Tae Jin Kim;Min Jae Kim;Yun Ji Kang;Ji Yeon Yoo;Jeong Hwan Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.3
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pp.371-377
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2023
In this study, a pepA gene encoding glutamyl (aspartyl)-specific aminopeptidase (PepA; E.C. 3.4.11.7) was cloned from Tetragenococcus halophilus CY54. The translated PepA from T. halophilus CY54 showed very low similarities with PepAs from Lactobacillus and Lactococcus genera. The pepA from T. halophilus CY54 was overexpressed in E. coli BL21(DE3) using pET26b(+). The recombinant PepA was purified by using an Ni- NTA column. The size of the recombinant PepA was 39.13 kDa as determined by SDS-PAGE, while its optimum pH and temperature were pH 5.0 and 60℃, respectively. In addition, the PepA was completely inactivated by 1 mM EDTA, indicating its metallopeptidase nature. The Km and Vmax of the PepA were 0.98 ± 0.006 mM and 0.1 ± 0.002 mM/min, respectively, when Glu-pNA was used as the substrate. This is the first report on PepA from Tetragenococcus species.
MRK-22, an inhibitor of aminopeptidase M was isolated from the culture broth of Streptomyces sp. SL20209. The structure of MRK-22 was defined to be 3-amino-2-hydroxy-5-methylhexanoyl-valyl-valine, des-$Asp^4$-amastatin, by spectroscopic analysis and this was also confirmed by solid phase synthesis of the inhibitor. The molecular formula and weight of MRK-22 were $C_17H_33N_3O_5$ and MW 359($M^+$), respectively, and its $IC_50$ value against hog kidney AP-M was 0.79 $\mu$ g/ml.
Valistatin, a new inhibitor of aminopeptidase M(AP-M) was discovered in the culture broth of Streptomyces sp. SL20209 isolated from a soil sample. The inhibitor was purified by extraction with n-butanol and the various column chromatographies, and then isolated as whitish powder. The $^1 H-and ^1 H, ^1 H-COSY$ NMR studies, amino acid analysis, and fragmentation patterns by FAB-MS suggested the presence of one 3-amino-2-hydroxy-4-phenylbutanoic acid and two valine residues in the inhibitor. Thus, the structure of valistatin was determined as 3-amino-2-hydroxy-4-phenylbutanoyl-valyl-valine. Valistatin has the molecular formular $C_20H_31N_3 O_5$ (MW 394), and its $IC_50$ value against hog kidney AP-M was determined to be 3.12 $mu g/ml$.
YUNG-HEE KHO;CHUNG, MYUNG-CHUL;HYO-KON CHUN;HO-JAE LEE;CHOONG-HWAN LEE,;SU-IL KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.5
no.4
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pp.213-217
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1995
The effect of inorganic phosphate on the fermentative production of aminopeptidase M inhibitors MR-387A and B by Streptomyces sp. SL-387 has been studied. With inorganic phosphate concentrations higher than 0.78 mM, an inverse correlation was found between the maximum inhibitor production and the initial phosphate concentration added. Growth sensitivity of this actinomycete to arsenate, a phosphate analogue, and the use of magnesium carbonate, a phosphate-trapping agent, suggested that the inhibitor formation was under phosphate repression. Exogenous ATP further increased the degree of phosphate interference in both phosphate-repressed and non repressed culture conditions. The use of a phosphate analogue and a protein synthesis inhibitor also suggested that the phosphate itself repressed inhibitor formation.
Maximum amount of the aminopeptidase M inhibitors produced by Streptomyces griseoplanus SL20209 in 500 ml-Erlenmeyer flask was accumulated after cultivation for 3 days at 28$\circ$C, thereafter the amount of inhibitors decreased slowly with a pH change to alkaline. Arabinose, xylose, mannose and soluble starch were good carbon sources for the production of the inhibitors. On the other hand, glucose was only good for the cell growth but potently inhibited the production of inhibitors. Natural organic nitrogen sources such as soybean meal, fish meal, gluten meal and peanut powder were good for the production of inhibitors, however, soytone, peptone and inorganic nitrogens such as NH$_{4}$C1 and NH$_{4}$NO$_{3}$ were poor. Inclusion of yeast extract (0.5%, w/v) or K$_{2}$HPO$_{4}$ (0.05%) into the production medium increased the production of inhibitors by accelerating cell growth. The production of inhibitors was slightly increased on the medium containing CaCO$_{3}$ (0.3%) and zeolite (0.5%), respectively. Optimal temperature and initial pH range for the production ot inhibitors were determined to be 28$\circ$C and 6.0-7.0, respectively. Employing two improved production media consisting of 3% arabinose or soluble starch, 2.5% soybean meal, 0.5% yeast extract, 0.05% K$_{2}$HP0$_{4}$, 0.1% CaCO$_{3}$ and 0.3% zeolite (pH 6.8), 1.8-fold increase in the amount of inhibitors was achieved, comparing with the basal medium used.
The effect of carbon and nitrogen sources on the production of novel aminopeptidase M inhibitors MR-387A and B by Streptomyces sp. SL-387 has been studied. High D-glucose and ammonia concentrations (5$\%$ and 1$\%$, respectively) exerted a negative influence on the inhibitor formation. The suppressive effect of glucose on the inhibitor formation is probably caused by an effect of medium pH rather than that of cyclic AMP. To establish the optimum conditions for inhibitor overproduction, various nitrogen sources and ammonium ion-trapping agents were examined. The use of ammonia slow-releasing nitrogen sources such as soybean meal and fish meal, or ammonium ion-trapping agents such as kaoline, celite, and natural zeolite achieved the enhancement of inhibitor production. These results also indicate that inhibitor formation is affected by ammonium ion repression.
Tae Jin Kim;Min Jae Kim;Yun Ji Kang;Ji Yeon Yoo;Jeong Hwan Kim
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.51
no.1
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pp.26-31
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2023
A map gene encoding methionyl-specific aminopeptidase (MAP; EC 3.4.11.18) was cloned from Tetragenococcus halophilus CY54. Translated amino acid sequence of CY54 MAP showed high similarities with those from Enterococcus faecalis (83.8%) and Streptococcus salivarius (62.2%) but low similarities with MAPs from Lactobacillus and Lactococcus genera. The map gene was overexpressed in E. coli BL21(DE3) using pET26b(+),pET26b(+), and the recombinant MAP was purified by using an Ni-NTA column. The size of recombinant MAP was 29 kDa as determined by SDS-PAGE. The optimum pH and temperature of CY54 MAP were pH 5.0 and 60℃, respectively. The activity of CY54 MAP was most significantly increased by Co2+ ion (159%), and showed the highest activity at 12% NaCl. Km and Vmax were 0.64 ± 0.006 mM and 10.12 ± 0.014 U/mg protein, respectively when met-pNA was used as the substrate. This is the first report on a MAP from Tetragenococcus species.
Aspergi11us niger F-580, a potent producer of aminopeptidase M inhibitor, was isolated from the brown spots of plant leaves with a pathological trait. The inhibitory activity was found only in the fungal mat formed by surface culture of Aspergi11us niger F-580, but not in the culture supernatant or cell pellet. The inhibitor was purified from the hot water extract of this fungal mat by using chromatographies on Diaion HP-20, DEAE-cellulose, Sephadex G-l0 and YMC-ODS-AQ columns. The purified inhibitor was analyzed by UV, mass, and NMR spectroscopies, and identified as OF494911, which had been isolated as an aminopeptidase B inhibitor from Penicillium rugulosum OF4949
Methionine aminopeptidase (MetAP) catalyzes the removal of an amino-terminal methionine from a newly synthesized polypeptide. The enzyme was purified to homogeneity from Bacillus stearothermophilus (KCTC 1752) by a procedure that involves heat precipitation and four sequential chromatographs (including DEAE-Sepharose ion exchange, hydroxylapatite, Ultrogel AcA 54 gel filtration, and Reactive red 120 dye affinity chromatography). The apparent molecular masses of the enzyme were 81,300 Da and 41,000 Da, as determined by gel filtration chromatography and sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), respectively. This indicates that the enzyme is comprised of two identical subunits. The MetAP specifically hydrolyzed the N-terminal residue of Met-Ala-Ser that was used as a substrate, and exhibited a strong preference for Met-Ala-Ser over Leu-Gly-Gly, Leu-Ser-Phe, and Leu-Leu-Tyr. The enzyme has an optimal pH at 8.0, an optimal temperature at $80^{\circ}C$, and pI at 4.1. The enzyme was heat-stable, as its activity remained unaltered when incubated at $80^{\circ}C$ for 45 min. The Km and Vmax values of the enzyme were 3.0mM and 1.7 mmol/min/mg, respectively. The B. stearothernmophilus MetAP was completely inactivated by EDTA and required $Co^{2+}$ ion(s) for activation, suggesting the metal dependence of this enzyme.
The characteristics of aminopeptidase M(ApM) immobilized covalently on Cellufine Formyl and the continuous production of authentic human growth hormone(hGH) from methionyl human growth hormono(met-hGH) using the column reactor packed with immobilized ApM were investigated. Immobilized ApM with the proportion of 2.3mg ApM per 1g Cellufine Formyl gel had the highest met-hGH conversion activity. The optimum pH(7.0) and temperature($55^{\circ}C$) showed no appreciable difference between free and immobilized enzymes and the optimum temperature in continuous operation of the column reactor was also found to be $55^{\circ}C$. Under the conditions at which met-hGH was converted completely to hGH, the yield and productivity were about 77% and 0.8mg hGH/ml$.$h, respectively. In two column reactors of different sizes, met-hGH was converted to hGH with the same conversion rates and hGH yields at the same space velocities. The half-life of the reactor systems at $45^{\circ}C$ and $55^{\circ}C$ were projected from the continuous operations for 90 days to be 225 days and 81 days, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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