For quarantine purpose, we developed the RT- and nested PCR module of Tomato black ring virus (TBRV), Arabis mosaic virus (ArMV), Cherry leafroll virus (CLRV) and Grapevine fanleaf virus (GFLV). The PCR modules, developed in this study make diagnosis more convenient and speedy because of same PCR condition. And also, the methods are more accurate because it can check whether the result is contamination or not using the mutation-positive control. We discard or return the 27 cases of Nepovirus infection seed by employing the module past 3 years. This study provides a rapid and useful method for detection of four quarantine plant viruses.
The insect vector (Laodelphax striatellus) of rice black-streaked dwarf virus prefered rice plant to maize in feeding both in the cage and in the field, whereas the percent of infectious plants was much higher in maize than rice plants. The causal virus reduced the adult longevity, total number of hatching nymphs and maturity rate from nymphs of the insect vector. The percent of dry weight over fresh weight in rice from early to late growth stages was lower in diseased plants than in healthy plants but it was reversed on maize plant in early growth stage. In agarose gel-diffusion and microprecipitin serological tests, the intensities of antigen with antisera were in orders the preparation partially purified from infected maize leaves> rice stems> rice leaves> maize stems. The pholem galls in diseased plants developed well in the low temperature.
Most strawberry viruses exist relatively low titers in tissues, and strawberry tissues include high levels of contamination by polysaccharides and phenolic compounds. These traits make the efficiency of strawberry diagnosis difficult. In this study, we tested different commercially available kits and reagents to secure optimal RNA extraction methods to determine virus detection from strawberry leaves. Total RNA was isolated from leaves of strawberry mottle virus (SMoV)-infected strawberry cultivar 'Mihong'. The efficiency of total RNA for virus diagnosis was confirmed through SMoV detection by one-step or two-step reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR). Among those, the RNeasy plant RNA kit was best to isolate RNA and the isolated RNA was good enough for further applications. To ensure a reliable detection for strawberry viruses, synthetic diagnosis clones for major seven strawberry viruses such as strawberry mild yellow edge virus, SMoV, strawberry latent ring spot virus, strawberry crinkle virus, strawberry pallidosis associated virus, strawberry vein banding virus and strawberry necrotic spot virus have been constructed. Based on the synthetic genes in each clone, primer sets for seven strawberry viruses were designed and tested an RT-PCR condition through a simultaneous application of the same annealing temperature that allowed to achieve an efficient and convenient diagnosis.
Samples showing yellow mosaic symptom of Lilium spp. with necrotic fleck, stunting, malformation, and colour breaking were collected from lily-growing areas in the southern part of Korea. Two viruses were distinguished under a electron microscope and their host range, serological reaction, stability in sap, type of aphid transmission, and relations with cells and tissues were examined. Broad bean wilt virus (BBWV) was transmitted by sap-inoculation to 23 plant species in 8 families and by the aphid, Myzus persicae. This virus was inactivated after 10 min at 70C, at dilution of $10^{-3}$, and after 6 days at about 20C. Electron microscopic examination of purified preparation showed that the virus is spherical particle of 28nm in diameter. The virus reacted positively with BBWV-antiserum in agar gel diffusion test. In ultrathin sections of BBWV infected tissues, large aggregates or crystalline array of virus particles and vesicular body were found in the cytoplasm, vacuole, and nucleus of mesophyll cells. Cucumber mosaic virus (CMV) was transmitted by sap-inoculation. Electron microscopic examination of its purified preparation showed spherical particles of 30nm in diameter. The virus reacted positively with CMV-Y strain-antiserum in agar gel diffusion test. In ultrathin sections of CMV infected tissues, crystalline array of virus particles were found in the vacuole and a large number 0f virus particles were found in the cytoplasm and the plasmodesmata of mesophyll cells. When each of these viruses was retransmitted to Lilium tigrinum. L. concolor, and L. auratum, BBWV induced slight symtoms and colour breaking, but CMV induced yellowing mosaic or necrotic fleck.
Chrysanthemum plants are one of the most economically important plants in South Korea. Both virus and viroid can cause diseases and economic damage to the plants. In this study, we investigated the detection of seven viruses and two viroids in 350 chrysanthemum plants cultivated in Yesan-gun, Chungcheongnam-do. Two viruses, chrysanthemum virus B (CVB) and tomato aspermy virus (TAV), and two viroids, chrysanthemum chlorotic mottle viroid (CChMVd) and chrysanthemum stunt viroid (CSVd), were detected in this study. The two viruses were detected in six samples and one sample, respectively. The two viroids were detected in 97 samples and 21 samples, respectively. The nucleotide sequences of the CVB-CN-Y, TAV-CN-Y, CChMVd-CN-Y, and CSVd-CN-Y obtained in this study showed 83.7-86.9%, 99.2-100.0%, 94.4-99.5%, and 95.7-99.7% identity, respectively, compared to their other strains/isolates. The CVB-CN-Y and TAV-CN-Y showed the greatest nucleotide sequence homology to CVB-GS1 and three TAV isolates (TAV-V, TAV-P, and TAV-ChJ), respectively. The CChMVd-CN-Y and CSVd-CN-Y showed the greatest nucleotide sequence homology to CChMVd-Horst and four CSVd isolates (Au1.1, K4pop, Sagae, and Tochigi), respectively. This study is the report on the infection rate of viruses and viroids in chrysanthemum plants cultivated in Yesan-gun in 2021.
Proceedings of the Korean Society of Tobacco Science Conference
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1997.10a
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pp.134-152
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1997
Plant viruses of tobacco including tobacco mosaic virus (TMV) and potato virus Y (PVY) cause severe economic losses in leaf-tobacco production. Cultural practices do not provide sufficient control against the viruses. Use of valuable resistant cultivars is most recommendable for the control of the viruses. However, conventional breeding programs are not always proper for the development of virus-resistant plants mostly owing to the frequent lack of genetic sources and introduction of their unwanted properties. Therefore, we tried to develop virus-resistant tobacco plants by transforming commercial tobacco cultivars, NC 82 and Burley 21, with coat protein (CP) or replicase (Nlb) genes of TMV and PVY necrosis strain (PVY-VN) with or without untranslated region (UTR) and with or without mutation. Each cDNA was cloned and inserted in plant expression vectors with 1 or 2 CaMV 35S promotors, and introduced into tobacco leaf tissues by Agrobacterium tumefaciens LBA 4404. Plants were regenerated in kanamycin-containing MS media. Regenerated plants were tested for resistance to TMV and PVY In these studies, we could obtain a TMV-resistant transgenic line transformed with TMV CP and 6 genetic lines with PVY-VN cDNAs out of 8 CP and replicase genes. In this presentation, resistance rates, verification of gene introduction in resistant plants, stability of resistance through generations, characteristics of viral multiplication and translocation in resistant plants, and resistance responses relative to inoculum potential and to various PVY strains will be shown. Yield and quality of leaf tobacco of a promising resistant tobacco line will be presented.
One hundred and eighty-six leaves of soybean cv. Seokryangputkong that showed mild mosaic symptoms were collected randomly and ELISA tests were conducted with those leaf samples to screen the presence of Cowpea mosaic virus (CPMV). Ninety-three out of 186 samples reacted positively to CPMV, but those samples did negatively to Soybean mosaic virus (SMV). At least, 55 leaf samples revealed higher values than that of positive control. The results strongly confirmed that CPMV occurred severely in soybean cv. Seokryangputkong. However, a question is raised on the primary reservoir and vector for transmission of this virus. Since the farmer changes seeds every year, seed transmission is excluded. The virus was also purified, the analysis of coat protein conformed the virus of cowpea mosaic virus and UV absorption pattern confirmed that the causal virus of mosaic disease in soybean putkong was cowpea mosaic virus.
In vitro-tested ribozyme against synthesized cucumber mosaic virus (CMV) RNA (Agric. Chem. & Biotech. 37:56-63(1994)) was expressed in tobacco plant to develop virus resistant plants. The ribozyme sequence was linked to cauliflower mosaic virus 35S promoter and nopaline synthase(nos) terminator and this chimeric 35S-ribozyme-nos gene was sequenced. The sequenced chimeric gene was transferred to Agrobacterium tumefaciens LBA4404 using tri-parental mating system. The E. coli HB101 containing chimeric gene was incubated with E. coli HB101(pRK2073) as a helper and Agrobacterium tumefaciens LBA4404. Then Agrobacterium cells containing the ribozyme construct was cocultivated with tobacco leaf pieces. Ten different plants were regenerated from kanamycin containing MS medium. The presence of the ribozyme construct in the transgenic tobacco plants was confirmed by polymerase chain reaction (PCR). Seven different transgenic plants in ten different kanamycin resistant plants showed the expected size (570 base pairs) of 35S-ribozyme-nos gene fragment. Total RNAs were isolated from four different transgenic plants and separated on a 1% agarose gel containing formamide. Northern hybridization with 35S-ribozyme-nos gene fragment as a probe indicated that ribozyme transcripts may be degraded tv nuclease. Therefore, nuclease-resistant ribozymes are needed for the development of virus-resistant transgenic plants using ribozymes.
Field surveys to investigate the incidence and occurrence pattern of viruses in red pepper were conducted during 2015-2016 in Korea. A total of 424 samples in 2015 and 368 samples in 2016 were collected based on selection of plants showing symptoms from farmer's field from every June to September. Reverse transcription-Polymerase chain reaction was used to test all samples for the presence of one or more of following viruses: Cucumber mosaic virus (CMV), Broad bean wilt virus 2 (BBWV2), Tomato spotted wilt virus (TSWV), Beet western yellows virus (BWYV), Pepper mottle virus (PepMoV), Potato virus Y (PVY) and Pepper mild mottle virus (PMMoV). The average disease incidence was 91.7% in 2015 and 98% in 2016 and the all seven viruses were found although there were different kinds of regions. The percent virus incidence in collected samples during 2015 was as follows: CMV, 73.8%; BBWV2, 68.3%; BWYV, 46.9%; PMMoV, 14.6%; TSWV, 12.7%; PepMoV, 6.6% and PVY, 3.3%. For 2016, incidence was as follows: CMV, 73.3%; BBWV2, 71.4%; BWYV, 34.7%; TSWV, 27.9%, PMMoV, 19.2%; PepMoV, 13.5% and PVY, 3.5%. Mixed infections were prevalent over single infections and infection rate was 83% and 86.7% in 2015 and 2016, respectively.
This research was conducted to investigate the incidence of viral infection in Samcheok-shi and Jeongseon-gun, main garlic growing areas of Gangwon province in Korea. Four primers sets (GLV, LYSV, GCLV, OYDV) were used for RT-PCR to test of 100 samples collected from each location. Infection rates of GLV, LYSV, GCLV and OYDV of garlic samples from Samcheok-shi and Jeongseon-gun were 95, 95, 92 and 33%, respectively. All garlic samples tested in this research were infected at least one virus. Coinfection of 3 kinds of virus (GLV, LYSV and GCLV) and 4 kinds of virus (GLV, LYSV, GCLV and OYDV) were 60 and 25%, respectively. While infections of GLV, LYSV and GCLV were evenly found in both two regions, OYDV infection of garlic samples collected from Jeongseon-gun was higher than Samcheok-shi. Viral infections at garlic fields of whole country and Gangwon province are very serious now. Therefore, it is very necessary to develop technic for virus-free bulb and renew seed bulb of garlic.
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