km값은 $5.0{\times}10^{(-4)}M,\;V_(max)$값은 $100\;{\mu}g/min$이었으며 bovine serum albumin, isolated soybean protein 보다 casein에 대해 초기 가수분해력이 높은 것으로 나타났다.
저염상태에서 속성 발효를 통한 멸치 어간장의 대량 생산을 위하여 시중 어간장에서 단백질 분해효소 생산이 우수한 균주를 분리 동정하여, B. amyloliquefaciens HTP-8로 명명하였다. 효소생산을 위한 배양 최적온도, 초기 pH, 그리고 배양시간은 각각 $30^{\circ}C$, pH 7.0과 3일이었다. Jar fermenter 배양시 pH를 7.0으로. 조절한 경우가 조절하지 않은 경우에 비해 효소활성이 최대에 이르는 시간이 단축되었다. 효소의 부분정제는 조효소액을 80% ammonium sulfate에 의한 염석과 CM-Sephadex C-50을 이용하여 정제한 결과, 수율이 0.4%, 정제배수가 43.0배였다. 정제효소의 최적 pH와 온도는 pH 10.0과 $50^{\circ}C$였으며, pH 7.0~l2.0의 pH 범위와 $40^{\circ}$ 이하에서 안정하였다. 금속이온 중 $Ag^{+}$ /, $Ba^{2+}$ /에 의하여 효소활성이 저해되었다. 한편, 본 효소는 PMSF에 의하여 선택적으로 활성이 억제됨으로써 활성부위에 serine을 가진 serine protease에 속하는 것으로 판단되었다.
the Bacillus subtilis LY-353 which secretes the protease isolated from seafoods. The opti-mum culture condition for production of protease from B. subtilis LY-353 was as follows ; tem-perature 35$^{\circ}C$ pH 7.5 salt concentration 1.0% The purification steps involved ammonium sulfate fractionation DEAE-Sephadex A-50 column chromatography and Sephadex G-100 gel filtration A 7.33 fold purification and 6.55 yield of protease was obtained from culture broth, The optimum pH and temperature for the enzyme action were pH7.5 and 55$^{\circ}C$ respecti-bely.
In this study, Bacillus licheniformis cells were immobilized by entrapment in calcium alginate beads and were used for production of alkaline protease by repeated batch process. In order to increase the stability of the beads, the immobilization procedure was optimized by statistical full factorial method, by which three factors including alginate type, calcium chloride concentration, and agitation speed were studied. Optimization of the enzyme production medium, by the Taguchi method, was also studied. The obtained results showed that optimization of the cell immobilization procedure and medium constituents significantly enhanced the production of alkaline protease. In comparison with the free-cell culture in pre-optimized medium, about 7.3-fold higher productivity was resulted after optimization of the overall procedure. Repeated batch mode of operation, using optimized conditions, resulted in continuous production of the alkaline protease for 13 batches in 19 days.
To improve the quality of traditional kochujang, strains with high protease and amylase activity were isolated and identified from Sunchang traditional kochujang. Twenty-three strains strongly producing protease and 16 strains strongly producing $\alpha$- and $\beta$-amylase were isolated by using 1% isolated soy protein agar medium and 2% starch agar medium, respectively. Protease activities of the IA7, I5, and IA2 strain were 22.5, 21.2, and 20.6 unit/mL, respectively, and were higher than those of the other strains. Stains with high $\alpha$-amylase activity included K9 (967.8 unit/mL), K14 (828.3 unit/mL), K13 (662.5 unit/mL), K8 (601.5 unit/mL), and K11 (405.9 unit/mL). The $\beta$-amylase activity of the K11 strain was the highest, 34.3 unit/mL, among the isolated strains. Based on morphological, physiological properties, and API 50CHB-kit test for assimilation of 49 carbohydrates, 8 strains selected according to protease, $\alpha$-amylase, and $\beta$-amylase activities were tentatively identified as Bacillus megaterium (IA2), Bacillus subtilis (IA7, 15), Bacillus amyloliquefaciens (K8, K9, K11, and K13), and Bacillus stearothermophillus (K14). The IA7, 15, and K11 strains were finally identified as B. subtilis (99% ID) based on 16S rDNA sequencing.
Bacillus subtillis YG-95가 생산하는 protease를 ammonium sulfate$(35{\sim}85%)$ precipitation, DEAE-separose 6B, sephadex G-100을 통해 분리, 정제하였고 정제된 효소의 특성을 조사하였다. SDS-PAGE로 확인된 효소의 분자량은 약 43 kilodalton이었다. 효소반응의 최적 pH 및 최적온도는 각각 약 pH 10.0와 $55^{\circ}C$이었으며, 효소는 $pH\;5{\sim}12$ 까지 넓은 pH범위에서 안정성을 보였고, $45^{\circ}C$까지의 온도에서 안정하였다. 본 효소는 $Fe^{3+}$와 $Al^{3+}$에 의해서 활성이 저해되었으며, 저해제 중에서는 O-Phenanthroline, PMSF, SDS에 의해서 80%이상 저해를 받았고 SPI에 대한 기질 친화도는 $K_m$은 1.28 mg/mL이었다.
The study was carried out to investigate for the property of Bacillus strains, on the native growthed microflora in Korean native soybean paste, and Bacillus strains of the high enzyme producing, were selected and identificated, from the microflora, that is, identificated Bacillus strains beared resemblance to B. subtills, on the colony, appearance was pellicle, surface's spreading, color creamy-thin browned, colony elevation flated, and edge lobated, the identfficated B. subtills strain named for the B. subtilis SCF. For the protease activity of B. subtilis SCF, according to the variation with pH, the pH stability was pH 7~8, and on the its protease activity, optimum temperature was 40$\circ$C, on the other hand, temperature of the highest stability of the protease was 50$\circ$C.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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