Background: Fraxetin (7,8-dihydroxy-6-methoxy coumarin), a coumarin derivative, has been reported to possess antioxidative, anti-inflammatory and neuroprotective effects. A number of recent observations suggest that the induction of heme oxygenase-1 (HO-1) inhibits inflammation and tumorigenesis. In the present study, we determined the effect of fraxetin on HO-1 expression in HaCaT human keratinocytes and investigated its underlying molecular mechanisms. Methods: Reverse transcriptase-PCR and Western blot analysis were performed to detect HO-1 mRNA and protein expression, respectively. Cell viability was measured by the MTS test. The induction of intracellular reactive oxygen species (ROS) by fraxetin was evaluated by 2′,7′-dichlorofluorescin diacetate staining. Results: Fraxetin upregulated mRNA and protein expression of HO-1. Incubation with fraxetin induced the localization of nuclear factor-erythroid-2-related factor-2 (Nrf2) in the nucleus and increased the antioxidant response element-reporter gene activity. Fraxetin also induced the phosphorylation of Akt and AMP-activated protein kinase $(AMPK){\alpha}$ and diminished the expression of phosphatase and tensin homolog, a negative regulator of Akt. Pharmacological inhibition of Akt and $AMPK{\alpha}$ abrogated fraxetin-induced expression of HO-1 and nuclear localization of Nrf2. Furthermore, fraxetin generated ROS in a concentration-dependent manner. Conclusions: Fraxetin induces HO-1 expression through activation of Akt/Nrf2 or $AMPK{\alpha}/Nrf2$ pathway in HaCaT cells.
Piao, Mei Jing;Kim, Ki Cheon;Kang, Kyoung Ah;Fernando, Pincha Devage Sameera Madushan;Herath, Herath Mudiyanselage Udari Lakmini;Hyun, Jin Won
Biomolecules & Therapeutics
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v.29
no.1
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pp.90-97
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2021
Ultraviolet B (UVB) radiation causes DNA base modifications. One of these changes leads to the generation of 8-oxoguanine (8-oxoG) due to oxidative stress. In human skin, this modification may induce sunburn, inflammation, and aging and may ultimately result in cancer. We investigated whether phloroglucinol (1,3,5-trihydroxybenzene), by enhancing the expression and activity of 8-oxoG DNA glycosylase 1 (Ogg1), had an effect on the capacity of UVB-exposed human HaCaT keratinocytes to repair oxidative DNA damage. Here, the effects of phloroglucinol were investigated using a luciferase activity assay, reverse transcription-polymerase chain reactions, western blot analysis, and a chromatin immunoprecipitation assay. Phloroglucinol restored Ogg1 activity and decreased the formation of 8-oxoG in UVB-exposed cells. Moreover, phloroglucinol increased Ogg1 transcription and protein expression, counteracting the UVB-induced reduction in Ogg1 levels. Phloroglucinol also enhanced the nuclear translocation of nuclear factor erythroid 2-related factor 2 (Nrf2) as well as Nrf2 binding to an antioxidant response element located in the Ogg1 gene promoter. UVB exposure inhibited the phosphorylation of protein kinase B (PKB or Akt) and extracellular signal-regulated kinase (Erk), two major enzymes involved in cell protection against oxidative stress, regulating the activity of Nrf2. Akt and Erk phosphorylation was restored by phloroglucinol in the UVB-exposed keratinocytes. These results indicated that phloroglucinol attenuated UVB-induced 8-oxoG formation in keratinocytes via an Akt/Erk-dependent, Nrf2/Ogg1-mediated signaling pathway.
Sanguinarine is a benzophenanthridine alkaloid originally isolated from the roots of Sanguinaria canadensis. It has multiple biological activities (e.g., antioxidant and antiproliferative) and immune-enhancing potential. In this study, we explored the proapoptotic properties and modes of action of sanguinarine in human hepatocellular carcinoma HepG2 cells. Our results revealed that sanguinarine inhibited HepG2 cell growth and induced apoptosis in a dose-dependent manner. The induction of apoptosis by sanguinarine was associated with the up-regulation of Fas and Bax, the release of cytochrome c from the mitochondria to the cytosol, and the loss of the mitochondrial membrane potential. In addition, sanguinarine activated caspase-9 and -8, initiator caspases of the intrinsic and death extrinsic pathways, respectively, and caspase-3, accompanied by proteolytic degradation of poly (ADP-ribose) polymerase. Sanguinarine also triggered the generation of reactive oxygen species (ROS). The elimination of ROS by N-acetylcysteine reversed sanguinarine-induced apoptosis. Furthermore, sanguinarine induced the dephosphorylation of Akt and the phosphorylation of mitogen-activated protein kinases, including extracellular signal-regulated kinase (ERK), c-jun N-terminal kinase (JNK), and p38. The growth inhibition was enhanced by the combined treatment of sanguinarine with a phosphatidylinositol 3'-kinase (PI3K) inhibitor and an ERK inhibitor but not JNK and p38 inhibitors. Overall, our data indicate that the proapoptotic effects of sanguinarine in HepG2 cells depend on ROS production and the activation of both intrinsic and extrinsic signaling pathways, which is mediated by blocking PI3K/Akt and activating the ERK pathway. Thus, our data suggest that sanguinarine may be a natural compound with potential for use as an antitumor agent in liver cancer.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.23
no.2
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pp.416-425
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2009
Angiogenesis is important for promoting cardiovascular disease, wound healing, and tissue regeneration. We here investigated the pharmacological effects of Korea red ginseng water extract (KRGE) on angiogenesis and its underlying signal mechanism. This study showed that KRGE increased in vitro proliferation, migration, and tube formation of human umbilical endothelial cells, as well as stimulated in vivo angiogenesis. KRGE-induced angiogenesis was accompanied by phosphorylation of ERK1/2, Akt, and endothelial nitric oxide synthase (eNOS) as well as an increase in NO production. Inhibition of PI3K activity by wortmannin completely inhibited KRGE-induced angiogenesis and phosphorylation of Akt, ERK1/2, and eNOS, indicating that PI3K/Akt activation is an upstream event of KRGE-mediated angiogenic pathway. The MEK inhibitor PD98059 completely blocked KRGE-induced angiogenesis and ERK phosphorylation without affecting Akt and eNOS activation. However, the eNOS inhibitor NMA effectively inhibited tube formation, but partially blocked proliferation and migration as well as ERK phosphorylation without altering Akt and eNOS activation, revealing that eNOS/NO pathway is in part involved in ERK1/2 activation. This study first demonstrated the critical involvement of both ERK1/2 and eNOS activation in KRGE-induced angiogenesis, which lie on downstream of PI3K/Akt. Thus, these results indicate that KRGE requires activation of both the PI3K/Akt-dependent ERK1/2 and eNOS signal pathways and their cross-talk for its full angiogenic activity.
Since previous studies have reported that hydroquinone (HQ) exerted immunosuppressive and anti-inflammatory activity, various HQ derivatives have been synthesized and their biological activities investigated. In this study, we explored the anti-inflammatory activity of JS-III-49, a novel HQ derivative, in macrophage-mediated inflammatory responses. JS-III-49 suppressed the production of the inflammatory mediators nitric oxide (NO) and prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) and down-regulated the mRNA expression of the inflammatory enzymes cyclooxygenase-2 (COX-2) and inducible nitric oxide synthase (iNOS) as well as the expression of the pro-inflammatory cytokines interleukin-6 (IL-6) and IL-$1{\beta}$ without cytotoxicity in LPS-stimulated RAW264.7 cells. JS-III-49 inhibited nuclear translocation of the $NF-{\kappa}B$ transcription factors p65 and p50 by directly targeting Akt, an upstream kinase of the $NF-{\kappa}B$ pathway, in LPS-stimulated RAW264.7 cells. However, JS-III-49 did not directly inhibit the kinase activities of Src and Syk, which are upstream kinases of Akt, in LPS-stimulated RAW264.7 cells. Moreover, JS-III-49 suppressed the nuclear translocation of c-Fos, one of the components of AP-1, by specifically targeting p38, an upstream mitogen-activated protein kinase (MAPK) in the AP-1 pathway in LPS-stimulated RAW264.7 cells. These results suggest that JS-III-49 plays an anti-inflammatory role in LPS-stimulated macrophages by targeting Akt and p38 in the $NF-{\kappa}B$ and AP-1 pathways, respectively.
Zhong, Dong;Ran, Jian-Hua;Tang, Wen-Yuan;Zhang, Xiao-Dong;Tan, Yun;Chen, Gui-Jie;Li, Xiao-Song;Yan, Yi
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.13
no.6
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pp.2897-2901
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2012
Invasion is usually recognized as the main reason for the high recurrence and death rates of glioma and restricts the efficacy of surgery and other therapies. Therefore, we aimed to investigate the mechanism involved in promotion effects of mda-9/syntenin on human glioma cell migration. The wound healing method was used to test the migration ability of human glioma cells CHG-5 and CHG-hS, stably overexpressing mda-9/syntenin. Western blotting was performed to determine the expression and phosphorylation of focal adhesion kinase (FAK) and JNK in CHG-5 and CHG-hS cells. The migration ability of CHG-hS cells was significantly higher than that of CHG-5 cells in fibronectin (FN)-coated culture plates. Phosphorylation of FAK on tyrosine 397, 576, and 925 sites was increased with time elapsed in CHG-hS cells. However, phosphorylated FAK on the tyrosine 861 site was not changed. Phosphorylated Src, JNK and Akt levels in CHG-hS cells were also significantly upregulated. Phosphorylation of JNK and Akt were abolished by the specific inhibitors SP600125 and LY294002, respectively, and the migration ability of CHG-hS cells was decreased, indicating that the JNK and PI3K/Akt pathways play important roles in regulating mda-9/syntenin-induced human brain glioma migration. Our results indicate Mda-9/syntenin overexpression could activate FAK-JNK and FAK-Akt signaling and then enhance the migration capacity of human brain glioma cells.
Bang, Soo Young;Song, Ji Su;Moon, Hyung-In;Kim, YoungHee
Journal of Life Science
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v.25
no.9
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pp.976-983
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2015
Achyranthoside C dimethyl ester (ACDE) is an oleanolic acid glycoside from Achyranthes japonica which has been used in traditional medicine for the treatment of edema and arthritis. In this study, we investigated the anti-inflammatory effects of ACDE in RAW264.7 macrophages. ACDE significantly induced heme oxygenase-1 (HO-1) gene expression in RAW264.7 cells, while ACDE improved LPS-induced toxicity of cells. And ACDE induced nuclear translocation of nuclear factor E2-related factor 2 (Nrf2), a transcription factor that regulates HO-1 expression. Further study demonstrated that ACDE-induced expression of HO-1 was inhibited by inhibitors of phosphatidylinositol 3-kinase (PI-3K) (LY294002), c-Jun kinase (JNK) (SP600125), extracellular signal regulated kinase (ERK) (PD98059) and p38 kinase (SB203580). Moreover, ACDE phosphorylated Akt, JNK, ERK, and p38 MAPK. In addition, ACDE inhibited LPS-induced NO secretion as well as inducible NO synthase (iNOS) expression in a dose-dependent manner. The inhibitory effects of ACDE on iNOS expression were abrogated by small interfering RNA (siRNA)-mediated knock-down of HO-1. Therefore, these results suggest that ACDE suppresses the production of pro-inflammatory mediator such as NO by inducing HO-1 expression via PI-3K/Akt/MAPK-Nrf2 signaling pathway. These findings could help us to understand the active principle included in the roots of A. japonica and the molecular mechanisms underlying anti-inflammatory action of ACDE.
Koh, Seong Ho;Kwon, Hyug Sung;Oh, Hwa Soon;Oh, Jae Ho;Park, Ynun Joo;Kim, Jun Gyou;Kim, Ki Sok;Kim, Yang Soon;Yang, Ki Hwa;Kim, Seung U.;Kim, Seung H.;Jung, Hai Kwu
Korean Journal of Clinical Pharmacy
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v.13
no.1
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pp.29-39
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2003
Neurodegenerative disorders are associated with apoptosis as a causing factor or an inducer. On the other hand, it has been reported that epigallocatechin gallate (EUG), one of antioxidants and flavonoids, and z-VAD-fmk, a nonselective caspase inhibitor, suppress oxidative-radical-stress-induced apoptosis. However, it is not yet known what is the effects of EGCG and z-VAD-fmk on the apoptotic pathway is through phosphoinositide 3-kinase (PI3K), Akt and glycogen synthase kinase-3 (GSK-3) as well as mitochondria, caspase-3 and poly (ADP-ribose) polymerase (PARP). We investigated the effects of EGCG by using $H_2O_2$ treated N18D3 cells, mouse DRG hybrid neurons. Methods: Following 30 min $100\;{\mu}m\;H_2O_2$ exposure, the viability of N18D3 cells (not pretreated vs. EGCG or z-VAD-fmk pretreated) was evaluated by using MTT assay. The effect of EGCG on immunoreactivity (IR) of cytochrome c, caspase-3, PARP, PI3K/Akt and GSK-3 was examined by using Western blot, and was compared with that of z-Y4D-fmk. Results: EGCG or z-VAD-fmk pretreated N18D3 cells showed increased viability. Dose-dependent inhibition of caspase-3 activation accompanied by PARP cleavage were demonstrated by pretreatment of both agents. However, inhibition of cytochrome c release was only detected in EGCG pretreated N18D3 cells. On the pathway through PI3K/Akt and GSK-3, however, the result of Western blot in EGCG pretreated N18D3 cells showed decreased IR of Akt and GSK-3 and increased IR of p85a PI3K, phosphorylated Akt and GSK-3, and contrasted with that in z-VAD-fmk pretreated N18D3 cells showing no changes on each molecule. Conclusion: These data show that EGCG affects apoptotic pathway through upstream signal including PI3K/Akt and GSK-3 pathway as well as downstream signal including cytochrome c and caspase-3 pathway. Therefore, these results suggest that EGCG mediated activation of PI3K/Akt and inhibition GSK-B could be new potential therapeutic strategy for neurodegenerative diseases associated with oxidative injury.
AKT is a signal transduction protein that plays a central role in the tumorigenesis. There are 3 mammalian isoforms of this serine/threonine protein kinase-AKT1, AKT2, and AKT3-showing a broad tissue distribution. We first discovered 2 novel polymorphisms (AKT2 -9826 C/G and AKT3 -811 A/G), and we confirmed 6 known polymorphisms (AKT2 -9473 C/T, AKT2 -9151 C/T, AKT2 -9025 C/T, AKT2 -8618G/A, AKT3 -675 A/-, and AKT3 -244 C/T) of the AKT2 and AKT3 promoter region in 24 blood samples of Korean lung cancer patients using direct sequencing. To evaluate the role of AKT2 and AKT3 polymorphisms in the risk of Korean lung cancer, genotypes of the AKT2 and AKT3 polymorphisms (AKT2 -9826 C/G, AKT2 -9473 C/T, AKT2 -9151 C/T, AKT2 -9025 C/T, AKT2 -8618G/A, and AKT3 -675 A/-) were determined in 360 lung cancer patients and 360 normal controls. Statistical analyses revealed that the genotypes and haplotypes in the AKT2 and AKT3 promoter regions were not significantly associated with the risk of lung cancer in the Korean population. These results suggest that polymorphisms of the AKT2 and AKT3 promoter regions do not contribute to the genetic susceptibility to lung cancer in the Korean population.
Cancer-associated antigen (CAGE) induces the expression of matrix metalloproteinase-2 (MMP-2) by activating Akt, which in turn interacts with inhibitory kappa kinase $\beta$ ($I{\kappa}K{\beta}$) to activate nuclear factor ${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$). Akt and p38 mitogen activated protein kinase (p38 MAPK) are necessary for CAGE-mediated induction of the AP-1 subunit JunB, whereas extracellular regulated kinase (ERK) is necessary for the induction of fos-related antigen-1 (Fra-1). Induction of MMP-2 by CAGE requires activator of protein-1 (AP-1) to be bound. Specific binding of JunB to MMP-2 promoter sequences was shown by chromatin immunoprecipitation (ChIP) analysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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