For the resistance test for Phytophthora blight of $T_1$ and $T_2$ transformants in pepper, Phytophthora blight fungus was inoculated to seedlings of the $T_1$ and $T_2$ transformants by concentration (density: zoospore $10^3/ml$). Occurrence rate of blight at 5days after inoculation was 4.0 % in T1-1 line and 10.0% in $T_1-2$ line, and its rate for 12 days after inoculation was 52.0% in $T_1-1$ line, 64.0% in $T_1-2$ line, respectively. Therefore, the lower occurrence rate to blight was enable to select resistant transformants in the some inoculation density (zoospore $10^3/ml$), meanwhile 'Kumtap' and 'Subicho' were 100% in highest occurrence rate to blight. For field test, in which blight was commonly occurred, of the Youngyang Pepper Experiment Station, the acquired transformant resisting to blight was similar to characteristics of domestic varieties, 'Subic
ho' for fruit shape, but there are some differences in growth, days to flowering, fruit characteristics. Occurrence of blight in $T_2-1-6$, and $T_2-4-9$ lines was smaller approxmately 30% than commercial varieties, 'Kumtap', although occurrence of blight in field was showed higher difference among tested lines. In this study, we concluded that the transformants showing blight resistance selected from habitual field could be fixed at every generation, and the developed transformation system was also considered to develop transformants in pepper.
A less simple approach developed for generation of marker-free transgenic plants is to select transformants without the use of selective marker genes. Some results about development of marker-free transgenic plants were obtained using a non-selective approach in several crops such as rice, potato and tobacco. However, the study did not provide evidence on detailed characterization of introduced gene on genome, a critical step for confirming the stable integration and transmission of a foreign gene. In this study, we evaluated structure and integration sites of transgene (mCry1Ac) in the transgenic Bt rice plants which were made via conventional Agrobacterium-mediated transformation by non-selective method. Structure and integration sites of transgene in these transgenic plants had similar fashion as those recovered under selection.
Total of 78 strains were characterized based on the morphological characteristics of colonies isolated on Schroth, and New & Kerr's media for selection of hypervirulent wild-type Agrobacterium spp from galls, hairy root-like process and soil of Populus, Malus, Salix and Diopyros in Korea. Among them, 48 strains were able to induce tumors in carrot disc. Hypervirulent A. tumefaciens SP101 and SM042 were identified as biotype 1 and biotype 2, respectively, These strains formed fast growing, larger tumors as compared to those induced by other strains. The binary vector pGA643 with kanamycin resistant gene was mobilized from E. coli MC100 into A. tumefaciens strain SM042 isolated from soil, and/or disarmed vector PC2760 using a triparental mating method with E. coli HB101/pRK2013, and transconjugants, A. tumefaciens SM643 and PC643 were obtained in minimal media containing kanamycin and tetracycline. Tobacco tissues were cocultivated with conjugant Agrobacterium and then transferred to selective medium with 2,4-D and kanamycin to induce the transformants. Calli were formed more efficiently in cocultivation with A. tumefaciens SM643 than that with A. tumefaciens PC643. Most of calli transformed with A. tumefaciens PC643 were friable and regenerated into normal plantlets, while the calli transformed with A. tumefaciens SM643 were compact, hard, and mixed with friable calli. The friable calli formed normal shoots, while compact calli did not form shoots but only grew to typical compact tumor calli. When the shoots formed directly from tobacco stems without callus induction after transformation by A. tumefaciens SM643 with wild-type Ti-plasmid, normal transformed plants can be induced without using disarmed Ti-plasmid.
Agrobacterium tumefaciens MP90 harboring PAT (phosphinothricin acetyltransferase) and NPTII-GUS gene were used for the genetic transformation of lettuce (Lactuca Sativa L.). Shoot regeneration from cotyledon explants were obtained from the MS medium supplemented with 0.1 mg.L$^{-1}$ NAA, 1.0 mg.L$^{-1}$ 2ip, 50 mg.L$^{-1}$ kanamycin and 500 mg.L$^{-1}$ carbenicillin after cocultivation with A. tumefaciens for 2 days. Kanamycin resistance test of transgenic plants indicated that the NPTII gene was integrated into the lettuce genome and was stably expressed. PCR and northern blot analysis indicated that bialaphos resistance gene (PAT) was stably integrated into the lettuce genome. The transgenic plant sprayed with Basta (1500x) remained healthy with continuous growth, while the control group exhibited fatality.
We have established a transformation system for entomopathogenic fungus, Metarhizium anisopliae, in order to develop mycoinsecticide by recombinant DNA techniques. Protoplasts of M. anisopliae would be transformed to a benomyl-resistant by introducing pBRG-4 plasmid DNA, which contains a ${\beta}-tubulin$ gene of Aspergillus flavus conferring resistance to benomyl and a pyr4 gene of Neurospora crassa, in the presence of 5% polyethylene glycol and 10 mM calcium chloride. Transformants occuring at a frequency of 10 colonies per $50\;{\mu}g$ pBRG-4 DNA grew on the $5\;{\mu}g/ml$ concentrations of benamyl, while the wild type was inhibited by $2.5\;{\mu}g/ml$. From the Southern analysis using genomic DNAs isolated from M. anisopliae transformants, the positive signals suggested that the ${\beta}-tubulin$ gene had integrated in the M. anisopliae genome by homologous recombination.
In vitro grown microtubers of potato (cv Jaju) were used for introduction of herbicide resistance gene using bombardment with DNA-coated particles. The apical shoot-tip area of newly sprouted microtubers were intensively bombarded. After bombardment, microtubers were germinated and transplanted in a greenhouse. Northern blot analysis indicated that bar gene was expressed in two plantlets. After 5 weeks of growing, commercial herbicide Basta was sprayed to screen the resistant plants. All untransformed potato plants died after 7 days while two transgenic plants survived.
The expression and secretion of human lactoferrin (hLf) in Sacclnromyces diastaticus were performed. 1. For the secretion of hLf in yeast, recombinant plasmid pYEGLf was constructed using promoter, secretion signal sequence of glucoamylase I gene (STA1) and transcriptional terminator of GAL7 gene. 2. Each correct recombinant plasmid was selected by mini-preparation of plasmid DNA from E coli transformant and restriction enzyme digestion analysis. The selected plasmids, pYEGLf, were transformed into S. diastaticus YIY345 as a expression host, respectively. 3. Western blot analysis using rabbit anti-hLf was carried out to identify expressed hLf. Positive signals were shown in culture supernatant of pYEGLf transformant. 4. About $100{\mu}g-1mg$ of concentrated culture supernatant of positive clone were loaded on paper disc and tested for the antimicrobial activity against E coli. However, no activity was observed. We concluded that this fact results from low concentration of hLf secreted from yeast, compared with the fact that MIC of hLf is as high as $3mg/m{\ell}$. Therefore, the purification of secreted hLf may be require to investigate the antimicrobial activity. From this study, the feasibility of low-cost production of sufficient quantities of human lactofferin for nutritional and therapeutical applications were suggested.
Kim, Hyun-Jin;Lee, Jae-Hyung;Kim, Yeon-Hee;Nam, Soo-Wan
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.36
no.4
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pp.307-313
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2008
The yeast surface expression system, pCTXYN (6.8 kb), of Bacillus endoxylanase gene (xynB, 642 bp) was constructed and introduced into Saccharomyces cerevisiae EBY100 cell. The transformed yeast cell showing the highest endoxylanase activity was selected through the active staining of colonies grown on YPDG medium containing xylan. With the yeast transformant, EBY100/pCTXYN, grown on galactose containing medium, it was found that the endoxylanase was successfully displayed on the yeast cell surface and the xylooligosaccharides were efficiently produced from xylan. The most of endoxylanase activity was detected in the cell fraction and reached about 1.9 unit/mL after 48 h cultivation. The optimized conditions for xylooligosaccharides production from xylan were determined as follows: substrate and its concentration, oat spelt xylan 6%; concentration of yeast whole-cell, 5 unit/mL; temperature, $50^{\circ}C$, and reaction time $2{\sim}4\;h$. When the oat spelts xylan and corncob xylan were hydrolyzed by treatment with cell surface-displayed endoxylanase, xylotriose was formed as a main product.
Bacillus licheniformis 9945a releases a natural ${\gamma}-poly(glutamic\;acid)({\gamma}-PGA)$ into fermentation broth and shows a mucoid phenotype on the solid agar medium. Transformation of mucoid cells of Bacillus species has not been simple and straightforward. The transpositional activity of Tn10 in B. licheniformis also has not been own either. Thus, a spontaneous non-mucoid derivative of the B. licheniformis was obtained first. Shuttle vector pHV1248 containing mini-Tn10 was introduced into the non-mucoid derivative by the method of protoplast transformation. The resulting transformant was reverted to the wild mucoid phenotype, and then mutated randomly with the mini-transposon by heat induction. Auxotrophs requiring arginine, lysine, or tryptophan were isolated by replica plating method. Southern blotting and DNA-DNA hybridzation analysis showed that these auxotrophs were generated by mini-Tn10 insertion into the chromosomal DNA. This method of transformation and mutation using pHV1248 would be useful for the generation of diverse mutants of B. licheniformis 9945a.(Received January 24,1997; accepted March 10, 1997)
Transgenic lily plants have been obtained after particle bombardment, using PDS-1000/He system and scale explants of lilies, followed by PPT (D-L-phosphinothricin) selection. In this study, scales of the lily plants cv. 'red flame' were bombarded with a plasmid containing the bar gene as a selectable marker, and the AtSIZ gene as a gene of interest, showing salt tolerance and drought tolerance respectively, and both being driven by the CaMV 35S promoter. For optimization of a protocol, factors which optimized and showed a high transformation efficiency under following conditions, were considered: a bombardment pressure of 1100 psi, a target distance of 6 cm and $1.0{\mu}m$ of gold particle, and 24-h pre-culture and post-culture on MS medium containing 0.2 M sorbitol and 0.2 M mannitol as osmoticum agents. After bombardment, all the bombarded scales of lily were transferred to MS medium without selective agents, for a week. Subsequently, these bombarded scales were transferred to a selection MS medium containing 10 mg/l PPT, and incubated for a month for further selection, after which they were cultured for another 4-8 weeks with a 4-week subculture regime on the same selection medium. After transferring into hormone-free MS medium, the PPT-resistant scales with shoots were successfully rooted and regenerated into plantlets. PCR analysis revealed that the surviving putatively transformed plantlets indicated the presence of both the bar gene and the AtSIZ gene. In conclusion, when 100 scales of lily cv. Red flame are bombarded, this study produced approximately 17-18 transgenic plantlets with an optimized bombardment protocol. The protocol described here can contribute to the breeding program of lilies.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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