• Proceedings of the KSAR Conference
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• 2003.06a
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• pp.68-68
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• 2003

오늘날 형질전환동물의 생산과 같은 생명공학기술의 발달로 인하여 우리나라 재래산양은 그 모델동물로서 번식 생리학적으로 매우 중요한 가치를 지니고 있을 뿐만 아니라 고유의 유전자원 보존 측면에서도 산양복제와 같은 다양한 연구가 절실히 요구된다. 따라서 본 연구에서는 이러한 생명공학기술의 기초자료를 제공하고자 난포란의 활성화 방법과 단위발생란의 체외발달율을 조사하였다. 성숙한 미경산 재래산양을 공시동물로 하여 CIDR를 이용하여 발정동기화를 시켰으며, 과배란 처리는 FSH와 hCG를 이용하여 과배란 처리를 실시하였고 난포란의 회수는 외과적 방법으로 개복하여 난소의 난포로부터 난자와 난포액을 흡입하여 회수하였다 난포란의 활성화 처리는 전기자극법과 약물처리 방법을 사용하였으며, 전기자극방법은 DC 2.36㎸/cm, 17$\mu$sec 전압으로 1회 전기자극을 가하여 활성화를 유도하였으며, 약물처리법은 5$\mu\textrm{g}$/$m\ell$의 ionomycin 용액에서 5min, 1.9mM 6-DMAP용액에서 4시간동안 처리하여 활성화를 유도하였다. 단위발생란의 배양은 10% GS(goat serum)가 첨가된 M16 배양액과 10% FBS가 첨가된 TCM-199 배양액에서 난관상피세포와 6~7일동안 공배양을 실시하면서 체외발달율을 조사하였다. 활성화 방법에 따른 체외발달율은 전기자극 및 약물처리를 하였을때 분할율은 3.1% 및 67.9%였으며, 상실배 및 배반포로의 발달율은 0% 및 7.9%였다. 단위발생란의 체외 발달율은 10% GS가 첨가된 M16 배양액을 사용하였을 때 분할율은 68.0%였으며, 이중 12.0%가 상실배 또는 배반포로 발달하였다. 뿐만 아니라 10% FBS가 첨가된 TCM-199 배양액에 난관상피세포와 공배양을 실시하였을 경우는 72.0%가 분할하였으며, 이중 16.7%가 상실배 또는 배반포로 발달하였다. 이상의 결과로 볼 때 활성화 처리는 ionomycin과 6-DMAP 용액처리가 적합하며, 단위발생란의 체외배양은 보다 적합한 배양조건의 확립이 필요한 것으로 생각된다.

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.22 no.2
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• pp.187-194
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• 1998

In order to determine suitable conditions for rapid freezing of porcine embryos, the kind and concentration of cryoprotectants, sucrose concentrations, equilibration time and thawing temperature in freezing medium were examined in relation to the survival of frozen-thawed oocyte and embryos. The results obtained are as follows : 1. The suitable concentrations of cryoprotoctant in the freezing medium which consisted of TCM-199+20% FCS were 1.5M for glycerol, 2.0M for DMSO, 2.5M for ethylene glycol, and 2.0M for propanediol. The sucrose concentration of 0.25M in the medium was found to optimal because the survival rate was markedly higher at this concentration when compared to the others. The survival rate was relatively high when the frozen embryos were thawed at 30$^{\circ}C$ in the freezing medium containing 2.5M cryoprotectants. The equilibration periods of 2.0 and 5.0 minutes revealed the higher survival in the media containing 1.5 or 2.1M glycerol when compared to 10 and 15 minutes. 2. The fertilization rates of frozen-thawed follicular oocytes which matured in vitro for 1, 12, 24 and 48 hours were 6.7~26.7% depending on the maturation time, and the rates were relatively high for those matured for a short period of time. The survival rates of frozen-thawed oocytes which matured in vitro for certain periods and fertilized were 10.0~30.0% depending on the maturation time.

• Reproductive and Developmental Biology
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• v.28 no.2
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• pp.127-132
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• 2004

This study was conducted to examine the effects of electric stimulation conditions on in vitro developmental ability of caprine embryos after somatic cell nuclear transfer. Recipient oocytes were surgically collected after superovulation by using CIDR and FSH, PMSG, hCG and estrous synchronization in Korean native goats. The caprine ear cells were cultured in vitro in serum-starvation condition (TCM-l99 + 0.5% FBS) for 3 to 5 days of cell confluence. The zona pellucida of in vivo and in vitro matured oocytes were partially drilled using laser system. Single somatic cell was individually transferred into the enucleated oocyte. The reconstructed oocytes were electrically fused with 0.3M mannitol. After the electofusion, embryos were activated by electric stimulation or Ionomycin + 6-DMAP. Nuclear transfer embryos were cultured in mSOF medium supplemented with 0.8% BSA 6∼7 days at 39 , 5% $CO_2$, 5% $O_2$, 90% $N_2$. The fusion rate of donor cells was 60.4% and 40.3 % in ear cell and fetal fibroblast, and cleavage rate were 40.6% and 48.2%, respectively. No significant difference was found in the fusion and cleavage rate in different donor cells. Nuclear transferred oocytes were fused by electric pulses of 1.30∼1.40, 2.30∼2.39 and 2.40∼2.46 ㎸/cm. There was no significant difference among different electric pulses in fusion rates (26.7, 34.8 and 43.8%). The cleavage rate was higher (p<0.05) in 1.30∼1.40 ㎸/cm (82.9%) than 2.30∼2.39 ㎸/cm (43.8%) and 2.40∼2.46 ㎸/cm. (51.8%). The fusion rates of recipient oocyte source were 1st (43.5% and 23.6%), 2nd (55.7％ and 39.2%) and 3rd (66.1% and 52.8%) in in vivo and in vitro oocytes. However, fusion ratee were significantly higher (p<0.05) in in vivo than in vitro oocyte. The cleavage rate of fused oocytes from in vivo and in vitro sources were 52.6% and 54.4%, respectively. No significant difference was found in the cleavage rate according to the recipient oocyte source. These results suggest that factors such as field pulse of electric stimulation and oocyte source could affect in vitro developmental ability of nuclear transplanted caprine oocytes.

• Journal of Embryo Transfer
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• v.11 no.3
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• pp.241-248
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• 1996

This study was conducted to improve the production efficiency of in vitro produced (IVP) embryos in Korean Native cows. The optimal conditions and procedures for in vitro maturation(IVM), in vitro fertilization(IVF) and in vitro culture(IVC) of bovine follicular oocytes and IVP embryos were evaluated. Immature follicular oocytes were collected fiom the follicles of bovine ovaries obtained from abattoirs. The oocytes of Grade I and II for IVM were cocultured with monolayered bovine oviductal epithelial cells(BOEG) or granulosa cells in TCM-199 solution supplemented with follicle stimulating hormone, lutenizing hormone, estradiol-17$\beta$ and heat inactivated fetal calf serum at 39$^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air for 14 to 24 hours. Most of the oocytes(93%) matured to metaphase II in 24 hours. The cocultured IVM oocytes were fertilized in vitro at significantly(P<0.05) higher rate with BOEC(83.8%) and with granulosa cells(84.6%) than the non-cocultured IVM oocytes(73.6%). The IVM-IVF embryos developed to morula and blastocyst at significantly(P<0.05) higher rate in coculture with BOEC(41.2%) than with granulosa cells(23.1%) or conditioned medium(23.4%).

• Journal of Embryo Transfer
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• v.14 no.2
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• pp.99-106
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• 1999

핵 이식에 공여되는 수핵난자의 효과적인 동결보존을 위하여 한우 성숙난자를 1.0 M dimethylsulfoxide(DMSO) 또는 1.0 M glycerol이 함유된 동결보호제를 이용하여 처리하거나, 동결보호제 처리 후 완만동결법을 이용한 동결융핼르 시행하여 상기 실험처리로 야기되는 투명대 경화현상을 관찰하였다. 도축장 유래의 난소에서 미성숙난자를 채취한 후 10% 소 태아혈청을 함유한 TCM-199을 이용하여 22∼24 시간 동안 체외성숙배양을 이해하였다. 배양후 작출된 성숙난자를 각각의 동결보호제로 처리, 혹은 처리 후 동격융해한 후 protease를 이용하여 투명 대의 경화현상 발생의 빈도를 조사하였다. 또한 동격란을 동결정액을 이용한 체외수정에 공여한 후 정자 침입농도능을 조사하였다. 동결보호제로 처리한 난자에 있어서 보호제의 종류와 관계없이 투명대 경화현상이 유의적 (P<0.05) 으로 증가하였으나 이후의 동결융해 처리에 의한 추가적인 경화현상의 발생은 증가하지는 않았다. 또한 투명대 경화현상의 발생양상을 동결보호제 처리 후 10분 간격으로 측정한 결과 DMSO의 경우 처리후 10분, glycerol의 경우 처리 후 20분 후부터 유의적으로 차를 발견할 수 없었으며, 수정율 및 난자 1개당 침입한 정자의 수는 동결란에서 유의적으로 증가하지 않았다. 본 연구의 결과 동결난자의 투명대 경화현상은 동결보호제 처리과정에서 이미 일어나지만, 이러한 투명대 경화현상이 난자의 동결보존 후 수정능에는 현자한 영향을 미치지 않는다는 사실이 규명되었다.

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.25 no.2
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• pp.125-130
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• 2001

This study was performed to report a direct dose dependent stimulatory effect of the Flavonoid(F) on basal testosterone secretion and a dose dependent effect on LH induced testosterone production by Leydig cell of matured rats in vitro culture. F was obtained kom the Rhus vernicifua through aceton extraction and silica gel adsorption column chromatography. Leydig cells (1$\times$10$^{6}$ cells/well) from 12 weeks old rats were incubated with or without F(0, 20, 40, 80, 160 ng) or insulin-like growth factor-I(IGF-I) in the presence or absence of LH(10, 100ng). 1. The maximal stimulatory concentrations of testosterone in culture media were showed at 24hr of culture. but these testosterone level were decreased at 36 hr of culture. 2. Flavonoid(80ng) were significantly(P ＜ 0.05) increased testosterone production compared with control groups for 12 hr culture. 3. Testosterone secretion by Leydig cells stimulated with LH(10, 100ng) for 6 hr and 12hr culture compared with 3 hr culture. 4. LH 10 ng augmented testosterone were increased by addition of F 40 ng for 12 hr culture. 5. F(0 and 40 ng) also enhanced LH 10 ng stimulated testosterone for 3 hr Leydig cells culture. 6. Addition of IGF-I 100 ng to the culture medium for 6 hr were increased the concentration of testosterone by Leydig cells stimulated with 100 ng LH. These results indicate that Flavonoid has a direct stimulatory effect on basal testosterone secretion in rat Leydig cells, and also modulates LH mediated testosterone. Therefore, Flavonoid may act as a modulator on gonadal development or gonadal steroidogenesis in direct or indirect.

• Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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• 2002.11a
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• pp.86-86
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• 2002

면양과 염소가 최근 수십년동안 세계여러 나라에서 번식생리의 연구를 위한 모델로 사용되어 왔는데, 체내수정란의 생산에 관한 영역도 유럽을 중심으로 활발하게 연구되어왔다. 수정란생산을 위한 발정동기화방법, 과배란처리 및 수정란회수방법 기술은 현재 상당히 많은 기술진척이 이루어진 상태이나, 우리나라 고유의 재래유전자원인 흑염소에는 이를 위한 기술이 미진한 실정이므로 본 실험에서는 흑염소의 체내수정란생산기술을 확립하여 재래가축 유전자원보존을 위한 기초기술을 마련하고자 한다. 축산기술연구소 남원지소에서 사육하고 있는 체중 20kg 이상의 건강한 흑염소를 이용하여 발정동기화를 위해 controlled intravaginal drug release(CIDR)를 질내에 14일 동안 삽입하고, 과배란처리는 FSH를 CIDR 삽입 12, 13, 14일째에 12시간 간격으로 점감법으로 총20mg을 투여하였으며, PGF$_2$a를 13일째 FSH와 함께 투여하였다. CIDR는 14일째의 아침에 제거하였다. 수컷과의 교미는 CIDR제거 24시간후에 GnRH를 투여와 동시에 실시하였으며, 채란은 교미후 3일째에 외과적인 방법으로 실시하였다. CIDR처리경과에 따른 progesterone농도는 CIDR 주입시 바로 수치가 상승하여 제거전까지 6~12ng/m1의 농도를 유지하였으며, 제거즉시 2ng/ml 이하로 떨어졌다. 채란시 평균 배란점은 16.5개, 미배란난포 9.8개였으며, 회수수정란은 6.0개를 나타내어 채란율은 36.4%를 나타내었다. 회수된 수정란의 발달단계는 4-cell 78.9%, 2-cell 5.3%, fragmentation 15.8%를 나타내었다. 이와 같은 체내수정란생산방법을 기반으로 하여 이후 수정란의 동결 및 수정란이식기법에 관한 연구를 수행한다면 우리나라의 재래가축인 흑염소의 유전자원 장기보존과 생산성향상에 기여할 것으로 사료된다.배양액에 30 embryos/50ul 소적으로하여 38.8$^{\circ}C$, 5% $CO_2$의 탄산가스 배양기에서 각각 7일간 배양을 실시하였다. 조사된 결과는 SAS/STAT를 이용하여 통계분석을 실시하였다. 체외수정 12시간 후에 난자 급속 염색법으로 염색을 실시한 결과, 모든 처리구에서 핵성숙률(76.4~95.2%), 정자침투율(51.1~66.9%), 웅성전핵형성률(95.2~100%), 다정자침입률(18.2~25.6%) 및 평균침입정자수(1.2~l.4개)에서 유의적인 차이가 인정되지 않았다. 체외배양 48시간 난할률을 조사한 결과, 처리구별 차이(53.9~67.9%)는 인정되지 않았으나, 배양 7일째 배반포형성률은 각각 14.5, 25.4, 17.3 및 12.4%로서 25uM의 $\beta$-ME처리구가 유의적(P<0.05)으로 높은 배발달률을 나타내었고, 총세포수에 있어서는 대조구와 처리구간 유의적인 차이가 인정되지 않았다. 따라서 돼지 난포란을 성숙배양할 때, 25uM $\beta$-ME를 첨가배양하는 것이 양질의 돼지체외수정란을 생산하는 하나의 방법으로 조사되었다.다.natural objects and was popular at the time of Yukjo Dynasty, and there are some documents of that period left both in Japan and Korea. "Hyojedo" in Korea is supposed to have been influenced by the letter design. Asite- is also considered to have been "Japanese Letter Jobcheso." Therefore, the purpose of this study is to look into the origin

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.24 no.1
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• pp.97-108
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• 2000

The objectives of this study were performed to increase the efficiency of the culture conditions of embryos produced in vitro, and to assess the developmental potential after transfer of those embryos into recipients. The mean number of folliclular oocytes recovered from an ovary was 10.7. The rates of maturation and fertilization in Grade I oocytes were significantly (P＜0.05) higher than Graden and III. Developmental rate into blastocyst in the culture group of TCM-199 with BOEC were significantly higher (P＜0.05) than the groups of TCM-199 and conditioned medium (24.7% vs. 12.4% and 18.2%). The survivability of post-thawed blastocysts equilibrated for 3 min in EFS solution was significantly (P＜0.05) lower than l0 for 1 and 2 min (32.1% vs. 82.9% and 73.3%). Significantly higher (P＜0.05) survival rate in blastocysts was seen after freezing than in morulae stage embryos. Out of all 105 recipients, 49 (46.7%) were confirmed in pregnant. On pregnancy of cattle, 48 calves were born from 40 recipients. The ratio of twin and single calves was 30.5% (32/40 and 7.6% (8/40), respectively. However, the others composed of abnormal, as judging as 6 (12.2%) for abortion and 3 (6.1%) for stillbirth during the pregnant period.

• Journal of Embryo Transfer
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• v.20 no.2
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• pp.147-156
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• 2005

본 연구는 NCSU-23과 PZM-3 배양액에 EGF, $\beta-ME$와 glucose의 첨가가 돼지 난자의 체외성숙에 미치는 영향과 배양조건을 다르게 하여 계대배양한 섬유아세포를 이용한 핵이식배를 다른 배양액과 산소조건에서 배양하였을 때 체외발생율에 미치는 영향을 조사하였다. 핵이식 배를 20ng/ml EGF를 첨가 또는 첨가하지 않은 NCSU-23 및 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $12.0\pm1.3\%,\;9.6\pm1.9\%,\;10.9\pm2.1\%,\;9.1\pm2.3\%$였다. 핵이식 배를 $25{\mu}M\;\beta-ME$를 첨가 또는 첨가하지 않은 NCSU-23 및 PZM-3 배양액에서 144시간 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $9.6\pm1.7\%,\;7.3\pm2.3\%,\;11.9\pm1.8\%$와 $7.4\pm2.1\%$였다. $\beta-ME$를 첨가한 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 $\beta-ME$를 첨가하지 않은 배양액에서 배양한 배보다 높은 체외발생율을 나타냈다. (p<0.05). 핵이식 배를 1.5mM glucose를 첨가 또는 첨가하지 않은 NCSU-23 및 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $9.4\pm2.2\%,\;6.8\pm2.7\%,\;10.9\pm2.4\%$와$8.9\pm2.6\%$였다. Glucose를 첨가한 NCSU-23과 PZM-3 배양액에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 glucose를 첨가하지 않은 배양액에서 배양한 배보다 높은 체외 발생율을 나타냈다. 핵이식 배를 NCSU-23 및 PZM-3 배양액과 $5\%$ 및 $20\%$ 산소 조건에서 배양하였을 때 배반포로의 체외 발생율은 각각 $11.1\pm1.8\%,\;9.8\pm1.4\%,\;12.5\pm1.6\%$와$10.9\pml.5\%$였다. NUSU-23과 PZM-3 배양액에서 $5\%$ 산소 조건에서 배양하였을 때 $20\%$산소 조건에서 배양한 난자보다 높은 체외 발생율을 나타났다. 섬유아세포를 NCSU-23 배양액에서 배양하여 공여자세포로 이용하여 10 및 $11\~15\;passage$ 이내로 계대배양하였을 때의 융합율은 $60.0\~73.3\%,\;52.5\%$였다. 섬유아세포를 PZM-3 배양액에서 배양하여 공여자세포로 이용하여 10 및 $11\~15passage$ 이내의 계대배양시의 융합율은 $60.4\~75.1\%$ 및 $58.7\%$였다.

• Reproductive and Developmental Biology
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• v.28 no.2
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• pp.119-126
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• 2004

The present study was carried out to examine the effect of four different media (NCSU (North Carolina State University)-23, PZM (Porcine Zygotes Medium)-3, PZM-4 and TCM (Tissue Culture Medium)-l99) and two oxygen concentrations (39 , 5% $O_2$, 5% $CO_2$ and 90% $N_2$, 5% $CO_2$ in air) on in vitro production of porcine IVM/IVF embryos. The results were summarized as follows: The rates of GVBD and nuclear maturations were not significantly different (p>0.05) for 44 hours of culture with four media in two oxygen concentrations. The rates of polyspermy, penetrated sperm(s) and male and female prouclei formation were not significantly different (p>0.05). among four media in two oxygen concentrations. The cleavage rates were not significantly different (p>0.05) among four media in two oxygen concentrations. At day 7 under gas atmosphere of 5% $O_2$, 5% $CO_2$ and 90% $N_2$, the blastocyst formation was significantly higher (p<0.05) in PZM-3 (19.9$\pm$2.4) than other media. Also, NCSU-23 medium gave high rate of blastocyst formation at day 7 under gas atmosphere of 5% $CO_2$ in air (p<0.05). Based on the result of differential staining of porcine blastocyst at dat 7, inner cell mass cell and total cell numbers were not significantly different (p>0.05) among four media in two oxygen concentrations. However, the observed total cell number was higher in PZM-3 medium (36.8$\pm$6.5) than other madia. In conclusion, these results suggested that in vitro production of porcine embryos in PZM-3 medium under a gas atmosphere of 5% $O_2$, 5% $CO_2$ and 90% $N_2$ was effective on the blastocyst formation rate and total blastocyst cell number.