A defect in uvsC of Aspergillus nidulans caused high methyl methansulfonate (MMS)-sensitivity, hyporecombination, and a lack of UV induced mutation. The uvsC gene of Aspergillus nidulans shares a sequence similarity with the RAD51 gene of Saccharomyces cerevisiae. In this study, in vitro and in vivo tests were conducted in order to determine whether or not the UVSC protein had functional similarities to RAD51, the recombination enzyme in yeast. The purified recombinant UVSC protein, following expression in Escherichia coli, showed binding activity to single-stranded DNA (ssDNA), when both ATP and magnesium are present. In addition, ATPase activity was also demonstrated and its activity was stimulated in the presence of ssDNA. The UVSC protein that was expressed under the ADH promoter in S. cerevisiae suppressed in part the sensitivity to MMS of the rad51 null mutant. Similarly, when the uvsC cDNA was expressed from the nmt promoter, the MMS sensitivity of the rhp51 null mutant of Schizosaccharomyces pombe was partially complemented. These results indicate that the A. nidulans UVSC protein is a functional homologue of the RAD51 protein.
The transcription of the chitin synthase genes (chss) was cell cycle-regulated in Aspergillus nidulans and the expression pattern was classified into two groups. Group one, containing chsA and chsC, showed decreasing transcription level upon entry into the S-phase and no further variation during the remainder of the cell cycle. However, group two, containing chsB, chsD, and csmA showed a sharp decrease of mRNA level upon entry into the G2-phase and an increase during the M-phase. Our results suggested that the chss, belonging to same group with the similar expression pattern during the cell cycle are functionally linked and that chsD may play a role in hyphal growth and development in A. nidulans.
Cleistothecial development in Aspergillus nidulans(teleomorph, Emericella nidulans) was examined with the transmission electron microscopy. Cleistothecial initial was a small coiled lump of cells, ca. 6 ${\mu}m$ in diameter, which was consisted of a slightly swollen core with a short "tail" hypha. Initials were wrapped with a loose layer of hyphae. Core cells of cleistothecial initials were broad and multinucleated at first, then formed dikaryotic ascogenous cells, followed by post-meiotic tetra-nucleate or octa-nucleate protoasci and finally mature ascospores. Croziers were formed early during cleistothecium development. The peridial layer of mature cleistothecia was derived from the wrapping hyphae which originally invested the young cleistothecium. Completion of peridial layers development was associated with the depositing of a non-enzyme reactive material around peridial cells. $H\ddot{u}lle$ cell formation during the cleistothecial development appeared to be somewhat coordinated with the developmental stages of cleistothecium.
Using yeast, Saccharomyces cerevisiae, and the integrate vector system, we have isolated and characterized an autonomously replicating sequence (ARS) from Aspergillus nidulans. The DNA fragment, designated ANR1, is 5.0 kb in size and maintained free from the chromosome in S. cerevisiae. The YIplac211-ANR1 recombinant plasmid, which consists of sequences derived from the yeast integrative vector YIplac211 and 5.0 kb ANR1 fragment, showed a 104-fold enhancement in transformation efficiency over that found for YIplac211, and was easily recovered from the transformed yeast. Genetic analysis of transformants showed that YIplac21-ANR1 could be over 96% cured when cultured over 20 generations in complete medium and thus suggests that this sequence is mitotically unstable. In A. nidulans, recombinant plasmid PILJ16-4.5 which carries the 4.5 kb EcoRI fragment of ANR1 showed a 170-fold enhancement in transformation efficiency compared to that of the integrative vector PILJ16.
시안화물을 포름아미드로 변환시키는 nitrilase의 일종인 시안 수화효소 (cyanide hydratase, CHT) 를 진균류인 Neurospora crassa 와 Aspergillus nidulans로부터 유전자 조작을 통하여 His에 태그 또는 언태그된 형태로 대장균에 형질변환시켜 발현하였다. 발현된 효소를 고정 metal affinity chromatography로 정제하였다. 정제된 효소들의 pH 안정성, 동력학적 매개변수의 값을 검토하였다. 실험 결과 N. crassa 의 CHT가 50% 정도 더 넓은 pH 안정 범위를 가졌고 3배 가량 turnover rate도 높았다. 반면 A. nidulans CHT의 Km 값 (효소포화 용량)이 N. crassa CHT보다 더 크게 나타났다. 두 진균류에서 CHT의 유도발현은 질소성분과 상관없이 KCN에 의해 가능하였으며, 생분해 실험결과 N. crassa CHT에 의해 최대 82%/h의 시안분해가 가능하였다.
Aspergillus nidulans와 Botrytis cinerea와 같은 사상균들은 당과 같은 영양분이 존재하지 않은 조건에서는 발아하지 않는다. 본 연구에서는 A. nidulans의 포자에 당을 인식하는 기구가 존재할 것이라는 증거를 제시하였다. A. nidulans의 포자에 증류수를 가하였을 때에는 발아가 관찰되지 않는 반면에 5%의 글루코오스를 가해 주었을 때에는 98%이상의 포자가 발아하였다. 뿐만 아니라 프록토오스, 설탕, 녹말과 같은 단당류, 이당류, 다당류를 가해 주어도 유사한 결과를 관찰할 수 있었다. 특이한 것은L-형의 아라비노오스를 가해 준 포자는 발아관을 형성하였으나D-형의 아라비노오스를 가해주면 증류수를 가해주었을 때와 같이 발아관을 형성하지 못 하였다. 포자를 트립신으로 처리한 후에 글루코오스를 가해주면 발아율이 25%롤 감소하였다. 포자 표면에 존재하는 단백질을 용출하여 분리한 후 MALDI-TOF 질량분석기로 단백질을 동정한 결과 동정된 10종의 단백질 중 8종의 단백질은 당의 대사와 관련된 효소들 임을 확인하였다.
Cellulose와 hemicellulose의 단일 유도기질과 그 혼합물을 이용하여 Aspergillus nidulans의 섬유질 분해효소계의 유도 특이성을 조사하였다. 섬유질 분해효소계의 생합성에 있어서 최적의 유도기질이 endoglucanase의 경우엔 carboxymethylcellulose, ${\beta}-glucosidase$는 cellobiose, 그리고 endoxylanase와 ${\beta}-xylosidase$는 xylan으로 알려져 왔으나 이들 단일기질보다 기질들의 혼합물 특히 CMC-xylan과 CMC-xylan-laminarin of cellulase와 xylanase complexes의 생합성을 증가시키는데 매우 효과적인 것으로 나타났다. 이것은 각각의 유도기질에 따른 endoglucanase와 ${\beta}-glucosidase$ 그리고 endoxylanase의 components 양상 및 비교 활성도 변화에 기인하는 것으로 polyacrylamide gel 전기영동과 활성염색의 결과에서도 나타났다. 섬유소 분해효소계 생합성을 위한 유도물질의 이와 같은 공조효과는 Aspergillus nidulans에서 Cellulose와 xylanase systems의 생합성 조절이 유도물질에 의한 효소의 유도 수준에서 상호 관련되고 있음을 시사한다.
Fusarium graminearum (teleomorph Gibberella zeae) is an important plant pathogen that causes head blight of major cereal crops such as wheat, barley, and rice, as well as causing ear and stalk rot on maize worldwide. Plant diseases caused by this fungus lead to severe yield losses and accumulation of harmful mycotoxins in infected cereals [1]. Fungi utilize spore production as a mean to rapidly avoid unfavorable environmental conditions and to amplify their population. Spores are produced sexually and asexually and their production is precisely controlled. Upstream developmental activators consist of fluffy genes have been known to orchestrate early induction of condiogenesis in a model filamentous fungus Aspergillus nidulans. To understand the molecular mechanisms underlying conidiogenesis in F. graminearum, we characterized functions of the F. graminearum fluffy gene homologs [2]. We found that FlbD is conserved regulatory function for conidiogenesis in both A. nidulans and F. graminearum among five fluffy gene homologs. flbD deletion abolished conidia and perithecia production, suggesting that FlbD have global roles in hyphal differentiation processes in F. graminearum. We further identified and functionally characterized the ortholog of AbaA, which is involved in differentiation from vegetative hyphae to conidia and known to be absent in F. graminearum [3]. Deletion of abaA did not affect vegetative growth, sexual development, or virulence, but conidium production was completely abolished and thin hyphae grew from abnormally shaped phialides in abaA deletion mutants. Overexpression of abaA resulted in pleiotropic defects such as impaired sexual and asexual development, retarded conidium germination, and reduced trichothecene production. AbaA localized to the nuclei of phialides and terminal cells of mature conidia. Successful interspecies complementation using A. nidulans AbaA and the conserved AbaA-WetA pathway demonstrated that the molecular mechanisms responsible for AbaA activity are conserved in F. graminearum as they are in A. nidulans. F. graminearum ortholog of Aspergillus nidulans wetA has been shown to be involved in conidiogenesis and conidium maturation [4]. Deletion of F. graminearum wetA did not alter mycelial growth, sexual development, or virulence, but the wetA deletion mutants produced longer conidia with fewer septa, and the conidia were sensitive to acute stresses, such as oxidative stress and heat stress. Furthermore, the survival rate of aged conidia from the F. graminearum wetA deletion mutants was reduced. The wetA deletion resulted in vigorous generation of single-celled conidia through autophagy-dependent microcycle conidiation, indicating that WetA functions to maintain conidia dormancy by suppressing microcycle conidiation in F. graminearum. In A. nidulans, FlbB physically interacts with FlbD and FlbE, and the resulting FlbB/FlbE and FlbB/FlbD complexes induce the expression of flbD and brlA, respectively. BrlA is an activator of the AbaA-WetA pathway. AbaA and WetA are required for phialide formation and conidia maturation, respectively [5]. In F. graminearum, the AbaA-WetA pathway is similar to that of A. nidulans, except a brlA ortholog does not exist. Amongst the fluffy genes, only fgflbD has a conserved role for regulation of the AbaA-WetA pathway.
Aspergillus oryzae에서 A. nidulans의 glyceral d dehyde-3-phosphate dehydrogenase (gpdA)와 trpC, prmoter의 발현 능력 을 E. coli lacZ gene fusion을 이용하여 비교.분석하였다. A. oryzae 내에서 발현된 E. coli $\beta$galactosidase의 specific activIty를 조사하여 본 결과, gpdA promoter를 가지는 transformant들 에서는 2,000unit/ug of protem 정도의 activity를 보이는 반면, trpC, promater를 가지고 있는 transformant들에서는 10.5~52.3unit/ug of protein 정도의 activity를 보였다. 이 결과로부터 A. oryzae 내에서 A. nidulans의 gpdA promoter가 trpC, promoter에 비해 70 배 정도 더 강한 발현 능력을 보이고 있음을 알 수 있다. Western blot 분석에서도 gpdA promoter를 가지고 있는 transf ormant에서 더 많은 E. coli $\beta$-galactosidase가 발현된 것 을 보여 주고 있다. 또한 southern blot 분석에서는 이러한 강한 발현이 transform된 plasmid의 copy number와 상관 없음을 보여주고 있다.
DNA damage response has a central role in the maintenance of genomic integrity while mutations in related genes may result in a range of disorders including neoplasic formations. The uvsZl characterized in this report is a navel uvs mutation in Aspergillus nidulans, resulting in a nucleotide excision repair (NER) phenotype: UV-sensitivity before DNA synthesis (quiescent cells), high UV-induced mutation frequency and probable absence of involvement with mitotic and meiotic recombinations. The mutation is recessive and nan-allelic to the previously characterized uvsA101 mutation, also located on the paba-y interval on chromosome I. uvsZl skewed wild-type sensitivity to MMS, which suggests non-involvement of this mutation with BER. Epitasis tests showed that the uvsZ gene product is probably involved in the same repair pathways as UVSB or UVSH proteins. Although mutations in these proteins result in an NER phenotype, UVSB is related with cell cycle control and UVSH is associated with the post-replicational repair pathway. The epistatic interaction among uvsZl and uvsB413 and uvsH77 mutations indicates that different repair systems may be related with the common steps of DNA damage response in Aspergillus nidulans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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