균사성 담자균의 생장을 억제하는 validamycin에 대하여 저항성을 보이는 Coprinus cinereus를 분리하고 무성생식포자의 발아율, 균사생장방식 및 actin단백질의 분포를 정상균과 비교하였다. 저항성균주는 validamycin이 있어도 무성생식포자의 발아율이 정상균의 동일조건보다 월등하며(약 20배), 정상균보다 분지를 자주하는 것으로 나타났다. 저항성균은 분지와 관계가 있는 것으로 알려진 actin의 분포가 Vm에 의하여 감소되는 정상균과는 달리 Vm에 의한 영향없이 균사끝과 균사끝 세포에 분포하는 것으로 나타났다.
Lim, Hyoun-Sub;Lee, Mi Yeon;Moon, Jae Sun;Moon, Jung-Kyung;Yu, Yong-Man;Cho, In Sook;Bae, Hanhong;DeBoer, Matt;Ju, Hojong;Hammond, John;Jackson, Andrew O.
The Plant Pathology Journal
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제29권1호
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pp.17-30
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2013
Barley stripe mosaic virus (BSMV) induces massive actin filament thickening at the infection front of infected Nicotiana benthamiana leaves. To determine the mechanisms leading to actin remodeling, fluorescent protein fusions of the BSMV triple gene block (TGB) proteins were coexpressed in cells with the actin marker DsRed: Talin. TGB ectopic expression experiments revealed that TGB3 is a major elicitor of filament thickening, that TGB2 resulted in formation of intermediate DsRed:Talin filaments, and that TGB1 alone had no obvious effects on actin filament structure. Latrunculin B (LatB) treat-ments retarded BSMV cell-to-cell movement, disrupted actin filament organization, and dramatically decreased the proportion of paired TGB3 foci appearing at the cell wall (CW). BSMV infection of transgenic plants tagged with GFP-KDEL exhibited membrane proliferation and vesicle formation that were especially evident around the nucleus. Similar membrane proliferation occurred in plants expressing TGB2 and/or TGB3, and DsRed: Talin fluorescence in these plants colocalized with the ER vesicles. TGB3 also associated with the Golgi apparatus and overlapped with cortical vesicles appearing at the cell periphery. Brefeldin A treatments disrupted Golgi and also altered vesicles at the CW, but failed to interfere with TGB CW localization. Our results indicate that actin cytoskeleton interactions are important in BSMV cell-to-cell movement and for CW localization of TGB3.
Using the protein A-gold complex, the mvoabrillogenesis and actin localization of cultured myoblast were invastisated. In the superstructural changes of mvogenic cell during differentiation, pectoral myoblasts contained large nucleus and numerous ribosomes but no myofibrils during the first 24 hr of cultures. Mvoblast initiated to differentiate at 3-day of culture contained the primitive myofibrillar structure. At 96 hr of culture, the mvofibrillar structure showed reletively discernable Z band but pools defined A, H and M bands. The feature of sarcomeric structure showed more defined form at cultur 5 day. In the aspect of actin localization, actin wvas diffusely detected throughout the cytoplasm of myogenic cell and nucleus during the proliferating stage. At 72 hr of culture, with the appearantc oi primitive mvofibrils, gold particles were observed in surrounding of myofibrils but still presented in overall of cytoplasm, especially in the surface and lumen of endoplasmic reticulum. With the gradual increase of culture time, local distribution of actin was readily detected within cytoplasm. In the 5-day specimen of cultures, gold particles precisely indicate the sites of actin localifation within the sarcomere. These results indicate the time of onset of myofibrill appearance and the biosynthetic and incorporation pathway of actin molecules into sarcomeric structure during myofibrillogenesis. Thus, in the present study, the first mvoabrillar structure was detected at culture 3 day, and the initiation of assembly into a typical sarcmeric structure was observed at culture 5 day. It seems, however, that the course of events on myofibrillogenesis of cultured myoblasts can be changed with great dependence of culture conditions including the number and groluth rate of mononucleated mvoblasts after seeding although the fundamental process shows identical appearances.
1. 아메바 항-액틴의 Ag-Ab 반응과 이를 항-생쥐 IgG-금 입자로 표지한 결과는 주로 정세 포 및 정자의 핵질에 특이적으로 표지되었고 첨체에서는 그 반응을 볼 수 없었다. 2. 표지된 항-액탠 금 입자로 볼 때 정자 핵질의 G-액틴 또는 G-actin oligomer는 정세포의 F-액틴에서 유래되는 것으로 사료된다. 3. 첨체의 액틴은 주로 F-액틴으로 첨체돌기 형성에 참여하지 않는 위상인 것으로 관찰된다. 4. 미세구조의 변화, 정세포 체적의 감소, 정세포 및 정자 핵에 표지되는 금 입자의 증가와 이들 현상이 나타나는 동시성으로 볼 때 정세포 핵의 형태변화의 내용은 응축이고 이는 F-actin의 탈중합 반응에 의한 G-액틴의 생성이 원인일 것으로 사료된다.
A microfilament-based motility in Toxoplasma gondii (T. gondii) Is involved in host cell invasion, yet the exact mechanism has not yet been determined. Accordingly, the current study examined the localization of actin and tubulin in T gondii using immunofluorescent (IF) and immunogold staining for electron microscopy. Indirect immunofluorescence (IF) staining using anti-actin and anti-tubulin monoclonal antibodies (mAbs) revealed localization of fluorescence on the entire surface of the tachyzoites. The actin in T. gondii was observed by immunogold staining, and the gold particles were seen on the surface, especially at the anterior end and in the cytoplasm of the parasite. However, there were no gold particles in the nucleus, rhoptries, and dense granules. The tubulin in T gondii was located on the surface and in the cytoplasm of the tachyzoites in the extracellular parasite, compared with anterior part of tachyzoites in the intracellular parasite. The antigens of T gondii recognized by anti-actin mAb were 107 kDa, 50 kDa, 48 kDa, and 40 kDa proteins, while those recognized by anti-tubulin mAb were 56 kDa, 52 kDa, and 34 kDa proteins. Tachyzoites of T gondii pretreated with the actin inhibitor, cytochalasin D (20 $\mu\textrm{g}$/ml), and tubulin inhibitor, colchicine (2$\times$10$\^$-6/ M), for 30 min at 37$\^{C}$ were used to infect the isolated mouse macrophages (tachyzo ites:macrophage=2:1). Pretreatment with the inhibitors resulted in lower multiplication of tachyzoites within the macrophages than in the untreated group 18 h post infection (p<0.05). Therefore, the present results suggest that actin and tubulin appear to be involved in the invasion of and multiplication in host cells.
Cell migration requires a defined cell polarity which is formed by diverse cytoskeletal components differentially localized to the poles of cells to extracellular signals. Rap-GAP3 transiently and rapidly translocates to the cell cortex in response to chemoattractant stimulation and localizes to the leading edge of migrating cells. Here, we examined localization of truncated RapGAP3 proteins and found that the I/LWEQ domain in the central region of RapGAP3 was sufficient for posterior localization in migrating cells, as opposed to leading-edge localization of full-length Rap-GAP3. All truncated proteins accumulated at the leading edge of migrating cells exhibited clear translocation to the cell cortex in response to stimulation, whereas proteins localized to the posterior in migrating cells displayed no translocation to the cortex. The I/LWEQ domain appears to passively accumulate at the posterior region in migrating cells due to exclusion from the extended front region in response to chemoattractant stimulation rather than actively being localized to the back of cells. Our results suggest that posterior localization of the I/LWEQ domain of RapGAP3 is likely related to F-actin, which has probably different properties compared to newly formed F-actin at the leading edge of migrating cells, at the lateral and posterior regions of the cell.
Cyptosporidium parvum의 발달 단계별 actin과 myosin의 분포 위치를 면역황금염색법을 이용하여 관찰하였다. $Depomedrol^{\circledR}$을 ICR마우스에 피하주사하여 면역억제시킨 후 C. parvum이 발현된 마우스 회장을 잘라 LR gold로 포매하여 초박절편을 떴다. 일차항체로는 chickenbackmuscle actin과 bovine uterus myosin에 대한 rabbit polyclonal antibody를 사용하였고 이차항체로는 10 mm 크기의 황금입자가 결합된 goatanti-rabbit lgG를 반응시켰다 Uranylacetate와 leadcitrate로 염색한 후 투과전자현미경으로 관찰하였다 Trophozoite에서는 세포막에서 주로 actin과 myosin이 관찰되었고 feederorganelle 주위 세포질에는 actin이 분포하였다. Meront와 같이 활발히 분열하고 있는 단계에서는 세포막과 세포질 전체에 actin이 분포되어있었으며 myosin은 세포막에서만 소량 관찰되었다. 핵과 anlage of rhoptries 등은 두 단백질에 모두 염색되지 않았다. Macrogametocyte 에서는 amylopectin-lile bodies에서 actin과 myosin이 모두 관찰되었으나 wall forming bodies에서는 관찰되지 않았고 feederorganelle 주위 세포질 부분에서는 actin이 관찰되었다. Sporozoite를 포함하는 oocyst와 merozoite를 포함하는 meront에서는 세포막과 세포막사이에서 actin이 다수 관찰 되었으며 myosin은 소량 관찰되었다. Merozoites가 빠져나가 속이 비어있는 parasitophorous vacuole중에는 microspike를 형성한 것들이 종종 관찰되었고 이것이 좀더 길어져 마치 microvilli와 같이 보이는 경우도 있었으며 이러한 구조물에서도 actin이 다수 관찰되었다. 이상의 결과로 미루어 actin과 myosin은 세포막에 주로 분포하면서 C. parvum의 형태를 유지시키며 또한 세포막의 움직임을 조절하는 cytoskeletalproteiA으로서의 역할이 주된 작용일 것으로 생각되었다.
작은와포자충의 세포골격 단백질 분포를 알아보기 위하여 actin, tropomyosin, $\alpha$-actinin 및 troponin-T의 분포를 이중면역 황금표지법 (double immunogold labeling method)으로 관찰하 였다 관찰된 모든 발육 단계의 충체에서 매우 많은 양의 tropomyosin이 세포질 및 세포막에 분포하고 있음이 밝혀졌으며 actin보다도 더 많은 양이 관찰되었다. ${\alpha}-actinin$의 경우는 주로 세포막에 소량이 분포하였으며 Troponin-T는 어느 발육 단계에서도 관찰되지 않았다 이 연구의 결과 tropomyosin의 분포 정도도 미루어 볼 때 이 단백질이 작은와포자충에서 매우 중요한 역할을 수행할 것으로 추측되며, 주로 세포막에 다량으로 분포하는 actin, tropomyosin 및 ${\alpha}-actinin$은 면역진단 및 면역치료의 대상으로 이용할 가능성이 있을 것으로 생각된다.
Sperm capacitation refers to polymerization of filamentous (F)-actin from globular (G)-actin. While the role of actin-related protein 2/3 (Arp2/3) complex in actin polymerization is well appreciated, the underlying mechanism(s) and its relationship with capacitation are poorly understood. Therefore, to evaluate the potential role of Arp2/3 complex on capacitation, bovine spermatozoa were incubated with multiple doses (1, 10 and $100{\mu}M$) of CK-636, an inhibitor of Arp2/3 complex with heparin. The cellular localization of the Arp2/3 complex in spermatozoa was identified by immunohistochemistry, whereas western blot was also applied to detect the protein tyrosine phosphorylation of sperm proteins. Additionally, sperm motility and kinematic parameters were evaluated using a computer-assisted sperm analysis system. CK-636 resulted in significant changes in the ratio of Arp2/3 complex localization between acrosome and equatorial region of the spermatozoa. Short-term exposure of spermatozoa to $100{\mu}M$ of CK-636 significantly decreased sperm motility, however a non-detectable effect on protein tyrosine phosphorylation was observed during capacitation. On the basis of these results, we propose that Arp2/3 complex is associated with morphological changes during capacitation and compromised sperm motility.
The present study investigated the cellular localization of a-subunit of Gq (Gaq) protein in developing L8E63, rat skeletal muscle cell line. The colocalization of Gaq with actin cytoskeleton was demonstrated by double-labeling experiments. In mononucleated myoblasts, the immuno-fluorescence staining pattern of Gaq was almost identical with that of F-actin visualized with rhodamine-conjugated phalloidin. However, this colocalization of Gaq with cytoskeleton was not maintained in multinucleated myotubes. The staining pattern of Gaq in myotubes did not match with any specific subcellular structure, but appeared as a uniformly distributed diffuse staining throughout the whole cell surface. Interestingly, change in the expression level of Gaq was not detected during myoblast differentiation, suggesting that actin-associated Gaq protein might dissociate from the cytoskeleton as cells differentiate. Immunocytochemical experiments using specific antibodies directed against several G proteins indicated that the subcellular localizations of Gai1, Gai2, Gai3, and Gao were different from those obtained with Gaq.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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