The objective of this study was to evaluate effects of a combined use of extracts of medicinal herbs Taraxaumi mongolicum, Viola yedoensis Makino, Rhizoma coptidis, and Radix isatidis (MYCI) on porcine epidemic diarrhea (PED). Twenty-two 3-day-old piglets received an oral challenge with $3{\times}10^{3.5}$$TCID_{50}$ of the virulent PED virus (PEDV) in PBS or PBS only and daily oral administration of 60 mg of the MYCI mixture suspended in milk replacer or the vehicle for 7 days in a $2{\times}2$ factorial arrangement of treatments. Average daily gain (ADG) increased (p < 0.05) in response to the MYCI treatment in the PEDV-challenged piglets (-18 vs. 7 g for the vehicle- vs. MYCI-administered group), but not in unchallenged animals (27 vs. 28 g). Diarrhea score and fecal PEDV shedding, however, were not influenced by the MYCI treatment. The PEDV challenge caused severe intestinal villus atrophy and crypt hyperplasia, both of which were alleviated by administration of the MYCI mixture as indicated by an increase in the villus height and a decrease in the crypt depth due to the treatment. Overall, medicinal herb extracts used in this study ameliorated impaired growth performance and intestinal lesion of newborn piglets challenged with the virulent PEDV. Therefore, our results suggest that the MYCI mixture could be used as a prophylactic or therapeutic agent against PED.
An encephalomyocarditis virus (EMCV-CBNU) was isolated from an aborted swine fetus in October 2005. To investigate the genetic origin and virulence of the EMCV-CBNU strain, we determined the complete sequence of the virus and tested its virulence in mice. Genetic characterization revealed that the RNA genome was composed of 7,713 nucleotides with a single open reading frame (2,292 amino acids), coding 12 proteins. The EMCV-CBNU had the shortest poly(C) tract, consisting of 10 C's ($C_{10}$), compared with all the other EMCV strains reported in GenBank. Amino acid and phylogenetic analyses showed that EMCV-CBNU had the highest genetic identity with strain 2887A (99.7%), which was originally isolated from a fetus in a pig breeding farm that had a history of reproductive failure. Because rodents are the natural host of EMCV, we investigated the virulence of EMCV-CBNU in mice. Surprisingly, all mice inoculated with more than $1{\times}10^2\;TCID_{50}/0.1ml$ of EMCV-CBNU showed symptoms of hind limb paralysis and eventually died during 3 and 8 days postinoculation (DPI). Furthermore, when we inoculated the virus into pregnant mice, all dams and their fetuses died in 6 DPI. This is the first report on a full genomic analysis of swine EMCV in Korea, which exhibits high virulence in mice.
This study was conducted to elucidate the distribution of Aujeszky's disease viral nucleic acids and antigens in the central nervous system (CNS) of piglets. The first Korean isolate of Aujeszky's disease virus(ADV) that isolated from naturally infected piglets in Yang San, was inoculated into 32 day old piglets with $10^{5.9}TCID_{50}/ml$ through intranasal or intramuscular route. These piglets were sacrificed at every 24hrs for 8 days. The immunohistochemistry (IHC) was conducted to detect the viral antigens in paraffin-embedded tissue sections using avidin-biotin-peroxidase complex (ABC) method. The viral nucleic acids were detected by in situ hybridization (ISH) using ADV specific DNA probe labeled with digoxigenin. The ADV antigens were detected in reticuloendothelial cells of spleen, lymph nodes and tonsil, alveolar walls, leptomeningeal vascular walls, inflammatory foci of each organ, and nerve cells. The viral nucleic acids were detected in the spinal trigeminal nucleus and its tracts of the pons and medulla oblongata by the ISH technique. The pathways of AD viruses in CNS were determined by IHC and ISH. In the intranasally inoculated group, the viruses in nasal mucosa moved to medulla oblongata and pons through the trigeminal nerve. In case of intramuscullarly inoculated group, viruses moved to brain via lymphoid organs or spinal nerves from sciatic nerves.
1998년 12월에서 1999년 3월에 걸쳐 바이러스의 감염에 의한 넙치 치어의 대량 폐사가 일어났다. 감염어 샘플을 CHSE-214에 접종한 3일 후부터 세포의 구형화, 용해를 특징으로 하는 CPE가 나타났으며, 전자현미경 관찰에서는 크기가 52-56 nm의 구형의 바이러스입자가 세포질 내에서 관찰되었다. RT-PCR에 의한 버나바이러스 특이적 검출의 결과 양성이었다. 어류주화세포를 이용한 바이러스 배양 특성을 확인한 결과 분리바이러스는 MBV와 유사한 세포선택성을 나타내었으나 IPNV와는 세포내 배양특성이 다르게 나타났다. 바이러스 중화 시험에서 항MBV Y-6혈청과 완전히 중화되었으나, IPNV Ab, Sp, VR-299치 항혈청과는 중화 항체가가 낮게 나타나났다. 본 바이러스는 한국의 넙치에서 분리된 IPNV와 다른 새로운 버나바이러스로서 marine birnavirus(MBV)에 속한다.
Background: Fluorescent antibody virus neutralization (FAVN) test is a standard assay for quantifying rabies virus-neutralizing antibody (VNA) in serum. However, a safer rabies virus (RABV) should be used in the FAVN assay. There is a need for a new method that is economical and time-saving by eliminating the immunostaining step. Objectives: We aimed to improve the traditional FAVN method by rescuing and characterizing a new recombinant RABV expressing green fluorescent protein (GFP). Methods: A new recombinant RABV expressing GFP designated as ERAGS-GFP was rescued using a reverse genetic system. Immuno-fluorescence assay, peroxidase-linked assay, electron microscopy and reverse transcription polymerase chain reaction were performed to confirm the recombinant ERAGS-GFP virus as a RABV expressing the GFP gene. The safety of ERAGS-GFP was evaluated in 4-week-old mice. The rabies VNA titers were measured and compared with conventional FAVN and FAVN-GFP tests using VERO cells. Results: The virus propagated in VERO cells was confirmed as RABV expressing GFP. The ERAGS-GFP showed the highest titer (108.0 TCID50/mL) in VERO cells at 5 days post-inoculation, and GFP expression persisted until passage 30. The body weight of 4-week-old mice inoculated intracranially with ERAGS-GFP continued to increase and the survival rate was 100%. In 62 dog sera, the FAVN-GFP result was significantly correlated with that of conventional FAVN (r = 0.95). Conclusions: We constructed ERAGS-GFP, which could replace the challenge virus standard-11 strain used in FAVN test.
Yang, Myeon-Sik;Zhou, Zixiong;Khatun, Amina;Nazki, Salik;Jeong, Chang Gi;Kim, Won Il;Lee, Sang Myeong;Kang, Seog-Jin;Lim, Chae Woong;Kim, Bumseok
한국동물위생학회지
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제41권4호
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pp.263-269
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2018
Developing drugs targeting respiratory pathogen is essential to control respiratory diseases. Many experiments have been performed under in vivo situation. However, in vivo experiments have economical and ethical issues. The objective of this study was to determine the possibility of developing an ex vivo lung culture system with possible application for respiratory infection studies. After isolating lungs from naïve pigs, agarose-inflated lung tissues were prepared and sliced manually. These sliced lung tissues were then subsequently placed on 24-well plates. Eight different combinations of media were used to determine the optimum ex vivo lung culture condition. In addition, lung tissues were infected with porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus at a titer of $1{\times}10^4\;TCID_{50}/mL$. Virus growth was confirmed by titration in MARC-145 cells at 2, 4, 6 days post infection (dpi). We found that ex vivo lung culture in physiological environment was not media specific based on histopathology and cytotoxicity. However, under virus-infected condition, thickened alveolar walls in the lung tissues and stable virus titers at 2, 4, 6 dpi were shown in F12K medium suggesting that it was useful for tissue maintenance and virus infection using PRRS virus infected lung tissues. The present study shows the possibility of using porcine ex vivo lung model for respiratory infection studies.
Feline panleukopenia virus (FPV) causes fatal leukopenia and severe hemorrhagic diarrhea in cats. Although FPV isolates have been reported worldwide from several animals, the biological and genetic features of South Korean FPVs remain unclear. We characterized molecularly South Korean FPV isolates. Crandell-Rees feline kidney (CRFK) cells were used to isolate FPV from 60 organ homogenates. The isolates were confirmed to be FPVs via analyses of cytopathic effects, immunofluorescence studies, electron microscopy, and polymerase chain reaction. Viral genetic analyses used the full VP2 sequences. Eight isolates propagated in CRFK cells were confirmed to be FPVs. All isolates yielded viral titers ranging from 104.5 to 106.0 TCID50/mL 5 days after inoculation into CRFK cells and exhibited hemagglutination titers ranging from 27 to 212 (using pig erythrocytes). The Korean FPV isolates grew well in cat cells such as CRFK and Fcwf-4 cells. The FPV isolates were most similar to the KS42 strain isolated from a Korean cat in 2008. The FPV isolates will serve as useful antigens in future sero-epidemiological studies and will aid in the development of diagnostic tools.
Background: Feline calicivirus (FCV) is a major and highly infectious pathogen in cats worldwide. However, there have been limited studies about the status of FCV infections in Korea. Objectives: To investigate the current status of FCV infections in stray cats in Korea. Methods: A novel reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) assay was developed based on the conserved nucleotide sequences of reported FCV strains. Field swab samples were collected from 122 cats (2 hospital admitted cats and 120 stray cats) in 2016 and 2017. All the samples were tested by virus isolation and 2 different RT-PCRs, including the novel RT-PCR, for the detection of FCV. Results: The novel RT-PCR assay showed no cross-reactivity to the nucleic acids of the other feline pathogens tested, and the limit of detection was calculated as 100 TCID50/mL based on an in vitro assessment. The novel RT-PCR assay detected 5 positive samples from the 122 field samples, which showed perfect agreement with the results of the virus isolation method. In contrast, another RT-PCR assay used in a previous study in Korea detected no positive samples. The prevalence of FCV infection in stray cats was 2.5% (3/120) based on the results of virus isolation and the novel RT-PCR assays. Conclusions: The current study is the first report of the detection and prevalence of FCV in stray cats in Korea. The novel RT-PCR assay developed in this study showed high sensitivity and specificity, which indicates a useful diagnostic assay to identify FCV infection in cats.
혈장분획제제 중 혈액응공인자제제와 일부 면역글로불린제제는 혈장에 존재하는 다양한 단백질로부터 유효한 단백성분만을 선택적으로 분리 정제하기 위해 크로마토그래피 방법을 사용하여 생산된다. 효율적인 세척(cleaning) 공정이 이루어지지 않는다면 크로마토그래피는 다양한 종류의 불순물뿐만 아니라 혈액 중 내재 또는 오염 가능성이 있는 위해인자가 오염될 가능성이 있다. 본 연구에서는 혈장분획제제 제조공정에 사용되는 크로마토그래피의 세척 공정에서 혈장유래 바이러스의 제거 및 불활화 공정의 검토 강화로 혈장분획제제의 안전성을 확보하기 위해 크로마토그래피 세척 검증 시스템을 구축하고자 하였다. 크로마토그래피 세척 공정 중 바이러스 제거 검증을 위해 혈장유래 바이러스 중 물리${\cdot}$화학적 처리에 가장 큰 저항성을 갖는 human parvovirus B19의 모델 바이러스의 porcine parvovirus(PPV)를 대상으로 real-time PCR 정량법을 확립하였다. PPV에 특이적인 primer를 선별하였으며 형광염료 SYBR Green I을 사용하여 PPV DNA를 정량하였다. 세포배양법에 의한 감염 역가와 비교한 결과 PCR 민감도는 1.5 $TCID_{50}/ml$이었다. 확립된 검증법의 신뢰성(reliability)을 보증하기 위해 실험법의 특이성(specificity), 재현성(reproducibility) 등을 검증하였다. 구축된 검증시스템을 thrombin 분리${\cdot}$정제를 위한 SP-Sepharose 양이온 크로마토그래피 공정과 factor VIII 분리${\cdot}$정제를 위한 Q-Sepharose 음이온 크로마토그래피 공정에 적용하여 크로마토그래피 세척 검증을 실시하고, 세척 검증 시스템의 적합성을 확인하였다.
세포배양 유래 생물의 약품 생산 공정에서 다양한 바이러스가 오염된 사례가 있기 때문에 바이러스 안전성 검증이 필수적이다. Reovirus type 3 (Reo-3)는 동물 세포주와 동물 세포 배양 공정에 오염되는 대표적인 바이러스이다. 세포배양 유래 생물의약품의 Reo-3 안전성을 확보하기 위해, 세포주, 원료물질, 제조공정, 완제품에서 Reo-3를 정략적으로 검출하고, 제조공정에서 Reo-3 제거 검증을 위한 시험법으로 활용이 가능한 real-time RT-PCR 시험법을 확립하였다. Reo-3에 특이적인 primer를 선별하였으며, 형광염료 SYBR Green I을 사용하여 Reo-3 RNA 정략 검출 시험법을 최적화하였다. 세포배양법에 의한 감염역가와 비교한 결과 real-time RT-PCR 민감도는 $3.2{\times}10^0\;TCID_{50}/ml$이었다. 확립된 시험법의 신뢰성(reliability)을 보증하기 위해 시험법 검증을 실시한 결과 특이성(specificity)과 재현성(reproducibility)이 우수함을 확인하였다. 확립된 real-time RT-PCR을 생물의약품 제조공정 검증에 적용할 수 있는지 확인하기 위하여 인위적으로 Reo-3를 오염시킨 CHO 세포에서 Reo-3 검출 시험을 실시한 결과 Reo-3를 감염시킨 CHO 세포와 세포배양 상청액에서 Reo-3를 정략적으로 검출할 수 있었다. 또한 바이러스필터 공정에서 Reo-3제거 효과를 감염역가 시험법과 비교 검증한 결과 더 빠른 시간에 동일한 결과를 얻을 수 있었다. 위와 같은 결과에서 확립된 Reo-3 real-time RT-PCR 시험법은 생물의약품 안전성 보증을 위한 세포주 검증, 생물의 약품 생산 공정 검증, 바이러스 제거 공정 검증 등에서 감염 역가 시험법을 대신할 수 있는 신속하고, 특이성과 민감성이 우수한 시험법임을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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