In order to detect the T-2 toxin accumulation in the animal tissues, T-2 toxin, produced by Fusarium sporotrichioides M-1-1, was injected to mouse by 0, 1 and 2 mg per kilogram of body weight, respectively, and T-2 toxin extracted from serum and organs were analyzed by the indirected competitive ELISA. The indirect competitive ELISA established in the laboratory can be check less than 0.1 ppb level of T-2 toxin and average recovery of T-2 toxin spiked was 80~113% in animal samples such as serum, liver and kidney. After 6 weeks of treatment with 2 mg of T-2 toxin per kg body weight, T-2 toxin was accumulated in serum (133.0 ng/ml), liver(1.4 ng/g) and kidney(14.3 ng/g) of mouse injected with 2 mg of toxin per kg body weight.
The antifungal effects of polyposphates on the growth and T-2 toxin production of Fusarium sporotrichioides M-1-1 were investigated. The growth of the strain was significantly inhibited in the potatoes dextrose agar medium treated with 1.5% polyphosphates or more. When we checked T-2 toxin by the indirect competitive ELISA, the strain produced 11.25 ug/ml and 10.90 ug/ml levels of T-2 toxin rice and corn containing 50% moisture contents, respectively. However, T-2 toxin was little detected in rice medium and corn medium with 1.5% polyphosphates addition for short(14 days) and prolonged incubation time(45 days). We also observed the destruction of cell wall and outflow of cell ingredients with 1% polyphosphates treatment to the strain. Therefore, moisture and polyphosphates greatly effected on the growth and T-2 toxin production of the strain.
T-2 toxin is one of mycotoxins produced by fungi such as Fusarium spp. and possesses a potent cytotoxicity to eukaryotic cell. The contamination of mycotoxins in cereals and feedstuffs is one of the great concerns in health authorities. Therefore, the development of the specific, sensitive and simplified analysis method for T -2 toxin is required. During more than ten years, several chemical and biological analysis methods were proposed and applied for the detection and quantification of T-2 toxin. TLC, GLC-FID and GC-MS are widely employed, but these methods required numerous clean-up procedures before analysis, and the detection limit for T-2 toxin is more than 10 ppb. Biological analysis methods with dermal tissues and cultured cells are not specific to T-2 toxin, since T-2 toxin and other related derivatives possess a similar toxicological activity although their relative activity is different each otber. Based on tbe specific reaction between antibody and antigen, the authors tried to introduce the immunochemical methods for determination of T-2 toxin. The enzyme-linked immunosorbent assay method using monoclonal antibody for T-2 toxin was applied to analyse T-2 toxin. The detection limit of T-2 toxin by ELISA method was 0.1 ppb. The correlation between ELISA and GC-MS method on these samples was very high. ELISA method developed for the detection and quantification of T -2 toxin in this paper possesses simplicity, high sensitivity and specific for T-2 toxin. Furthermore, the ELISA method with T-2 toxin monoclonal antibody was an excellent tool for the screening of Fusarium spp. which was suspected to produce T-2 toxin.
Clostridium difficile toxin A is known to cause colonic epithelial cell apoptosis, which is considered the main causative event that triggers inflammatory responses in the colon, reflecting the concept that the essential role of epithelial cells in the colon is to form a physical barrier in the gut. We previously showed that toxin A-induced colonocyte apoptosis and subsequent inflammation were dependent on prostaglandin E2 ($PGE_2$) produced in response to toxin A stimulation. However, the molecular mechanism by which $PGE_2$ mediates cell apoptosis in toxin A-exposed colonocytes has remained unclear. Here, we sought to identify the signaling pathway involved in toxin A-induced, $PGE_2$-mediated colonocyte apoptosis. In non-transformed NCM460 human colonocytes, toxin A exposure strongly upregulated expression of Bak, which is known to form mitochondrial outer membrane pores, resulting in apoptosis. RT-PCR analyses revealed that this increase in Bak expression was attributable to toxin A-induced transcriptional upregulation. We also found that toxin A upregulation of Bak expression was dependent on $PGE_2$ production, and further showed that this effect was recapitulated by an Prostaglandin E2(PGE2) receptor-1 receptor agonist, but not by agonists of other EP receptors. Collectively, these results suggest that toxin A-induced cell apoptosis involves $PGE_2$-upregulation of Bak through the EP1 receptor.
A simplified method for the purification of cholera toxin was developed. The 569B strain of Vibrio cholerae, a recognized hyper-producer of cholera toxin, was propagated in a bioreactor under conditions that promote the production of the toxin. The toxin was separated from the bacterial cells using 0.2-${\mu}m$ crossflow microfiltration, the clarified toxin was passed through the membrane into the permeate, and the bacterial cells were retained in the retentate. The 0.2-${\mu}m$ permeate was then concentrated 3-fold and diafiltered against 10 mM phosphate buffer, pH 7.6, using 30-kDa crossflow ultrafiltration. The concentrated toxin was loaded onto a cation exchange column, the toxin was bound to the column, and most of the impurities were passed unimpeded through the column. The toxin was eluted with a salt gradient of phosphate buffer, pH 7.0, containing 1.0 M NaCl. The peak containing the toxin was assayed for cholera toxin and protein and the purity was determined to be 92%. The toxin peak had a low endotoxin level of $3.1\;EU/{\mu}g$ of toxin. The purified toxin was used to prepare antiserum against whole toxin, which was used in a $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA to determine residual levels of toxin in an oral inactivated whole-cell cholera vaccine. The $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA was shown to be very sensitive and capable of detecting as little as 1 ng/ml of cholera toxin.
T-2 toxin and HT-2 toxin, belong to type A trichothecences, are the most toxic mycotoxins among the trichothecene family. These mycotoxins are commonly found in cereals such as maize, wheat, barley, oats and rice, and their occurrence in food can be of concern. This review investigated the current trends of patents and researches on T-2 toxin and HT-2 toxin pertaining to natural occurrence, toxicity, metabolism, risk assessment, analytical and screening methods, and reduction/detoxification techniques. As compared with other $Fusarium$ mycotoxins, there are limited data for natural occurrence and risk assessment, and regulatory limit and official analytical methods on T-2 toxin and HT-2 toxin in domestic and foreign countries. In particular, selective deacetylation at the C3 and/or C4 positions of T-2 toxin by carboxyesterase present in foods was reported to cause the disappearance of T-2 and the extremely high HT-2 recoveries. Currently, regulatory limits for T-2 and HT-2 are under discussion in EU. For enforcement purposes it is essential to have available precise and reliable analytical methods applicable at the regulatory levels for the T-2 toxin and HT-2 toxin and relevant commodities. In addition, a further study on natural occurrence, risk assessment and reduction/detoxification techniques will be recommended.
The effects of T-2 toxin on mitogen-induced blastogenesis of chick splenic cells were investigated. The [$^3H$] thymidine incorporation in splenic cells stimulated by lipopolysaccharide and concanavalin A were equally inhibited as the concentration of T-2 toxin was increased. The effective dose of T-2 toxin causing a 50% reduction of [$^3H$] thymidine incorporation was inbetween 1.0 and 5.0 ng/ml for both mitogens. Mitogen-induced blastogenesis in chick splenic cells showed differences among experimental groups with different exposure time of T-2 toxin, exhibiting the most inhibition in the experimental group exposed to T-2 toxin at both embryonic and chick periods.
Seok, Heon;Nam, Hyo-Jung;Nam, Seung-Taek;Kang, Jin-Ku;Kim, Sung-Kuk;Chang, Jong-Soo;Ha, Eun-Mi;Park, Young-Joo;Kim, Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.2
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pp.170-175
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2012
Clostridium difficile toxin A glucosylates Rho family proteins, resulting in actin filament disaggregation and cell rounding in cultured colonocytes. Given that the cellular toxicity of toxin A is dependent on its receptor binding and subsequent entry into the cell, we herein sought to identify additional colonocyte proteins that might bind to toxin A following its internalization. Our results revealed that toxin A interacted with ERK1 and ERK2 in two human colonocyte cell lines (NCM460 and HT29). A GST-pulldown assay also showed that toxin A can directly bind to ERK1 and ERK2. In NCM460 cells exposed to PMA (an ERK1/2 activator), the phosphorylation of ERK1/2 did not affect the interaction between toxin A and ERK1/2. However, an in vitro kinase assay showed that the direct binding of toxin A to ERK1 or ERK2 inhibited their kinase activities. These results suggest a new molecular mechanism for the cellular toxicity seen in cells exposed to toxin A.
The cultural and physiological conditions for the T-2 toxin [4,15-diacetoxy-8-(3-mety1butyloxy)-12,13- epoxy-trichothec-9-en-3-01, $C_{24}H_{30}O_9$] production by Fusarium spp. were studied. Thin layer chromatography (TLC) assay and the microbiological assay uslng Rhodotomla rubra were used to quantitate tbe T- 2 toxin. Among the four strains of Fusarium spp., F tn'cinctum NRRL 3299 was best for T-2 toxin production. In solid culture, white com grit medium was best for T-2 toxm production. Temperature played a critical role in the production of T-2 toxin. T-2 toxin production was favored by long duration of low-temperature incubation. The growth and toxin production were relatively high on galactose, fructose, glucose, and sucrose media, when each was used as a sole carbon source, and relatively low on sorbitol, glycerol, and lactose media. For nitrogen sources, $NH_4^(+) and NO_3^{-}were used well as a sole nitrogen source, but $NO_2^-$ was not used. Initial pH and speed of shaker also affected the production of T-2 toxin. From temperature shifting experiment, it is clear that T-2 toxin metabolic pathway is regulated by temperature-dependent enzyme depression or enzyme induction system.
The ability of Modified Glucomannan (MG) to bind T-2 toxin (T-2) in the gastrointestinal tract has been tested in vivo by feeding 120 five-wk-old broiler chicken with the following six treatment diets, 1) Control diet; 2) Control+MG (0.1%); 3) Control+T-2 (500 ppb); 4) Control+T-2 (500 ppb)+MG (0.1%); 5) Control+T-2 (1,000 ppb) and 6) Control+T-2 (1,000 ppb)+MG (0.1%). Twenty birds were assigned to each treatment group, which had five experimental groups. Four birds of each experimental group were sacrificed at an interval of 30 min i.e. at 0, 30, 60, 90 and 120 min after feeding experimental diets. The whole gut contents of each bird were collected, dried and toxin concentration was determined. Percent T-2 recovered from the gut was significantly lower (p<0.05) in the groups fed MG at all the time intervals. The percent T-2 adsorbed by the MG at different T-2 levels (500 and 1,000 ppb) was 15.97 and 14.77, 22.53 and 22.67, 26.88 and 28.03, and 31.50 and 31.83 at 30, 60, 90 and 120 min, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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