Park, Ji Eun;Park, Min Hee;Kim, Min Seong;Yun, Jung Im;Choi, Jung Hoon;Lee, Eunsong;Lee, Seung Tae
한국수정란이식학회지
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제32권4호
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pp.343-351
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2017
Porcine spermatogonial stem cells (SSCs) prefer three-dimensional (3D) culture systems to 2D ones for the maintenance of self-renewal. Of the many 3D culture systems, agar-based hydrogels are candidates for supporting porcine SSC self-renewal, and there are various types of agar powder that can be used. In this study, we sought to identify an agar-based 3D hydrogel system that exhibited strong efficacy in the maintenance of porcine SSC self-renewal. First, 3D hydrogels with different mechanics were prepared with various concentrations of Bacto agar, lysogeny broth (LB) agar, and agarose powder, and the 3D hydrogel with the strongest alkaline phosphatase (AP) activity and greatest increase in colony size was identified for the different types of agar powder. Second, among the porcine SSCs cultured in the different 3D hydrogels, we analyzed the colony formation, morphology, and size; AP activity; and transcription and translation of porcine SSC-related genes, and these were compared to determine the optimal 3D hydrogel system for the maintenance of porcine SSC self-renewal. We found that 0.6% (w/v) Bacto agar-, 1% (w/v) LB agar-, and 0.2% (w/v) agarose-based 3D hydrogels showed the strongest maintenance of AP activity and the most pronounced increase in colony size in the culture of porcine SSCs. Moreover, among these hydrogels, the strongest transcription and translation of porcine SSC-related genes and largest colony size were detected in porcine SSCs cultured in the 0.2% (w/v) agarose-based 3D hydrogel, whereas there were no significant differences in colony formation and morphology. These results demonstrate that the 0.2% (w/v) agarose-based 3D hydrogel can be effectively used for the maintenance of porcine SSC self-renewal.
One cervical cancer cell line, C9, carrying human papillomavirus type 18 (HPV18) genes that is one of the major etiologic concoviruses for cervical cancer was characterized. This cell line was further characterized for its capacity related to the epithelial cell proliferation, stratification and differentiation in reconstituted artificial epithelial tissue. The in vitro construction of three dimensional artificial cervical opithelial tissue has been engineered using C9 epithelial cancer cells, human foreskin fibroblasts and a matrix made of type I collagen by organotypic culture of epithelial cells. The morphology of paraffin embedded artificial tissue was examined by histochemical staining. The artificial epithelial tissues were well developed having multilayer. However, the tissue morphology was similar to the cervical tissus having displasia induced by HPV infection. The characteristics of the artificial tissues were examined by determinining the expression of specific marker proteins. In the C9 derived artificial tissues, the expression of EGF receptor, as epithelial proliferation marker proteins for stratum basale was observed up to the stratum spinosum. Another epithelial proliferation marker for stratum spinosum, cytokerations 5/6/18, were observed well over the stratum spinosum. For the differentiation markers, the expression of involucrin and filaggrin were observed while the terminal differentiation marker, cytokeratins 10/13 was not detected at all. Therefore the reconstituted artificial epithelial tissues expressed the same types of differentiation marker proteins that are expressed in normal human cervical epithelial tissues but lacked the final differentiation capacity representing characteristics of C9 cell line as a cancer tissue devived cell line. Expression of HPV18 E6 oncoprotein was also observed in this artifical cervical opithelial tissue though the intensity of the staining was weak. Thus this artificial epithelial tissue could be used as a useful model system to examine the relationship between HPV-induced cervical oncogenesis and epithelial cell differentiation.
The growth. freezing resistance and electrophoretic protein patterns of carrot callus cultures were investigated following treatment with NaCl for various' intervals at 20$^{\circ}C$. Following 7 day exposure to 250 mM NaCl. freezing tolerance increased, which was measured by 2.3.5-triphenyl tetrazolium chloride (TTC) assay and fresh weight was reduced compared to control cells. Changes of electrophoretic patterns of total and boiling stable proteins were investigated using one or two dimensional gel system. Several proteins with molecular weight of 43 and 21 kDa increased by NaCl treatment. The most prominent change was detected in 21 kDa protein. The steady state level of this protein increased in NaCl treated cells, but decreased in control cells. Twenty one kDa protein was detected only in the NaCl treated cell when boiling stable protein was analyzed. The isoelectric point of 21 kDa protein was identified as 5.7. The timing of increase of 21 kDa protein was correlated to freezing resistance which implied the role of this protein in the induction of freezing resistance of the cell.
Traditional cell culture(2-dimensional) is the method that provide a nutrient and environment on a flat surface to cultivate cells into a single layer. Since the cell characteristics of 2D culture method is different from the characteristics of the cells cultured in the body, attempts to cultivate the cells in an environment similar to the body environment are actively proceeding in the industry, academy, and research institutes. In this study, we will develop a technology to fabricate micro-structures capable of culturing cells on surfaces with various curvatures, surface shapes, and characteristics. In order to fabricate the hemispheric plastic structure(thickness $50{\mu}m$), plastic preform mold (hereinafter as "preform mold") corresponding to the hemisphere was first prepared by injection molding in order to fabricate a two - layer structure to be combined with a flat plastic film. Then, thermoplastic polymer dissolved in an organic solvent was solidified on a preform mold. As a preliminary study, we proposed injection molding conditions that can minimize X/Y/Z axis deflection value. The effects of the following conditions on the preform mold were analyzed through injection molding CAE, [(1) coolant inlet temperature, (2) injection time, (3) packing pressure, (4) volume-pressure (V/P). As a result, the injection molding process conditions (cooling water inlet temperature, injection time, holding pressure condition (V / P conversion point and holding pressure size)) which can minimize the deformation amount of the preform mold were derived through CAE without applying the experimental design method. Also, the derived injection molding process conditions were applied during actual injection molding and the degree of deformation of the formed preform mold was compared with the analysis results. It is expected that plastic film having various shapes in addition to hemispherical shape using the preform mold produced through this study will be useful for the molding preform molding technology and cast molding technology.
Kang, In Sook;Suh, Joowon;Lee, Mi-Ni;Lee, Chaeyoung;Jin, Jing;Lee, Changjin;Yang, Young Il;Jang, Yangsoo;Oh, Goo Taeg
BMB Reports
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제53권2호
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pp.118-123
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2020
Cardiac regeneration with adult stem-cell (ASC) therapy is a promising field to address advanced cardiovascular diseases. In addition, extracellular vesicles (EVs) from ASCs have been implicated in acting as paracrine factors to improve cardiac functions in ASC therapy. In our work, we isolated human cardiac mesenchymal stromal cells (h-CMSCs) by means of three-dimensional organ culture (3D culture) during ex vivo expansion of cardiac tissue, to compare the functional efficacy with human bone-marrow derived mesenchymal stem cells (h-BM-MSCs), one of the actively studied ASCs. We characterized the h-CMSCs as CD90low, c-kitnegative, CD105positive phenotype and these cells express NANOG, SOX2, and GATA4. To identify the more effective type of EVs for angiogenesis among the different sources of ASCs, we isolated EVs which were derived from CMSCs with either normoxic or hypoxic condition and BM-MSCs. Our in vitro tube-formation results demonstrated that the angiogenic effects of EVs from hypoxia-treated CMSCs (CMSC-Hpx EVs) were greater than the well-known effects of EVs from BM-MSCs (BM-MSC EVs), and these were even comparable to human vascular endothelial growth factor (hVEGF), a potent angiogenic factor. Therefore, we present here that CD90lowc-kitnegativeCD105positive CMSCs under hypoxic conditions secrete functionally superior EVs for in vitro angiogenesis. Our findings will allow more insights on understanding myocardial repair.
Nam, Jeoung Hyun;Lee, So Yun;Khan, Galina;Park, Eun Soo
Archives of Plastic Surgery
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제47권4호
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pp.310-316
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2020
Background To produce patient-specific nasal implants, it is necessary to harvest and grow autologous cartilage. It is crucial to the proliferation and growth of these cells for scaffolds similar to the extracellular matrix to be prepared. The pore size of the scaffold is critical to cell growth and interaction. Thus, the goal of this study was to determine the optimal pore size for the growth of chondrocytes and fibroblasts. Methods Porous disc-shaped scaffolds with 100-, 200-, 300-, and 400-㎛ pores were produced using polycaprolactone (PCL). Chondrocytes and fibroblasts were cultured after seeding the scaffolds with these cells, and morphologic evaluation was performed on days 2, 14, 28, and 56 after cell seeding. On each of those days, the number of viable cells was evaluated quantitatively using an MTT assay. Results The number of cells had moderately increased by day 28. This increase was noteworthy for the 300- and 400-㎛ pore sizes for fibroblasts; otherwise, no remarkable difference was observed at any size except the 100-㎛ pore size for chondrocytes. By day 56, the number of cells was observed to increase with pore size, and the number of chondrocytes had markedly increased at the 400-㎛ pore size. The findings of the morphologic evaluation were consistent with those of the quantitative evaluation. Conclusions Experiments using disc-type PCL scaffolds showed (via both morphologic and quantitative analysis) that chondrocytes and fibroblasts proliferated most extensively at the 400-㎛ pore size in 56 days of culture.
Hair loss, also known as alopecia, is a common dermatological condition of psychosocial significance; development of therapeutic candidates for the treatment of this condition is, hence, important. Silibinin, a secondary metabolite from Silybum marianum, is an effective antioxidant that also prevents various cutaneous problems. In this study, we have investigated the effect of silibinin on hair induction using three-dimensional (3D) cultured, human dermal papilla (DP) spheroids. Silibinin was found to significantly increase viability through AKT serine/threonine kinase (AKT) activation in 3D DP spheroids. This was correlated with an increase in the diameter of the 3D DP spheroids. The activation of the wingless and INT-1 (Wnt)/${\beta}$-catenin signaling pathway, which is associated with hair growth induction in the DP, was evaluated using the T cell-specific transcription factor and lymphoid enhancer-binding factor (TCF/LEF) transcription factor reporter assay; results indicated significantly increased luciferase activity. In addition, we were able to demonstrate increased expression of the target genes, WNT5a and LEF1, using quantitative real-time PCR assay. Lastly, significantly elevated expression of signature genes associated with hair induction was demonstrated in the 3D DP spheroids treated with silibinin. These results suggest that silibinin promotes proliferation and hair induction through the AKT and Wnt/${\beta}$-catenin signaling pathways in 3D DP spheroids. Silibinin can be a potential candidate to promote hair proliferation.
항암 활성 연구를 위한 최적의 모델로서 2-D culture 모델은 여전히 널리 사용되고 있으나, 종양 환경에 더 잘 근접할 수 있는 3D MTS 모델은 시험관 내 모델 연구와 동물 모델 연구 간의 격차를 해소하기 위한 대안이 될 수 있다. Isoalantolactone은 목향(木香: Elecampane, Inula helenium L.)을 포함한 약용 식물에서 발견되는 sesquiterpene lactone 중의 하나로서 항암 활성을 포함한 다양한 약리학적 활성을 가지고 있는 것으로 알려져 있다. 본 연구에서는 HCC Hep3B 세포에서 유래된 2D 모델에서 관찰된 isoalantolactone의 항암 활성이 3D MTS 모델에서도 재현될 수 있는지를 조사하였다. 우리들의 결과에 의하면 isoalantolactone은 처리 농도 의존적으로 MTSs 형성을 억제하였으며, ROS 생성의 증가를 동반하였다. 특히 isoalantolactone 처리 및 배양 시간이 증가하면서 증식성 세포 영역이 세포사멸이 유발된 세포로 대체되었다. 또한, MTSs에서 isoalantolactone은 DR 관련 단백질들의 발현과 caspase-3의 활성을 증가시켰고, Bax/Bcl-2 발현 비율 및 총 PARP 단백질의 발현은 감소시켰다. 그러나 ROS의 생성을 인위적으로 차단하였을 경우, isoalantolactone에 의한 이러한 변화들이 모두 차단되면서 MTSs 구성 세포들의 세포 생존율을 회복시켰다. 따라서 본 연구의 결과는 isoalantolactone에 의한 Hep3B 세포 유래 MTSs의 세포사멸 유도는 외인성 및 내인성 경로의 활성화를 통하여 이루어지며 이는 ROS 의존적임을 시사한다.
Most angiogenesis assays are performed using endothelial cells. However, blood vessels are composed of two cell types: endothelial cells and pericytes. Thus, co-culture of two vascular cells should be employed to evaluate angiogenic properties. Here, we developed an in vitro 3-dimensional angiogenesis assay system using spheroids formed by two human vascular precursors: endothelial colony forming cells (ECFCs) and mesenchymal stem cells (MSCs). ECFCs, MSCs, or ECFCs+MSCs were cultured to form spheroids. Sprout formation from each spheroid was observed for 24 h by real-time cell recorder. Sprout number and length were higher in ECFC+MSC spheroids than ECFC-only spheroids. No sprouts were observed in MSC-only spheroids. Sprout formation by ECFC spheroids was increased by treatment with vascular endothelial growth factor (VEGF) or combination of VEGF and fibroblast growth factor-2 (FGF-2). Interestingly, there was no further increase in sprout formation by ECFC+MSC spheroids in response to VEGF or VEGF+FGF-2, suggesting that MSCs stimulate sprout formation by ECFCs. Immuno-fluorescent labeling technique revealed that MSCs surrounded ECFC-mediated sprout structures. We tested vatalanib, VEGF inhibitor, using ECFC and ECFC+MSC spheroids. Vatalanib significantly inhibited sprout formation in both spheroids. Of note, the $IC_{50}$ of vatalanib in ECFC+MSC spheroids at 24 h was $4.0{\pm}0.40{\mu}M$, which are more correlated with the data of previous animal studies when compared with ECFC spheroids ($0.2{\pm}0.03{\mu}M$). These results suggest that ECFC+MSC spheroids generate physiologically relevant sprout structures composed of two types of vascular cells, and will be an effective pre-clinical in vitro assay model to evaluate pro- or anti-angiogenic property.
Rian Kang;Soomin Park;Saewoon Shin;Gyusoo Bak;Jong-Chan Park
BMB Reports
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제57권7호
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pp.311-317
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2024
Brain organoid is a three-dimensional (3D) tissue derived from stem cells such as induced pluripotent stem cells (iPSCs) embryonic stem cells (ESCs) that reflect real human brain structure. It replicates the complexity and development of the human brain, enabling studies of the human brain in vitro. With emerging technologies, its application is various, including disease modeling and drug screening. A variety of experimental methods have been used to study structural and molecular characteristics of brain organoids. However, electrophysiological analysis is necessary to understand their functional characteristics and complexity. Although electrophysiological approaches have rapidly advanced for monolayered cells, there are some limitations in studying electrophysiological and neural network characteristics due to the lack of 3D characteristics. Herein, electrophysiological measurement and analytical methods related to neural complexity and 3D characteristics of brain organoids are reviewed. Overall, electrophysiological understanding of brain organoids allows us to overcome limitations of monolayer in vitro cell culture models, providing deep insights into the neural network complex of the real human brain and new ways of disease modeling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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