An HPLC assay method of a drug to be applied to the pharmacokinetic studies of the drug should be completely validated. The validation process for an HPLC assay method in a biological sample was discussed using the data obtained from the development of HPLC method for the simultaneous quantitation of verapamil and norverapamil in human serum. The validation criteria included were specificity, linearity, accuracy, precision, sensitivity, recovery, drug stability, and ruggedness of an assay method.
세포배양 유래 생물의약품 생산 공정에서 다양한 바이러스가 오염된 사례가 있기 때문에 바이러스 안전성 검증이 필수적이다. MVM은 동물 세포주와 동물 세포 배양 공정에 오염되는 대표적인 바이러스이다. 세포배양 유래 생물의약품의 MVM 안전성을 확보하기 위해, 세포주, 원료물질, 제조공정, 완제품에서 MVM을 정량적으로 검출하고, 제조공정에서 MVM 제거 검증을 위한 시험법으로 활용이 가능한 real-time PCR 시험법을 확립하였다. MVM에 특이적인 primer를 선별하였으며, 형광염료 SYBR Green I을 사용하여 MVM DNA 정량 검출 시험법을 최적화하였다. 세포배양 법에 의한 감염역가와 비교한 결과 real-time PCR 민감도는 $6{\times}10^{-2}TCID_{50}/mL$이었다. 확립된 시험법의 신뢰성(reliability)을 보증하기 위해 시험법 검증을 실시한 결과 특이성(specificity)과 재현성(reproducibility)이 우수함을 확인하였다. 확립된 real-time PCR을 생물의약품 제조공정 검증에 적용할 수 있는지 확인하기 위하여 인위적으로 MVM을 오염시킨 CHO 세포에서 MVM검출 시험을 실시한 결과 MVM을 감염시킨 CHO 세포와 세포배양 상청액에서 MVM을 정량적으로 검출할 수 있었다. 또한 바이러스 필터 공정에서 MVM제거 효과를 감염역가 시험법과 비교 검증한 결과 더 높은 민감도로 빠른 시간에 동일한 결과를 얻을 수 있었다. 위와 같은 결과에서 확립된 MVM real-time PCR시험법은 생물의약품 안전성 보증을 위한 세포주 검증, 생물의약품 생산 공정 검증, 바이러스 제거 공정 검증 등에서 감염역가 시험법을 대신할 수 있는 신속하고, 특이성과 민감성이 우수한 시험법임을 확인하였다.
A kinetic assay was carried out in order to compare the ability of detection for prekallikrein activator(PKA) in plasma-derived products with that of an endpoint assay and a commercial method. Using these methods, 9 human albumin preparations were assayed and compared to each other. The coefficient of variation between the Kinetic assay and the end point assay was found within 6.6% and this result showed that two methods were highly correlative and the end point assay could act as a replacement of the kinetic assay. Another important goal of this study was to investigate the reproducibility among laboratories on the kinetic assay. A collaborative study was performed to validate the kinetic method with intra and inter assays. The coefficient of variation for the intra assay of each laboratory was less than 4% and that for between individuals in the inter assay was 4.1%. These results revealed that the kinetic assay showed good reproducibility. The contents of PKA in plasma-derived products were also determined by the kinetic assay. As a result, it was found that trace amounts of PKA were present in 32 human immunoglobulin preparations, however the average concentration of PKA in 171 albumin preparations was 5.8 IU/mL.
Cha, Jihei;Kim, Han Wool;Lee, Ji Hyen;Lee, Soyoung;Kim, Kyung-Hyo
Journal of Korean Medical Science
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제33권51호
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pp.340.1-340.14
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2018
Background: Various pneumococcal vaccines have been evaluated for immunogenicity by opsonophagocytic assay (OPA). A multiplexed OPA (MOPA) for 13 pneumococcal serotypes was developed by Nahm and Burton, and expanded to 26 serotypes in 2012. The development of new conjugate vaccines with increased valence has necessitated expanded MOPAs to include these additional serotypes. In this study, we validated this expanded MOPA platform and applied to measure antibodies against 11 additional serotypes (2, 8, 9N, 10A, 11A, 12F, 15B, 17F, 20B, 22F, and 33F) in human sera. Methods: All materials, including serum, complement, bacterial master stocks, and HL-60 cells, were evaluated for assay optimization. Following optimization, the assay was validated for accuracy, specificity, and intra- and inter-assay precision with sera from adult donors following standard protocols. The assay was applied to evaluate functional antibodies of 42 sera immunized with 23-valent pneumococcal polysaccharide vaccine (PPV23). Results: The expanded MOPA platform was specific for all serotypes, with the exception of serotype 20. The assay results were highly correlated with those obtained from single-serotype OPA, indicating acceptable accuracy. The coefficients of variation were 7%-24% and 13%-39% in tests of intra- and inter-assay precision, respectively, using three quality-control samples. A MOPA that included 11 additional serotypes in the PPV23 was established and validated with respect to accuracy, specificity, and precision. The opsonic indices of immune sera were obtained using this validated assay. Conclusion: The expanded MOPA will be useful for evaluation of the immunogenicity of PPV23 and future conjugate vaccine formulations.
Immunochemical assay, ELISA for small molecules such as pesticides are rapid, sensitive, cost effective and can easily analyze with large samples. ELISA is one of several powerful biotechnologies immediately applicable to pesticide analysis. This review lists the advantages and disadvantages of the ELISA and elucidate the steps in assay development using examples from this laboratory. The focus is primarily on hapten synthesis strategies, protein conjugation, Immunization, assay format, and assay validation.
The purposes of our study were to optimize the conditions of the screening and testing methods for endocrine disruptors, to characterize these assays using several compounds with well-defined endocrine activity, and to compare the sensitivity between these assays currently undergoing validation. Two in vitro test systems, MCF-7 cells proliferation (E-screen assay) and competitive binding to estrogen receptors (ER) were selected to evaluate the estrogenic effects. 17$\beta$-Estradiol (E2) and diethylstilbestrol (DES) were used as a positive control in vitro test. Also, E2 and ethinyl estradiol (EE) were used as a positive control in vivo uterotrophic assay. In in vitro test, E2 and DES showed a strong estrogenic response at concentration of 1.0 nM. In uterotrophic assay, E2 (0.3 $\mu\textrm{g}$/kg) and EE (0.3 $\mu\textrm{g}$/kg) produced a significant increase in uterus and vagina weight in both immature and ovariectomized rats. Although we did not com-pared the specificity between in vivo and in vitro assays, these assay systems may serve as a good tool for endocrine disruptors screening methods. Our data indicate that these assay systems exhibit some difference in their sensitivity to the same estrogenic compounds. Therefore, as a first rapid screening assay for estrogenic activity qf unknown chemicals, at least two assay systems should probably be carried out with a view of high sensitivity and standardization conditions. Also, a careful validation tests are necessary to obtain a reasonable degree of reproducibility.
Lee, GaJin;Choi, Min;Truong, Quoc-Ky;Mai, Xuan-Lan;Kang, Jong-Seong;Woo, Mi Hee;Na, Dong-Hee;Chun, In-Koo;Kim, Kyeong Ho
분석과학
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제30권3호
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pp.154-158
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2017
The Korean Pharmacopoeia (KP XI), British Pharmacopoeia (BP 2013) and Japanese Pharmacopoeia contain monographs for the quality control of raw fusidate sodium and its formulations using high performance liquid chromatography (HPLC). However, the assay method for the determination of fusidate sodium in commercial tablets is titration which is less specific than HPLC. In this study, we present an alternative HPLC method for quantitation of fusidate sodium in tablets. Method validation was performed to determine linearity, precision, accuracy, system suitability, and robustness. The linearity of calibration curves in the desired concentration range was high ($r^2=0.9999$), while the RSDs for intra- and inter-day precision were 0.25-0.37 % and 0.11-0.60 %, respectively. Accuracies ranged from 99.46-100.85 %. Since the system suitability, intermediate-precision and robustness of the assay were satisfactory, this method will be a valuable addition to the Korean Pharmacopoeia (KP XI).
세포배양 유래 생물의 약품 생산 공정에서 다양한 바이러스가 오염된 사례가 있기 때문에 바이러스 안전성 검증이 필수적이다. Reovirus type 3 (Reo-3)는 동물 세포주와 동물 세포 배양 공정에 오염되는 대표적인 바이러스이다. 세포배양 유래 생물의약품의 Reo-3 안전성을 확보하기 위해, 세포주, 원료물질, 제조공정, 완제품에서 Reo-3를 정략적으로 검출하고, 제조공정에서 Reo-3 제거 검증을 위한 시험법으로 활용이 가능한 real-time RT-PCR 시험법을 확립하였다. Reo-3에 특이적인 primer를 선별하였으며, 형광염료 SYBR Green I을 사용하여 Reo-3 RNA 정략 검출 시험법을 최적화하였다. 세포배양법에 의한 감염역가와 비교한 결과 real-time RT-PCR 민감도는 $3.2{\times}10^0\;TCID_{50}/ml$이었다. 확립된 시험법의 신뢰성(reliability)을 보증하기 위해 시험법 검증을 실시한 결과 특이성(specificity)과 재현성(reproducibility)이 우수함을 확인하였다. 확립된 real-time RT-PCR을 생물의약품 제조공정 검증에 적용할 수 있는지 확인하기 위하여 인위적으로 Reo-3를 오염시킨 CHO 세포에서 Reo-3 검출 시험을 실시한 결과 Reo-3를 감염시킨 CHO 세포와 세포배양 상청액에서 Reo-3를 정략적으로 검출할 수 있었다. 또한 바이러스필터 공정에서 Reo-3제거 효과를 감염역가 시험법과 비교 검증한 결과 더 빠른 시간에 동일한 결과를 얻을 수 있었다. 위와 같은 결과에서 확립된 Reo-3 real-time RT-PCR 시험법은 생물의약품 안전성 보증을 위한 세포주 검증, 생물의 약품 생산 공정 검증, 바이러스 제거 공정 검증 등에서 감염 역가 시험법을 대신할 수 있는 신속하고, 특이성과 민감성이 우수한 시험법임을 확인하였다.
Kim, DongHyeon;Rhee, Hee Jae;Mai, Xuan-Lan;Kang, Jong-Seong;Woo, Mi Hee;Na, Dong-Hee;Chun, In-Koo;Kim, Kyeong Ho
분석과학
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제31권3호
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pp.107-111
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2018
Currently, ultraviolet-visible spectrophotometry and titration methods are used for assay tests of tramadol hydrochloride injection and raw material in the Korean Pharmacopoeia XI (KP XI). Titration has also been used in the British Pharmacopoeia (BP 2013) for the assay test of tramadol hydrochloride, and the HPLC assay for tramadol hydrochloride raw material has been used in the United States Pharmacopeia (USP 39). In this study, we developed an alternative HPLC assay method for tramadol hydrochloride injection that is up to date and specific, and employs the same method as tramadol hydrochloride capsules. Validation of the HPLC method was conducted to determine linearity, precision, accuracy, system suitability, and robustness. The linearity of the calibration curves in the desired concentration range was good ($r^2$ > 0.9999). RSDs of intra-day precision obtained were 0.05-0.08 % and inter-day precision obtained were 0.08-0.19 %. Accuracy was obtained with recoveries in the range of 98.16 % and 100.90 %. As a result of the system's suitability, the RSD of both retention time and the peak area obtained were 0.07 %. The values of the plate number and tailing factor of tramadol hydrochloride obtained were 7076 and 1.16, respectively. Because of the intermediate precision and robustness of the developed assay, it is expected to become a valuable tool for revising the Korean Pharmacopoeia (KP XI).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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