The neurotoxin of Clostridium botulinum type B was purified from a liquid culture. The purification steps consist of ammonium sulfate precipitation of whole culture, treatment of Polymin P(0.15%, v/v), gel filtration on Sephadex G-100 at pH5.6 and DEAE-Sephadex charomatography at pH8.0. The procedure recovered 17% of the toxin assayed in the starting culture. The toxin was homogeneous by sodium dodecyl sulfate(SDS)-polyacrylamide gel electrophoresis and had a molecular weight of 163, 000. Subunits of 106, 000 and 56, 000 molecular weight were found when purified toxin was treated with a disulfide-reducing agent and electro phoresed on SDS-polyacrylamide gels.
In this study, occurrence of canine brucellosis was surveyed in kennels, indoor dogs and stray dogs in Korea, and infrequent restriction site-polymerase chain reaction (IRS-PCR) was applied to analyze DNA polymorphism of Brucella canis (B. canis) isolates. Among a total of 501 dogs tested, B. canis antibodies by both rapid screening agglutination with 2-mercaptoethanol (2-ME RSAT) and immunochromatographic assay were detected in only 14.1% of kennel dogs. There were no seropositive cases in indoor dogs and stray dogs. DNA polymorphism was observed in 16 B. canis isolates by the IRS-PCR. Sixteen isolates were tested with primers, PsalA, PsalC, PsalG and PsalT, and different primers produced different DNA patterns. In regard to the IRS-PCR pattern of 16 isolates, 9 (56.3%) belonged to the IRS-PCR type I. The remaining 7 were differentiated as type II, III and IV. An application of the primer PsalC provided discrimination between B. canis isolated in 2005 and others.
The cloned B. subtilis cdd gene encoding cytidine/2'deoxycytidine deaminase (EC 3.5.4.5) was expressed in the cdd deficient B. subtilis mutant ED40. The gene was isolted from the cdd complementing plasmid pSO21, and inserted into the EcoR1/Pvu1 sites of pGB215-110 ΔB, which is a temperature sensitivie E. coli-B. subtilis shuttle vector. In the transformed B. subtilis ED4O harboring the resulting plasmid pSO100, cdd was expressed at several hundred fold elevated levels, and the cytidine deaminase activity in E. coli containing pSO100 was twice the level in B. subtilis/pSO0100. The Km value for cytidine of the partially purified enzyme is 1.88$\times$10$^{-4}$M at pH 7.0 and the V$_{max}$ = 11.1 $\mu$mol/min/mg of protein. The enzyme was completely inhibited by 0.1M mercaptoethanol and HgCl$_2$. The inhibition by p-chrolomercurybenzoic acid showed a Ki = 5 uM. These results suggest that sulfhydryl reagents block an active site thiol group, and/or disturb the formation of the tetrameic holoenzyme.
Fibrinolytic enzyme (FE-2) was purified from the fruiting bodies of Tricholoma saponaceum using DEAE-Cellulose chromatography and Mono-S column chromatography, The enzyme has a molecular weight of 18.23 kDa and include Zn$^{2+}$ ion as found by ICP/MS. The N-terminal amino acid sequence of the enzyme was A-L-Y-V-G-X-S-P-X-Q-Q-S-L-L-V It has a pH optimum at pH 7.5, suggested that FE-2 was a neutral pretense. The activity of FE-2 was highly inhibited by EDTA and 1,10-phenanthroline, indicating that the enzyme is a metalloprotease. The activity of FE-2 was increased by $Mg^{2+}$, Zn$^{2+}$, Fe$^{2+}$, and Co$^{2+}$, but the enzyme activity was totally inhibited by Hg$^{2+}$. No inhibition was found with PMSF, E-64, pepstatin and 2-mercaptoethanol. The enzyme hydrolyzed both $A\alpha$ and B$\beta$ chains of human fibrinogen. The $\gamma$ chain was resistant to hydrolysis by FE-2.
Stenotrophomonas sp. OK-5 capable of degrading TNT has been found to have three nitroreductase fractions designated as NTR fractions I, II, and III. NTR in a previous study. This study was attempted to reveal physiological and molecular characteristics of NTR fractions I, II, and III in strain OK-5. Several chemicals (e.g., EDTA, NaCl, dithiothreitol, $\beta$-mercaptoethanol) were tested for their effect on enzyme activity of NTRs, demonstrating that enzyme activities of NTR fractions I, II, and III from OK-5 were inhibited in the presence of $\beta$-mercaptoethanol. Substrate specificity test showed that NTR fractions I, II, and III all have over 70% enzyme activities for nitrobenzene or RDX as a substrate. N-terminal amino acid sequence of NTR fraction I from Stenotrophomonas sp. OK-5 was $^1MSDLLNADAVVQLFRTARDS^20$ and exhibited 70% sequence homology with that of NTR from Xanthomonas campestris. NTR I gene from Stenotrophomonas sp. OK-5 (SmOK5nrI) shared extensive sequence homology in deduced amino acid sequence of PCR product with NTRs from Xanthomonas campestris (81 %), X. axonopodis (75%), Streptomyces avermitilis(30%), whereas they had low homology with that from P. putida KT2440 (pnrB) (16%).
Cyclodextrin glucanotransferase from B. stearothermophilus KJ16 that can produce both cyclodextrin glucanotransferase and cyclodextrinase was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-cellulose chromatography, Sephadex G-100 chromatography, and FPLC. The molecular weight of the purifice enzyme was about 65,000 dalton by SDS-PAGE. The optimal pH and temperature were 6.0 and $60^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable at $50^{\circ}C$ for 1 hr and in the pH range of 5.5 and 8.5. Mercaptoethanol and dithiothreitol inhibited the enzyme activity strongly. The enzyme produced 60% cyclodextrin(CD) from 5% soluble starch with the $^{\alpha}$, $^{\beta}$, $^{\gamma}$-CD ratio of 42:46:12. Amylopectin was the most suitable substrate with 67% conversion to CD.
For the production of $B^{30}-homoserine$ insulin analog as a novel anti-diabetic drug, the fermentative study was attempted for the maximal gene expression of HTS-fused $B^{30}-homoserine$ insulin precursor in the recombinant Escherichia coli cells. In a batch fermentation, the maximal production of insulin precursor as much as 38.95 mg/L-h, which occupied more than 12.8% of total cell protein. was achieved when the gene expression was induced by 0.5 mM IPTG at the middle logarithmic growth phase. The HTS-fused $B^{30}-homoserine$ insulin precursor was recovered from a batch culture through the processes of cell harvest, collection of insoluble fraction after sonication and purification by nickel affinity column chromatography. The isolated insulin precursor was 14 mg/L with a recovery yield of 35.9% of expressed gene product. The insulin A and B chain mixture was recovered after the insulin precursor was subjected to CNBr cleavage and purified by nickel affinity column chromatography. The isolated insulin chains were then sulfitolyzed with sodium thiosulfat and sodium tetrathionate, and reconstituted to insulin analog with ${\beta}-mercaptoethanol$, followed by purification with CM-Sepharose C-25 column chromatography.
This study was carried out to develope enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for detection of canine brucellosis in dogs experimentally inoculated with Brucella abortus 1119-3 and B. canis RM666. Groups A, B and C of dogs (each group consisting of three dogs) were orally inoculated with approximately $5{\times}10^9$ colony-forming units of B. abortus and B. canis, and with sterile pyrogen-free PBS, respectively. The animals were monitored at regular intervals upto the 12th week post inoculation (PI) by standard tube agglutination test (STAT), plate agglutination test (PAT), Rose Bengal test (RBT), 2-mercaptoethanol rapid slide agglutination test (2ME-RSAT) and ELISA. The induced antibody titers in group A dogs were detected from the first week PI to the eighth week PI in STAT, PAT and RBT using the inactivated whole cells of B. abortus 1119-3 as antigens, while no sera in groups B and C dogs reacted with the antigens. In 2ME-RSAT using whole cells of B. canis M-strain as antigens, the induced antibody titers in group B dogs were observed at the second week PI and persisted for the 12th week PI, while sera of groups A and C dogs did not react with the whole cells. In ELISA using cytoplasmic fractions antigen of B. abortus 1119-3, the mean optical density of antibodies in groups A and B was detected from the first and second weeks PI, respectively, and persisted for 12th week PI, while sera of group C did not cross-react with the fractions antigen. However, in ELISA using the hot saline extracts of B. canis M- as an antigen, the induced antibody titers in only group B dogs were detected from second week PI and persisted for until the end of this study. These results indicate that the ELISA using B. abortus 1119-3 cytoplasmic fractions as antigens can be a good candidate for detection of brucellosis by B. abortus as well as B. canis in dogs.
Visible-light irradiation of MeCN solution containing di(hydroxo)metallo(tetraphenyl)porphyrin complex $(tppM(OH)_2$: 1a; $M=Sb(V)^+Br^-$, 1b; $M=P(V)^+Cl^-$, 1c; M=Ge(IV)) and 2-mercaptoethanol (2-ME) as a substrate under aerated condition gave bis(2-hydroxyethyl)disulfide (2-HEDS) as an oxidative product of 2-ME. It is indicated that the oxidation of 2-ME should proceed with a photocatalytic process by 1, because the turn over number (TON) for the formation of 2-HEDS was over unit. The TON was determined to be 642 as a maximum value when 1a was used as a sensitizer. The formation of 2-HDES was extremely slow under argon atmosphere. The fluorescence of 1 was not quenched by 2-ME at all, and the free energy change (${\Delta}G$) with electron transfer (ET) from 2-ME to excited triplet state of $1(^31^*)$ was estimated as a negative value. The quenching rate constant ($k_r$) of $^31^*$ by 2-ME, obtained by the kinetics for the formation of 2-HEDS, strongly depends on ${\Delta}G$. These findings indicate that 1-sensitized oxidation was initiated by photoinduced ET from 2-ME to $^31^*$ to generate both radical cation of 2-ME ($2-ME^{+\bulle}$) and porphyrin radical anion ($1^{-\bulle}$), resulting that the formation of 2-HEDS can be proceeded by the dimerization of $2-ME^{+\bulle}$, and through a catalytic cycle due to returning to 1 by the ET from $1^{-\bulle}$ to molecular oxygen.
Human insulin is composed of 21 amino acids of an A-chain and 30 amino acids of a B-chain. This is the protein hormone that has the role of blood sugar control. When the recombinant human proinsulin is expressed in Escherichia coli, a serious problem is the formation of an inclusion body. Therefore, the inclusion body must be denatured and refolded under chaotropic agents and suitable reductants. In this study, H27R-proinsulin was refolded from the denatured form with β-mercaptoethanol and urea. The refolding reaction was completed after 15 h at $15^{\circ}C$, whereas the reaction at $25^{\circ}C$ was faster than that at $15^{\circ}C$. The refolding yield at $15^{\circ}C$ was 17% higher than that at $25^{\circ}C$. The refolding reaction could be carried out at a high protein concentration (2 g/l) using direct refolding without sulfonation. The most economical and optimal refolding condition for human preproinsulin was 1.5 g/l protein, 10 mM glycine buffer containing 0.6 M urea, pH 10.6, and 0.3 mM β-mercaptoethanol at $15^{\circ}C$ for 16 h. The maximum refolding yield was 74.8% at $15^{\circ}C$ with 1.5 g/l protein. Moreover, the refolded preproinsulin could be converted into normal mature insulin with two enzymes. The average amount of human insulin was 138.2 g from 200 L of fermentation broth after enzyme reaction with H27R-proinsulin. The direct refolding process for H27R-proinsulin was successfully set up without sulfonation. The step yields for refolding and enzyme reaction were comparatively high. Therefore, our refolding process for production of recombinant insulin may be beneficial to the large-scale production of other biologically active proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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