Kim, Joon-Chul;Li, Yuhua;Lee, Sunwoo;Yi, Young-Joo;Park, Chang-Sik;Woo, Sun-Hee
Molecules and Cells
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제26권6호
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pp.558-565
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2008
Although the fertilizing ability of spermatozoa is greatly reduced after freezing, complete understanding of alterations induced by cryopreservation has not been elucidated. The present study evaluates the effects of cryopreservation on the $Ca^{2+}$ handling of boar spermatozoa using several sperm activators. Intracellular $Ca^{2+}$ signals from single spermatozoa were measured using confocal $Ca^{2+}$ imaging of unfrozen samples and of other spermatozoa after having been frozen. Elevation of the external $K^{2+}$ concentration elicited a three times larger $Ca^{2+}$ increase in fresh spermatozoa than in cryopreserved spermatozoa. Caffeine elicited $Ca^{2+}$ transients with some oscillations in the fresh spermatozoa, but not in the thawed spermatozoa. Depletion of the $Ca^{2+}$ store with thapsigargin induced a rapid rise in $Ca^{2+}$ in the control but generated a smaller increase of $Ca^{2+}$ after thawing. Exposure to progesterone induced a biphasic rise of the $Ca^{2+}$ level in the fresh spermatozoa only. Sperm viability was reduced by cryopreservation. Resting $Ca^{2+}$ levels in fresh and cryopreserved spermatozoa were similar. Longer incubation (2.5 h) of thawed spermatozoa partly recovered the $Ca^{2+}$ response to the interventions. These results suggest that cryopreservation reduces the responsiveness of spermatozoa to depolarization, modulators of the internal $Ca^{2+}$ store and progesterone in terms of the $Ca^{2+}$ signal, thus providing a possible mechanism for reduced fertility observed in cryopreserved boar spermatozoa.
The present study was performed to elucidate the effects of extracellular $Ca^{2+}$ on contractile responses in isolated porcine coronary artery ring using by perivascular nerve stimulation (PNS). Especially, the study was focused on the source of $Ca^{2+}$ on $P_{2X}$-purinoceptor mediated muscle contraction which one of $P_2$-purinoceptor subtypes. The following results can be drawn from these studies : 1. The phasic contractions induced by PNS were inhibited with muscarinic receptor antagonist, atropine ($10^{-6}M$). 2. The phasic contractions induced by PNS were significantly inhibited by sequential treatment with atropine and adrenergic neural blocker, guanethidine ($10^{-6}M$). 3. The phasic contractions induced by PNS were inhibited with $P_{2X}$-purinoceptor desensitization by repetitive application of $\alpha$,$\beta$-Me ATP ($10^{-4}M$). 4. The phasic contractions induced by PNS were so weakened in calcium-free medium. 5. The phasic contractions induced by PNS were inhibited with calcium channel blocker, verapamil ($10^{-6}{\sim}5{\times}10^{-6}M$). 6. The phasic contractions induced by PNS on pretreated with verapamil ($10^{-6}{\sim}5{\times}10^{-6}M$) were not changed by $\alpha$,$\beta$-Me ATP ($10^{-4}M$). These results demonstrate that the neurogenic phasic contractions induced by PNS are due to adrenergic-, cholinergic- and $P_{2X}$-purinergic receptors and the origin of $Ca^{2+}$ on $P_{2X}$-purinoceptor mediated muscle contraction is extracellular $Ca^{2+}$ through plasmalemmal $Ca^{2+}$ channels.
Fluoride (F-), a known stimulator of G-protein, induced strong contraction in rabbit trachealis muscle. $AlCl_3\;(5{\sim}20\;{\mu}M)$, which is required for G-protein stimulation by $F^-$, potentiated the contractile response to $F^-$. $Ca^{2+}-removal$ and verapamil, a calcium channel blocker, inhibited the fluoroaluminate-induced contraction. Fluoroaluminate increased $^{45}Ca$ influx in the absence and presence of verapamil. In heparin-loaded muscle high $K^+-induced$ contraction was not affected, but acetylcholine and fluoroaluminate-induced contractions were inhibited. The fluoroaluminate-induced contraction was partially relaxed by isoproterenol, a stimulator of adenylate cyclase. Pertussis toxin partially inhibited fluoroaluminate-induced contraction and potentiated isoproterenol-induced relaxation in the presence of fluoroaluminate, but had no effect on acetylcholine-induced contraction and the isoproterenol-induced relaxation in the presence of acetylcholine. These results suggest that fluoroaluminate has the ability to stimulate at least two putative G-proteins in rabbit trachealis muscle; One causes $Ca^{2+}$ influx through the potential-operated $Ca^{2+}$ channel and the other induces intracellular $Ca^{2+}$ release by the increase of inositol-1, 4, 5-triphosphate.
The activation mechanism of the sustained contractions induced by norepinephrine and K-depolarization was studied in renal vascular muscle. Helical strips of arterial muscle were prepared from rabbit renal arteries. All experiments were performed in Tris-buffered Tyrode solution which was aerated with 100% $O_2$ and kept at $35^{\circ}C$. Renal arterial muscles developed a contracture rapidly when exposed to a 40 mM K-Tyrode solution. In the absence of external $Ca^{2+}$, however, no K-contracture appeared. The contracture induced by K-depolarization was abolished by the treatment with $Ca^{2+}-antagonist\;(verapamil)$ or lanthanum $(La^{3+})$. From these results, it is obvious that K-contracture of renal arterial strip required $Ca^{2+}$ in the medium and this contracture was developed by the increased $Ca^{2+}-influx$ due to K-depolarization. Noradrenaline (5 mg/l) induced also a similar sustained contraction rapidly in all strips. Even on the K-contracture and in $Ca^{2+}-free$ Tyrode solution and also in the Tyrode solution pretreated with verapamil or $La^{3+}$, noradrenaline produced a contraction. However, the contraction in $Ca^{2+}-free$ Tyrode solution was not sustained and decreased gradually. The amplitude of noradrenaline-induced contracture was dependent on external $Ca^{2+}$; The contracture increased dose-dependently, but over 3 mM $Ca^{2+}$, decreased. The results of this experiment suggest that K-contracture was developed by an increased $Ca^{2+}-influx$ due to membrane depolarization, while noradrenaline-induced contracture was developed by both transmembrane $Ca^{2+}-influx$ and the mobilizaiton of cellular $Ca^{2+}$
Tamoxifen, an antiestrogen, has previously been shown to induce apoptosis in HepG2 human hepatoblastoma cells through activation of the pathways independent of estrogen receptors, i.e., intracellular $Ca^{2+}$ increase and generation of reactive oxygen species (ROS). However, the mechanism of tamoxifen to link increased intracellular $Ca^{2+}$ to ROS generation is currently unknown. Thus, in this study we investigated the possible involvement of calmodulin, a $Ca^{2+}$ activated protein, and $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II in the above tamoxifen-induced events. Treatment with calmodulin antagonists (calmidazolium and trifluoroperazine) or specific inhibitors of $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II (KN-93 and KN-62) inhibited the tamoxifen-induced apoptosis in a dose-dependent manner. In addition, these agents blocked the tamoxifen-induced ROS generation in a concentration-dependent fashion, which was completely suppressed by intracellular $Ca^{2+}$ chelation. These results demonstrate for the first time that, despite of its well-known direct calmodulin-inhibitory activity, tamoxifen may generate ROS and induce apoptosis through indirect activation of calmodulin and $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II in HepG2 cells.
We have previously shown that, in circular muscle cells of the lower esophageal sphincter (LES) isolated by enzymatic digestion, contraction in response to maximally effective doses of acetylcholine (ACh) or Inositol Triphosphate ($IP_3$) depends on the release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores and activation of a $Ca6{2+}$-calmodulin (CaM)-dependent pathway. On the contrary, maintenance of LES tone, and response to low doses of ACh or $IP_3$ depend on a protein kinase C (PKC) mediated pathway. In the present investigation, we have examined requirements for $Ca6{2+}$ regulation of the interaction between CaM- and PKC-dependent pathways in LES contraction. Thapsigargin (TG) treatment for 30 min dose dependently reduced ACh-induced contraction of permeable LES cells in free $Ca6{2+}$ medium. ACh-induced contraction following the low level of reduction of $Ca6{2+}$ stores by a low dose of TG ($10^{-9}{\;}M$) was blocked by the CaM antagonist, CCS9343B but not by the PKC antagonists chelerythrine or H7, indicating that the contraction is CaM-dependent. After maximal reduction in intracellular $Ca{2+}$ from $Ca6{2+}$stores by TG ($10^{-6}{\;}M$), ACh-induced contraction was blocked by chelerythrine or H7, but not by CCS9343B, indicating that it is PKC-dependent. In normal $Ca^{2+}$medium, the contraction by ACh after TG ($10^{-9}{\;}M$) treatment was also CaM-dependent, whereas the contraction by ACh after TG ($10^{-9}{\;}M$) treatment was PKC-dependent. We examined whether PKC activation was inhibited by activated CaM. CCS 7343B Inhibited the CaM-induced contraction, but did not inhibit the DAC-induced contraction. CaM inhibited the DAC-induced contraction in the presence of CCS 9343B. This inhibition by CaM was $Ca{2+}$dependent. These data are consistent with the view that the switch from a PKC-dependent pathway to a CaM dependent pathway can occur and can be regulated by cytosolic $Ca{2+}$ in the LES.
Kim, Myung Chul;Kim, Min Gyu;Jo, Young Soo;Song, Ho Sun;Eom, Tae In;Sim, Sang Soo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제18권3호
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pp.241-247
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2014
To investigate the underlying mechanisms of C18 fatty acids (stearic acid, oleic acid, linoleic acid and ${\alpha}$-linolenic acid) on mast cells, we measured the effect of C18 fatty acids on intracellular $Ca^{2+}$ mobilization and histamine release in RBL-2H3 mast cells. Stearic acid rapidly increased initial peak of intracellular $Ca^{2+}$ mobilization, whereas linoleic acid and ${\alpha}$-linolenic acid gradually increased this mobilization. In the absence of extracellular $Ca^{2+}$, stearic acid ($100{\mu}M$) did not cause any increase of intracellular $Ca^{2+}$ mobilization. Both linoleic acid and ${\alpha}$-linolenic acid increased intracellular $Ca^{2+}$ mobilization, but the increase was smaller than that in the presence of extracellular $Ca^{2+}$. These results suggest that C18 fatty acid-induced intracellular $Ca^{2+}$ mobilization is mainly dependent on extracellular $Ca^{2+}$ influx. Verapamil dose-dependently inhibited stearic acid-induced intracellular $Ca^{2+}$ mobilization, but did not affect both linoleic acid- and ${\alpha}$-linolenic acid-induced intracellular $Ca^{2+}$ mobilization. These data suggest that the underlying mechanism of stearic acid, linoleic acid and ${\alpha}$-linolenic acid on intracellular $Ca^{2+}$ mobilization may differ. Linoleic acid and ${\alpha}$-linolenic acid significantly increased histamine release. Linoleic acid (C18:2: ${\omega}$-6)-induced intracellular $Ca^{2+}$ mobilization and histamine release were more prominent than ${\alpha}$-linolenic acid (C18:3: ${\omega}$-3). These data support the view that the intake of more ${\alpha}$-linolenic acid than linoleic acid is useful in preventing inflammation.
Although plant-derived phenolic acids have been reported to have anti-cancer activity, the exact mechanism is not completely understood. In this study, we investigated the role for reactive oxygen species (ROS) as a mediator of the apoptosis induced by caffeic acid (CA) and ferulic acid (FA), common phenolic acids in plants in HepG2 human hepatoma cells. CA and FA reduced cell viability, and induced apoptotic cell death in a dose-dependent manner. In addition, they evoked a dose-related elevation of intracellular ROS. Treatment with various inhibitors of NADPH oxidase (diphenylene iodonium, apocynin, neopterine) significantly blunted both the generation of ROS and the induction of apoptosis induced CA and FA. These results suggest that ROS generated through activation of NADPH oxidase may play an essential role in the apoptosis induced by CA and FA in HepG2 cells. These results further suggest that CA and FA may be valuable for the therapeutic management of human hepatomas.
N-acetyl-L-cysteine (NAC) and cysteine have been implicated in a number of human neutrophils' functional responses. However, though $Ca^{2+}$ signaling is one of the key signalings contributing to the functional responses of human neutrophils, effects of NAC and cysteine on intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in human neutrophils have not been investigated yet. Thus, this study was carried out with an objective to investigate the effects of NAC and cysteine on $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils. We observed that NAC ($1{\mu}M{\sim}1mM$) and cysteine ($10{\mu}M{\sim}1mM$) increased $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils in a concentration-dependent manner. In NAC pre-supplmented buffer, an additive effect on N-formyl-methionine-leucine-phenylalanine (fMLP)-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils was observed. In $Ca^{2+}$-free buffer, NAC- and cysteine-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in human neutrophils completely disappeared, suggesting that NAC- and cysteine-mediated increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils occur through $Ca^{2+}$ influx. NAC- and cysteine-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase was effectively inhibited by calcium channel inhibitors SKF96365 ($10{\mu}m$) and ruthenium red ($20{\mu}m$). In $Na^+$-free HEPES, both NAC and cysteine induced a marked increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils, arguing against the possibility that $Na^+$-dependent intracellular uptake of NAC and cysteine is necessary for their $[Ca^{2+}]_i$ increasing activity. Our results show that NAC and cysteine induce $[Ca^{2+}]_i$ increase through $Ca^{2+}$ influx in human neutrophils via SKF96365- and ruthenium red-dependent way.
Reducing $[Mg^{2+}]_o$ to 0.1 mM can evoke repetitive $[Ca^{2+}]_i$ spikes and seizure activity, which induces neuronal cell death in a process called excitotoxicity. We examined the issue of whether cultured rat hippocampal neurons preconditioned by a brief exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ are rendered resistant to excitotoxicity induced by a subsequent prolonged exposure and whether $Ca^{2+}$ spikes are involved in this process. Preconditioning by an exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ for 5 min inhibited significantly subsequent 24 h exposure-induced cell death 24 h later (tolerance). Such tolerance was prevented by both the NMDA receptor antagonist D-AP5 and the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine, which blocked 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$-induced $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The AMPA receptor antagonist NBQX significantly inhibited both the tolerance and the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The intracellular $Ca^{2+}$ chelator BAPTA-AM significantly prevented the tolerance. The nonspecific PKC inhibitor staurosporin inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. While $G{\ddot{o}}6976$, a specific inhibitor of $PKC{\alpha}$ had no effect on the tolerance, both the $PKC{\varepsilon}$ translocation inhibitor and the $PKC{\zeta}$ pseudosubstrate inhibitor significantly inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. Furthermore, JAK-2 inhibitor AG490, MAPK kinase inhibitor PD98059, and CaMKII inhibitor KN-62 inhibited the tolerance, but PI-3 kinase inhibitor LY294,002 did not. The protein synthesis inhibitor cycloheximide significantly inhibited the tolerance. Collectively, these results suggest that low $[Mg^{2+}]_o$ preconditioning induced excitotoxic tolerance was directly or indirectly mediated through the $[Ca^{2+}]_i$ spike-induced activation of $PKC{\varepsilon}$ and $PKC{\xi}$, JAK-2, MAPK kinase, CaMKII and the de novo synthesis of proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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