Plant regeneration system via somatic embryogenesis in leaf explant cultures of Gentiana scabra var. buergeri has been established. Leaf segments formed calli when cultured on MS medium supplemented with 0.5 mg/L 2,4-D and 2 mg/L BAP After transferred to SH medium supplemented with 0.5 mg/L 2,4-D, 2 mg/L CPA and 0.5 mg/L kinetin, the callus became embryogenic. The embryogenic callus was subcultured every 3 to 4 weeks. Upon transfer onto SH basal medium the embryogenic callus gave rise to numerous somatic embryos, which subsequently developed into plantlets. The regenerated plants were potted in an artificial soil with mixture (peatmoss : pearlite : vermiculite : 2 : 1 : 1) and transplanted to the soil after kept under a high humidity for two weeks. A total of 78 plants out of 105 regenerated plants survived in the soil. Phenotypic variations in height, number of stems and the flowering time were observed in tile regenerated plants. Cytogenetical analyses showed no chromosomal variation.
Hypocotyl explants from 7 days old seedlings of one $F_1$ hybrid cultivar and two pure lines of cucumber formed embryogenic calli at frequencies of up to 8% when cultured on Murashige and Skoog medium (MS) supplemented with 1 mg/L 2,4-D for 3 weeks. Embryogenic calli gave rise to somatic embryos. When slices of somatic embryos were cultured on the same medium for 4 weeks, they formed embryogenic calli. Embryogenic cell suspension cultures were established with embryogenic calli in MS liquid medium with 1 mg/L 2,4-D. Embryogenic potential of cell suspension cultures was maintained by subculturing every seven days. When the level of 2,4-D in the medium was lowered to 0.2 mg/L by diluting with liquid MS basal medium, embryogenic cell suspension cultures underwent development into numerous somatic embryos. When plated onto MS basal medium, over 95% of somatic embryos developed into plantlets. Plantlets were transplanted to potting soil and grown to maturity.
This study was conducted to examine suspended embryogenic cells growth with days of culture, effects of various kinds/concentrations of osmoticum for induction of somatic embryos (SEs), following somatic embryos germination or plantlet regeneration. The proliferation pattern of embryogenic cells in suspension culture is characterized by settled cells volume (SCV) increased with the duration of culture with marked the maxium of SCV (10.1 ml) in 18 days of culture, however the SCV of cells gradually decreased after that. In comparison of kinds/concentrations of osmoticum on somatic embryo induction, the highest induction number (352.3/g FW) of the SE was showed in 0.2 M sucrose, in addition, we also observed some effects with treatments of 0.2 M maltose (203.7) and 0.3 M maltose (193.7), respectively. However, no somatic embryos produced in treatments of 7.5% PEG plus 0.15 M sucrose or maltose. In comparison of germination efficiency of SEs which occurred from the treatments of various kinds/ concentrations of osmoticum, the highest induction frequency of cotyledon (25.2%) was obtained from SEs that produced 0.3 M maltose, however, the best occurrence rates of hypocotyl (39%), radicle (30.3%) and plantlet regeneration (3.5%) were observed from the 0.2 M sucrose treatment, respectively.
The effects of sizes and densities of cells cultured, conditioned medium, and media pH on the somatic embryogenesis of carrot (Daucus carota L.) were examined. A large number of globular embryoids was formed after 4 days in cell culture, and later globular embryoids developed into heart and torpedo shape. High cell density resulted in higher number and better growth of embryos, especially on conditioned medium than Murashige-Skoog medium. The fresh weight and number of embryoids formed increased with the decrease in cell size. The significant reduction in fresh weight and number of embryoids was obtained when culturing cells with diameter of over 90 ${\mu}{\textrm}{m}$. Dry weight and number of embryoids were markedly reduced with medium pH of 4 or 7, but promoted with pH 6.0.
Kim, Seok-Won;In, Dong-Soo;Jung, Won-Joong;Woo, Je-Wook;Jung, Min;Yoo, Jang-Ryul
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.25
no.6
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pp.501-505
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1998
Conditions for high frequency plant regeneration from cryopreserved embryogenic cell suspension cultures derived from hypocotyl explants of cucumber (Cucumis sativus L.) are described. Cells cryoprotected with a mixture of 2 M DMSO and 0.4 M sucrose exhibited a regeneration frequency of 85%. However, cells cryoprotected with different concentrations of glycerol showed no regeneration after cryopreservation. Pretreatment of cells in a high osmotic medium was not necessary to the process. Upon transfer to MS medium supplemented with 1 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid, regenerated calli gave rise to numerous somatic embryos, then underwent development into plantlets.
$\beta$-Glucuronidase (GUS) gene of Escherichia coli was introduced into sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) cells by particle bombardment and expressed in the regenerated plants. Microprojectiles coated with DNA of a binary vector pBI121 carrying CaMV35S promoter-GUS gene fusion and a neomycin phosphotransferase gene as selection marker were bombarded on embryogenic calli which originated from shoot apical meristem-derived callus and transferred to Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 100 mg/L kanamycin. Bombarded calli were subcultured at 4 week intervals for six months. Kanamycin-resistant calli transferred to MS medium supplemented with 0.03 mg/L 2iP, 0.03 mg/L ABA, and 50 mg/L kanamycin gave rise to somatic embryos. Upon transfer to MS basal medium without kanamycin, they developed into plantlets. PCR and northern analyses of six regenerants transplanted to potting soil confirmed that the GUS gene was inserted into the genome of the six regenerated plants. A histochemical assay revealed that the GUS gene was preferentially expressed in the vascular bundle and the epidermal layer of leaf, petiole, and tuberous root.
In this study, the induction regeneration of callus from immature embryo in trifoliata orange (Poncirus trifoliata RAFIN.) were accomplished. The embryogenic calli were induced from the immature embryo derived from seed when the calli were irradiated for 16hr at about 2,000 Lux in $\frac{1}{2}$ MS medium supplemented with 3% sucrose, and 44.4$\mu$M BA. Regeneration to whole plants was the most successful in MS medium containing 5.0$\mu$M BA. The yellowish callus was developed at 2 to 3 weeks of culture and the callus was changed from yellow to green at 5 to 6 weeks culture. In vitro regeneration was directly induced from embryogenic callus in MS medium containing 3% sucrose and 5.0$\mu$M BA. Multishoot was formed at 16 weeks culture. Moreover, when the root-formed plantlet was transplanted to soil, they grew to a whole plant. The compact cultured-cells were observed by light microscope after 4 weeks of cultivation and the embryogenic clumps were formed about the 5 weeks. At the same time, the neighboring cells were liquefied. In addition, differentiation of leaf and stem from the callus was observed after 12 weeks. The developed oil sacs and the profacicular cambium of the immature leaf were observed after 18 weeks. Therefore, we can see the considerable changes of cell arrangements according to the developmental stages of calli from trifoliata orange.
체외성숙과 수정된 돼지 난자의 체외발달능이 체외배발생 배양액인 NCSU 배양액에 0.4% BSA, 10% 혈청 혹은 아미노산(2% BME 아미노산 용액과 1% MEM 아미노산 용액)을 첨가함으로써 조사되었다. 본 실험에 공시된 난자는 체외수정 후 30시간 (2-세포기) 혹은 48시간 (2~4-세포기)에 회수하였다. 실험 I에서 0.4% BSA가 첨가된 NCSU 배양액에서 2-세포기 난자들의 배양경과시간에 따른 발달능을 조사한 결과, 배양 후 72시간 (체외수정 후 102 시간)에 상실배와 배반포기가 나타났으며, 배양 후 120시간째(체외수정 후 150시간)에도 팽창된 배반포까지만 발달하였다. 실험 II는 체외수정 후 48시간의 분할된(2~8-세포기) 난자들의 핵과 외관적 분할구와의 수적 차이를 조사한 결과, 2~4-세포기보다는 5-세포기 이상에서 핵과 분할구의 조화에 차이가 많았다. 실험III에서는 BSA, 혈청 혹은 아미노산이 첨가 혹은 무첨가된 배양액내에서 2~4-세포기 난자들의 배반포 후 부화능력을 조사한 결과, 모든 군에 있는 난자들은 팽창된 배반포까지 발달할 수 있었던 반면, 난자의 부화는 아미노산 혹은 혈청이 포함된 배양액에서만 일어났다. 더욱이 상실배와 배반포시기에 혈청의 첨가는 부화 배반포기 배의 발달을 현저히 증가시켰다. 이상의 결과로 미루어 볼 때, 배양액내에 대한 아미노산과 혈청의 첨가는 돼지 배반포의 부화를 유도할 수 있다고 본다.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2001.08a
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pp.45-47
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2001
생쥐 착상전 초기배아에서 insulin과 tumor necrosis factor $\alpha$ (TNF$\alpha$)에 의한 배아의 형태 발생, 세포증식, apoptosis 및 MAPK활성의 변화를 조사하였다. Insulin에 의해 형태발생 및 포배당 세포수가 증가되었으며 TNF $\alpha$ 처리시 유의하게 감소하였다. TNT$\alpha$ 전처리시 insulin에 의한 발생 및 세포수 증가 촉진효과가 상쇄되었으며 TNF$\alpha$는 배아내 caspase-3의 활성을 증가시켰다. Insulin은 단시간내에 포배에서 mitogen activated protein kinase (MAPK or Erk1/2)의 활성을 증가시켰다. TNF$\alpha$는 포배내 MAPK의 활성을 감소시켰다. Insulin 처리 전 TNF $\alpha$를 전처리한 경우 insulin에 의한 MAPK 활성의 증가가 상쇄되었다. 배발생을 촉진하는 인슐린 신호전달 과정은 MAPK cascade를 경유하며 TNF $\alpha$를 경유한 신호전달과 Crosstalk이 존재하는 것으로 사료된다.
To develop herbicide-resistant cucumber plants (Cucumis sativus L. cv Green Angle) embryogenic suspension cultures were co-cultured with Agrobacterium tumefaciens strain LBA4404 carrying a disarmed binary vector pGA-bar. The T-DNA region of this binary vector contains the nopalin synthase/neomycin phosphotransferase Ⅱ (npt Ⅱ) chimeric gene for kanamycin resistance and the cauliflower 35S/phosphinothricin acetyltransferase (bar) chimeric gene for phosphinothricin (PPT) resistance, After co-cultivation for 48 h, embryogenic calli were placed on maturation media containing 20 mg/L PPT. Approximately 200 putatively transgenic plantlets were obtained in hormone free media containing 40 mg/L PPT. Northern blot hybridization analysis confirmed the expression of the bar gene that was integrated into the genome of five transgenic plants. Transgenic cucumber plants were grown to maturity. Mature plants in soil showed tolerance to the commercial herbicide (Basta) of PPT at the manufacturer's suggested level (3 mL/L).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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