EphA2 has been implicated in amplifying ErbB2 tumorigenic signaling. One protein that interacts with EphA2 is the Anks1a PTB adaptor. However, the precise role of Anks1a in EphA2-mediated tumorigenesis is unclear. We demonstrated that Anks1a localizes to the ER upon phosphorylation and that the Ankyrin repeats and PTB of Anks1a bind to EphA2 and Sec23, respectively. Thus, Anks1a facilitates the selective packaging of EphA2 into COPII vesicles. Additionally, Anks1a knockout mice, a phenocopy of EphA2 knockout mice, exhibited markedly reduced ErbB2-induced breast tumorigenesis. Strikingly, ErbB2 did not localize to the cell surface following Anks1a knockdown in primary mammary tumor cells over-expressing ErbB2. Importantly, EphA2 was critical for stabilizing ErbB2 through complex formation, but its interaction with Anks1a also facilitated ErbB2 loading into COPII carriers. These findings suggest a novel role for Anks1a in the molecular pathogenesis of breast tumors and possibly other human diseases.
In this study, we examine whether a change in the protein levels for FOP in Ankyrin repeat and SAM domain-containing protein 1A (ANKS1A)-deficient ependymal cells affects the intraflagellar transport (IFT) protein transport system in the multicilia. Three distinct abnormalities are observed in the multicilia of ANKS1A-deficient ependymal cells. First, there were a greater number of IFT88-positive trains along the cilia from ANKS1A deficiency. The results are similar to each isolated cilium as well. Second, each isolated cilium contains a significant increase in the number of extracellular vesicles (ECVs) due to the lack of ANKS1A. Third, Van Gogh-like 2 (Vangl2), a ciliary membrane protein, is abundantly detected along the cilia and in the ECVs attached to them for ANKS1A-deficient cells. We also use primary ependymal culture systems to obtain the ECVs released from the multicilia. Consequently, we find that ECVs from ANKS1A-deficient cells contain more IFT machinery and Vangl2. These results indicate that ANKS1A deficiency increases the entry of the protein transport machinery into the multicilia and as a result of these abnormal protein transports, excessive ECVs form along the cilia. We conclude that ependymal cells make use of the ECV-based disposal system in order to eliminate excessively transported proteins from basal bodies.
Park, Sunjung;Lee, Haeryung;Lee, Jiyeon;Park, Eunjeong;Park, Soochul
Molecules and Cells
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제42권3호
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pp.245-251
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2019
Ependymal cells constitute the multi-ciliated epithelium, which lines the brain ventricular lumen. Although ependymal cells originate from radial glial cells in the perinatal rodent brain, the exact mechanisms underlying the full differentiation of ependymal cells are poorly understood. In this report, we present evidence that the Anks1a phosphotyrosine binding domain (PTB) adaptor is required for the proper development of ependymal cells in the rodent postnatal brain. Anks1a gene trap targeted LacZ reporter analysis revealed that Anks1a is expressed prominently in the ventricular region of the early postnatal brain and that its expression is restricted to mature ependymal cells during postnatal brain development. In addition, Anks1a-deficient ependymal cells were shown to possess type B cell characteristics, suggesting that ependymal cells require Anks1a in order to be fully differentiated. Finally, Anks1a overexpression in the lateral wall of the neonatal brain resulted in an increase in the number of ependymal cells during postnatal brain development. Altogether, our results suggest that ependymal cells require Anks1a PTB adaptor for their proper development.
Eph receptors and their ephrin ligands have been implicated in a variety of cellular processes such as cellular morphogenesis and motility. Our previous studies demonstrated that Odin, one of the Anks family proteins, functions as a scaffolding protein of the EphA8 signaling pathway leading to modulation of cell migration or axonal outgrowth. Here we show that WDR7 is associated with Odin and that it is possibly implicated in the EphA8 signaling pathway. WD40 repeats present in the COOH-terminal region of WDR7 appear to be crucial for its association with Odin, whereas the binding motif of Odin is located in between ankyrin repeats and PTB domain. Co-immunoprecipitation experiments revealed that association of WDR7 with Odin is enhanced by ephrin ligand treatment, possibly through forming large protein complexes including both EphA8 and ephrin-A5. Consistently, immunofluorescence staining experiments suggested that WDR7 constitute a component of the large protein complexes containing Odin, EphA8 and ephrin-A5. Taken together, our results suggest the WDR7-Odin complexes might be involved in the signaling pathway downstream of the EphA8 receptor.
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