To identify novel genes that are regulated by promoter methylation, a combinational approach involving in silico mining followed by molecular assay was performed. From the expression microarray data registered in the European bioinformatics institute (EBI), genes showing downregulation in breast cancer cells were initially screened and then selected by e-Northern analysis using the Unigene database. A series of these in silico methods identified CAMK2B and ARFGEF1 as candidates, and the two genes were revealed to be hypermethylated in breast cancer cell lines and hypomethylated in normal breast cell lines. Additionally, cancer cell lines showed downregulated expression of these genes. Furthermore, treatment of the cancer cell lines with a demethylation agent, 5-Aza-2'-deoxycytidine, recovered expression of CAMK2B and ARFGEF1, implying that hypermethyaltion silenced gene activity in cancer cells. Taken together, promoter methylations of CAMK2B and ARFGEF1 are novel epigenetic markers identified in breast cancer cell lines and can be utilized for the application to clinical cancer tissues.
Lee, Ji Yun;Lee, Yu Mi;Kim, Mi Jin;Choi, Je Yong;Park, Eui Kyun;Kim, Shin Yoon;Lee, Sam Poong;Yang, Jae Sup;Kim, Dong Sun
Molecules and Cells
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v.22
no.2
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pp.182-188
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2006
Dlx5 and Osx are master regulatory proteins essential for initiating the cascade leading to osteoblast differentiation in mammals, but the mechanism of osteoblast-specific expression is not fully understood. DNA methylation at CpG sequences is involved in tissue and cell type-specific gene expression. We investigated the methylation status of Dlx5 and Osx in osteogenic and nonosteogenic cell lines by methylationspecific PCR (MSP). The CpG dinucleotides of the Dlx5 and Osx promoter regions were unmethylated in osteogenic cell lines transcribing these genes but methylated in nonosteogenic cell lines. Treatment of C2C12 cells with 5-AzadC induced dose- and timedependent expression of Dlx5 and Osx mRNA by demethylating the corresponding promoters. Furthermore the mRNAs for the osteoblast markers ALP and OC, which were undetectable in untreated cells, gradually increased after 5-AzadC treatment. In addition, BMP-2 stimulation induced Dlx5 expression by hypomethylating its promoter. These findings suggest that DNA methylation plays an important role in cell type-specific expression of Dlx5 and Osx.
Tissue-specific gene expression is regulated by epigenetic modification involving trans-acting factors. Here, we identified that the human MAGEB16 gene and its mouse homolog, Mageb16, are only expressed in the testis. To investigate the mechanism governing their expression, the promoter methylation status of these genes was examined in different samples. Two CpG islands (CGIs) in the 5' upstream region of MAGEB16 were highly demethylated in human testes, whereas they were methylated in cells without MAGEB16 expression. Similarly, the CGI in Mageb16 was hypomethylated in mouse testes but hypermethylated in other tissues and cells without Mageb16 expression. Additionally, the expression of these genes could be activated by treatment with the demethylation agent 5'-aza-2'-deoxycytidine (5'-aza-CdR). Luciferase assays revealed that both gene promoter activities were inhibited by methylation of the CGI regions. Therefore, we propose that the testis-specific expression of MAGEB16 and Mageb16 is regulated by the methylation status of their promoter regions.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2022.10a
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pp.221-221
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2022
Chromosome breakage occurred by DNA methylation inhibitor. Zebularine is known as DNA methylation inhibitor and suitable for water solubility among different DNA methylation inhibitors as 5-Azacytidine and 5-aza-2'-deoxycytidine. We used zebularine as mutagen according to different methods by roots absorption and seed imbibition. After zebularine treatment, DNA methylation inhibitor, we observed mitotic chromosome behavior what is different according to two different treatment methods. First, seed imbibition treatment in 1,000 μM of zebularine solution for 72 hours in dark conditions. The second treatment to seedlings of Keumkang was also treated in 1,000 μM of zebularine solution for 72 hours after germination. Root and shoot showed different elongations in each treatment. Root absorption treatment(3.01±0.48, 2.00±0.26) showed the shortest elongation in root and shoot than control(8.16±0.61, 4.03±0.48) and seed imbibition treatment(4.33±0.80, 2.48±0.36). It can be explained root tip meristematic cell activity was damaged by DNA methylation inhibitor. Primary root tips were collected in DW for 24 hours at low temperature(0℃) and fixed in fixation solution for 3 days to chromosome observation in mitosis. Mitotic index, chromosome structure and chromosome aberration were observed by phase-contrast microscope. Mitotic index of the control(0.29) showed twice mitotic cells as the treated groups(imbibition 0.15, absorption 0.14). Observation of chromosomes showed some short chromosomes and loosen chromosomes affected by zebularine. It is considered because of zebularine damage DNA in mitosis. We observed "gap by chromosome breakage" in chromosomes that have loose parts between centromere and telomere. It seems demethylation of zebularine occurs chromosome breakage.
LRP15 is a novel gene cloned from lymphocytic cells, and its function is still unknown. Bioinformatic data showed that LRP15 might be regulated by DNA methylation and had an important role in DNA repair. In this study, we investigate whether the expression of LRP15 is regulated by DNA methylation, and whether overexpression of LRP15 increases efficiency of DNA repair of UV-induced DNA damage in HeLa cells. The results showed (1) the promoter of LRP15 was hypermethylated in HeLa cells, resulting a silence of its expression. Gene expression was restored by a demethylating agent, 5-aza-2'-deoxycytidine, but not by a histone deacetylase inhibitor, trichostatin A; (2) overexpression of LRP15 inhibited HeLa cell proliferation, and the numbers of cells in the G2/M phase of the cell cycle in cells transfected with LRP15 increased about 10% compared with controls; (3) cyclin B1 level was much lower in cells overexpressing LRP15 than in control cells; and (4) after exposure to UV radiation, the LRP15-positive cells showed shorter comet tails compared with the LRP15-negative cells. From these results we conclude that the expression of LRP15 is controlled by methylation in its promoter in HeLa cells, and LRP15 confers resistance to UV damage and accelerates the DNA repair rate.
Background: Retinoblastoma protein-interacting zinc finger gene 1(RIZ1) functions as a tumor suppressor. Hypermethylation-mediated RIZ1 silencing has been reported in several cancers, but not in renal cell carcinoma (RCC) yet. Materials and Methods: We examined the RIZ1 expression and methylation in a panel of RCC cell lines and 50 primary tumors using semiquantitative/quantitative polymerase chain reaction (PCR), methylation specific PCR, and bisulfite sequencing genomic. We also explored the relationship between methylation status of RIZ1 and clinicopathological features in RCC patients. Results: RIZ1 expression was down-regulated or lost in OS-RC-2, 769-P, Caki-1, 786-O and A498 RCC cell lines. Restored expression of RIZ1 was detected after addition of 5-aza-2'-deoxycytidine with/without trichostatin A, suggesting that DNA methylation directly mediates its silencing. The RIZ1 expression was significantly reduced in RCCs compared to adjacent non-malignant renal samples (P<0.001). Aberrant methylation was detected in 15 of 50 (30%) RCCs and in 2 of 28 (7%) adjacent non-malignant renal samples (P=0.02). No statistically significant correlation between methylated and unmethylated cases with regard to age, gender, pathological stage and grade was observed. Conclusions: RIZ1 expression is down-regulated in human RCC, and this down-regulation is associated with methylation. RIZ1 methylation may play a role in renal carcinogenesis.
Mucin2 (MUC2), an important regulatory factor in the immune system, plays an important role in the host defense system against bacterial translocation. Probiotics known to regulate MUC2 gene expression have been widely studied, but the interactions among probiotic, pathogens, and mucin gene are still not fully understood. The aim of this study was to investigate the role of MUC2 in blocking effects of probiotics on meningitic E. coli-induced pathogenicities. In this study, live combined probiotic tablets containing living Bifidobacterium, Lactobacillus bulgaricus, and Streptococcus thermophilus were used. MUC2 expression was knocked down in Caco-2 cells by RNA interference. 5-Aza-2'-deoxycytidine (5-Aza-CdR), which enhances mucin-promoted probiotic effects through inducing production of Sadenosyl-L-methionine (SAMe), was used to up-regulate MUC2 expression in Caco-2 cells. The adhesion to and invasion of meningitic E. coli were detected by competition assays. Our studies showed that probiotic agents could block E. coli-caused intestinal colonization, bacteremia, and meningitis in a neonatal sepsis and meningitis rat model. MUC2 gene expression in the neonatal rats given probiotic agents was obviously higher than that of the infected and uninfected control groups without probiotic treatment. The prohibitive effects of probiotic agents on MUC2-knockdown Caco-2 cells infected with E44 were significantly reduced compared with nontransfected Caco-2 cells. Moreover, the results also showed that 5-Aza-CdR, a drug enhancing the production of SAMe that is a protective agent of probiotics, was able to significantly suppress adhesion and invasion of E44 to Caco-2 cells by upregulation of MUC2 expression. Taken together, our data suggest that probiotic agents can efficiently block meningitic E. coli-induced pathogenicities in a manner dependent on MUC2.
Cancer/testis (CT) antigens exhibit highly tissue-restricted expression and are considered promising targets for cancer vaccines. Here we identified a novel CT gene ZNF645 which restrictively expresses in normal human testes and lung cancer patients (68.3%). To investigate the promoter methylation status of ZNF645, we carried out bisulfite genomic sequencing and found that the CpG island in its promoter was heavily methylated in normal lung tissues without the expression of ZNF645, whereas there was high demethylation in normal human testes and lung carcinoma tissues with its expression. Also ZNF645 could be remarkably activated in A549 and HEK293T cells treated by DNA demethylation agent 5'-aza-2'-deoxycytidine. And the dual luciferase assay revealed that the promoter activity of the ZNF645 was inhibited by methylation of the CpG island region. Therefore, we proposed that ZNF645 is a CT gene and activated in human testis and lung cancers by demethylation of its promoter region.
Background: Previous studies have shown that lung cancer stem cells express CD133 and that certain cancer stem cells express cancer germline antigens (CGAs). The transcriptional regulation of CD133 is complicated and poorly understood. We investigated CD133 and CGA expression in a non-small cell lung cancer cell line. Methods: The expression levels of CD133 and CGAs (MAGE-6, GAGE, SSX, and TRAG-3) were measured in an NCI-H292 lung cancer cell line. The methylation status of the CD133 gene promoter region was analyzed. The expression levels and promoter methylation statuses of CD133 and CGAs were confirmed by treatment with the demethylating agent 5-aza-2'-deoxycytidine (ADC). Results: After treatment with ADC, CD133 expression was no longer detected. MAGE-6 and TRAG-3 were detected before ADC treatment, while GAGE and SSX were not detected. ADC treatment upregulated MAGE-6 and TRAG-3 expression, while GAGE expression was still undetected after treatment, and only weak SSX expression was observed. GAGE expression was not correlated with expression of CD133, while the levels of expression of MAGE-6, TRAG-3, and SSX were inversely correlated with CD133 expression. Conclusion: These results showed that CD133 expression can be regulated by methylation. Thus, the demethylation of the CD133 promoter may compromise the treatment of lung cancer by inactivating cancer stem cells and/or activating CGAs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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