Faiz, Ozlem;Colak, Ahmet;Saglam, Nagihan;Canakci, Sabriye;Belduz, Ali Osman
BMB Reports
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v.40
no.4
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pp.588-594
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2007
A novel hot spring thermophile, Anoxybacillus gonensis A4 (A. gonensis A4) was investigated in terms of capability of tributyrin degradation and characterization of its thermostable esterase activity by the hydrolysis of p-nitrophenyl butyrate (PNPB). It was observed that A. gonensis A4 has an esterase with a molecular weight of 62 kDa. The extracellular crude preparation was characterized in terms of substrate specificity, pH and temperature optima and stability, kinetic parameters and inhibition/activation behaviour towards some chemicals and metal ions. Tributyrin agar assay showed that A. gonensis A4 secreted an esterase and $V_{max}$ and $K_m$ values of its activity were found to be 800 U/L and 176.5 ${\mu}M$, respectively in the presence of PNPB substrate. The optimum temperature and pH, for A. gonensis A4 esterase was $60-80^{\circ}C$ and 5.5, respectively. Although the enzyme activity was not significantly changed by incubating crude extract solution at $30-70^{\circ}C$ for 1 h, the enzyme activity was fully lost at $80^{\circ}C$ for same incubation period. The pH-stability profile showed that original crude esterase activity increased nearly 2-fold at pH 6.0. The effect of some chemicals on crude esterase activity indicated that A. gonensis A4 produce an esterase having serine residue in active site and -SH groups were essential for its activity.
An esterase gene, estA1, was cloned from Alteromonas sp. 39-G1 isolated from the Beaufort Sea. The gene is composed of 1,140 nucleotides and codes for a 41,190 Da protein containing 379 amino acids. As a result of a BLAST search, the protein sequence of esterase EstA1 was found to be identical to Alteromonas sp. esterase (GenBank: PHS53692). As far as we know, no research on this enzyme has yet been conducted. Phylogenetic analysis showed that esterase EstA1 was a member of the bacterial lipolytic enzyme family IV (hormone sensitive lipases). Two deletion mutants (Δ20 and Δ54) of the esterase EstA1 were produced in Escherichia coli BL21 (DE3) cells with part of the N-terminal of the protein removed and His-tag attached to the C-terminal. These enzymes exhibited the highest activity toward p-nitrophenyl (pNP) acetate (C2) and had little or no activity towards pNP-esters with acyl chains longer than C6. Their optimum temperature and pH of the catalytic activity were 45℃ and pH 8.0, respectively. As the NaCl concentration increased, their enzyme activities continued to increase and the highest enzyme activities were measured in 5 M NaCl. These enzymes were found to be stable for up to 8 h in the concentration of 3-5 M NaCl. Moreover, they have been found to be stable for various metal ions, detergents and organic solvents. These salt-tolerant and chemical-resistant properties suggest that the enzyme esterase EstA1 is both academically and industrially useful.
A novel esterase showing high enantioselectivity to (S)-ketoprofen ethyl ester was selected from fosmid environmental DNA library which is provided by Microbial Genomic & Applications Center. As a result of Blast search, the gene wasn't registerated in Gene Bank yet. And as we know, conserved domain region of esterase , G-X-S-X-G, wasn't discovered.$^{4)}$ And it is similar to Beta-lactamase. The DNA sequence of cloned esterase include an open reading frame consisting of 1170 bp, designated as EST-Y29, encoding a protein of 389 amino acids with a molecular mass of about 42.8 kDa. And amino acid sequence analysis revealed only a few identity (28%) to tile known esterases/lipases in the databases containing the conserved sequence motifs of esterases/lipases. when being comparison to other esterase revealed , this enzyme seems to be classified as a new member of esterase family. EST-Y29 was functionally overexpressed in a soluble form in E. coli with maximum conversion yield of (S)-ketoprofen at $65^{\circ}C$. This study demonstrates that functional screening combined with the sequential uses of restriction enzymes to exclude already known enzymes is a useful approach for isolating novel enzyme from a metagenome.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.12
no.4
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pp.253-259
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1992
The esterase isozyme in tissue of wild legume plants were separated by horizontal starch gel electrophoresis. Extracts used in this study were prepared from fully expanded young leaf, cotyledon and radicle of seedling and root-nodule of Glycine sola, Vigna vexillata var. tsuscmensis and Trifoliwn repens. The results are as follows; 1. Each tissue examined had a characteristic banding pattcrn. Number of bands in each species, G. soja, V. vexillata, and T . repens, were 14, 8 and 1 1 bands, respectively. And difference in esterase isozyme bands were greater from tissue to tissue than difference between habitat. 2. Est-I, Est-2. Est-3 and Est-4 in G. soja, Est-I in V. vexillata and Est-l and Est-2 in T. repens showed strong cnzyme activity than other enzyme. 3. Esterase isozyme variation in G. soja and T . repens showed more variety than V. vexillata. This is resulted from many genotypic differences within species. 4. The main enLyme among thc esterase isozyme were Est-I. Est-2, Est-3 and Est-4.
Kim, Deog-Su;Oh, Sung-Kun;Chin, Moon-Sup;Ryu, Jeom-Ho
KOREAN JOURNAL OF CROP SCIENCE
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v.41
no.3
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pp.332-339
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1996
Electrophoretic method was utilized to classify 100 varieties of sweet potato germplasm maintained at the National Crop Experiment Station of Korea in 1993. The esterase isozyme patterns in the leaves were classified into 14 different types. Type Ⅸ included the most of the varieties (46) tested and Ⅶ, I, III, Ⅷ, II and V types of all included 47 varieties in order. The other 7 varieties had different band pattern with each other. Type I having many kind of band pattern included Shinyulmi, Beniastma and High starch which had the dry type of tuberous roots varieties. The esterase isozymes pattern in the tuberous roots were classified with 18 kinds of types. The C type included 22 varieties and B, K, A, E, I and N in order. The proteins pattern in the tuberous roots were classified with 7 kinds of types. I type included 36 varieties, and IV type included 27 varieties and II, III, Ⅶ and Ⅵ types in order.
Acetyl xylan esterase was produced by E. coli HB101 harboring a recombinant plasmid pKMG6 which contained the estI gene of Bacillus stearothermophilus. The maximum production was observed when the E. coli strain was grown at 37$\circC for 12 hours in the medium containing 0.5% acetyl xylan, 1.0% tryptons, 1.0% sodium chloride, and 0.5% yeast extract. The esterase produced was purified to homogeneity using a combination of ammonium sulfate fractionation, DEAE Sepharose CL-6B ion exchange chromatography and Sephacryl S-200 gel filtration. The native enzyme had an apparent molecular mass of 60 kd and was composed of two identical subunits of 29 kd. The N-terminal amino acid sequence of the polypeptide was Ala-X-Leu-Gln- Ile-Gln-Phe-X-X-Gln. The acetyl esterase displayed a pH optimum of 6.5 and a temperature opti- mum of 45$\circC. The heavy metal ions such as Ag$^{++}$, Hg$^{++}$ and Cu$^{++}$ inhibited nearly completely the activity of the esterase, and no specific metal ion was found to be required for the enzyme activity. The enzyme readily cleaved MAS, $\beta$-D-glucose pentaacetate, $\alpha$-naphthyl acetate, $\rho$-nitrophenyl acetate as well as acetyl xylan, but had no activity on $\rho$-nitrophenyl propionate, $\beta$-nitrophenyl butyrate or $\beta$-nitrophenyl valerate. The Km and Vmax values for MAS were 2.87 mM and 11.55 $\mu$mole/min, respectively. Synergistic behavior was demonstrated with a combination of xylanase and esterase from B. stearothermophilus in hydrolyzing acetyl xylan.
The gene encoding a putative esterase of Xanthomonas oryzae pv. oryzae was cloned using PCR technique. The gene was expressed with His6 tag in E. coli. One-step purification of the recombinant esterase with Ni-NTA resin resulted in one band by SDS-PAGE analysis. The purified enzyme showed a molecular weight of 30 kDa, as expected, therefore the enzyme was a mononer. The enzyme was the most active toward p-nitrophenyl (p-NP) acetate and p-NP-butyrate to a lesser extent. However, the enzyme could not hydrolyze p-NP-myristate, palmitate, and stearate. Therefore, the enzyme is considered as an esterase, very different from lipase. The purified esterase had optimal pH at around 8.0 and was stable in a broad range of pH values. The optimal temperature ranged from 30 to $40^{\circ}C$, and the residual activity observed after heat treatment at $55^{\circ}C$ for 20 min was 72 % of the initial activity. The activity was inhibited by the presence of copper and cobalt ions.
The nucleotide sequence of the estI gene encoding acetylxylan esterase I of Bacillus stearothermophilus was determined and analyzed. The estI gene was found to consist of a 810 base pair open reading frame coding for a polypeptide of 270 amino acids with a deduced molecular weight of 30 kDa. This was in well agreement with the molecular weight (29 kDa) estimated by SDS-PAGE of the purified esterase. The coding sequence was preceded by a putative ribo some binding site 10 bp upsteam of the ATG codon. Further 53 bp upstream, the transcription initiation signals were identified. The putative $_{-}$10 sequence (TCCAAT) and $_{-}$35 seqence (TTGAAT) corresponded closely to the respective consensus sequences for the Bacillus subtiis major RNA polymerase. The G+C content of the coding region of the estI was 51% whereas that of the third position of codone was 60.2%. The N-terminal amino acid sequence of the EstI deduced from the nucleotide sequence perfectly matched the corresponding region of the purified esterase described previously. Comparison with the amino acid sequence of other esterases and lipases reported so far allowed us to identify a sequence, GLSMG at positions 123 to 127 of the EstI which was reported to be the highly conserved active site sequence for those enzymes. The nucleotide sequence of the estI revealed 55.7% homology to that of the xylC coding for the acetylxylan esterase of Caldocellum saccharolyticum.
The microtuber was efficiently formed on SH medium containing 9% sucrose from the in vitro propagated shoot of potato (Solanum tuberosum cv. Sumi). In order to investigate gene expression depending on the development stage of microtuber, we examined the changes of peroxidase and esterase activities, and their isozyme patterns as well. Peroxidase and esterase activities were the highest at the 7 day-culture of the microtuber and subsequently decreased on the stage of microtuberization, whereas esterase activity increased at the stage of 60 day-culture. However, their activities in the ordinary tuber were higher than those of 60 day-cultured microtuber. In addition, in the peroxidase isozyme pattern two new bands of pI 7.05 and pI 4.65 were appeared at the 15- day and 60 day-cultures, respectively, as shown by isoelectric focusing. Various bands in the sterase isozyme pattern were shown at the 7 day-culture, and the band patterns were a large difference, comparing those of shoot and tuber. New bands in the esterase isozyme pattern also appeared at the 15 day- (pI4.52) and 60 day-cultures (pI 4.48). These results suggest that the changes of peroxidase and esterase activities and isozyme patterns are an important factor in the differentiation and development of potato.
Six species of false spider mites were collected and ciassifled in South Korea. Among them, a taxonomic description was carried out on the following four species new to Korea: 1. Aegyptobia nothus Pritchard and Baker, 2. Pentomerismus taxi (Hailer), 3. P. oregonensis McGregor, 4. Brevipalpus lewisi McGregor. And also esterase and alkaline phosphatase patterns obtained by polyacrylamide slab gel electrophoresis were compared on some spades. Esterase rymogram showed difference among species in band number and mobility.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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