Cho, Young Bong;Ahn, Young Kon;Choi, Hong Soon;Kim, Choon Sung
Journal of Korean Society of Occupational and Environmental Hygiene
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v.6
no.1
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pp.138-143
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1996
After oral administration of 14C-labelled $N^G$-mono[methyl-14C]-L-arginine into rats, 38.2 % and 14.7 % of the administered radioactivity bad been recovered in the urine and stool during 10 days. In the urine, 59.4 % of the radioactivity was recovered in the first 24-hours and used for the indentification of the formation of methylamine. The strong cation-exchange resin column chromatography showed 6.3 %, 7.4 %, 4.9 %, and 81.5 % of the distributions of radioactivity of the neutral, monomethylamine, basic, and uneluted portions, respectively. The radioactivity of monomethylamine portion reeluted into the column chromatography was 39.5 %. The radioactivities corresponding monomethylamine in the column chromatography, thin-layer chromatography, and thin-layer electrophoresis were 39.5 %, 37.3 %, and 28.8 % of the recovered radioactivity, respectively.
In order to investigate the biological activity of protoberberine derivatives, they were synthesized four derivatives (1-4) of 7,8 adduct of cycloberberine, two derivatives (5, 6) treated with alkylamine or phenylamine, four compounds (7, 8) and (9, 10) adduct with 1,3-dichloroacetone and oxalychloride. Antibacterial activity of these synthesized compounds was tested.
Template condensation reaction of diethylenetriamine, ethylenediamine, methylamine, and formaldehyde in the presence of Ni(II) or Cu(II) ion yields new saturated hexaaza macrobicyclic complexes $[Ni(C)]^{2+}\;and\;[Cu(C)]^{2+}$, where C is 8-methyl-1,3,6,8,10,13-hexaazabicyclo[11,2,1]hexad ecane. The macrobicyclic complexes contain one 1,3-diazacyclopentane ring and one methyl pendant arm in the ligand C and have square planar geometry with 5-6-5-6 chelate ring sequence. Synthesis, characterization, and the properties of the macrobicyclic complexes are described.
An obligate methanol-oxidizing bacterium, Methylobacillus sp. strain SK1, which grows only on methanol was isolated from soil. The isolate was nonmotile Gram-negtive rod. It does not have internal membrane system. The colonies were small, whitish-yellow, and smooth. The guanine plus cytosine content of the DNA was 48 mol%. Cellular fatty acids consisted predominantly of large amounts of straight-chain saturated $C_{16:0}$ acid and unsaturated $C_{16:1}$ acid. The major ubiquinone was Q-8, and Q-10 was present as minor component. The cell was obligately aerobic and exhibited catalase, but no oxidase, activity. Poly-.betha.-hydroxybutyrate, endospores, or cysts were not observed. the isolate could grow only on methanol in mineral medium. Growth factors were not required. The isolate was unable to use methane, formaldehyde, formate, methylamine, and several other organic compounds tested as a sole source of carbon and energy. Growth was optimal at 35.deg.C and pH 7.5. It could not grow at 42.deg.C. The doubling time was 1.2h at 30.deg.C when grown with 1.0%(v/v) methanol. The growth was not affected by antibiotics inhibiting cell wall synthesis and carbon monoxide but was completely suppressed by those inhibiting protein synthesis. Methanol was found to be assimilated through the ribulose monophosphate pathway. Cytochromes of b-, c-, and o- types were found. Cell-free extracts contained a phenazine methosulfate-linked methanol dehydrogenase activity, which required ammonium ions as an activator. Cells harvested after the late exponential phase seemed to contain blue protein.ein.
Acinetobacter sp. strain JC1 DSM 3803, a carboxydobacterium, was found to grow methylotrophically at the expense of methanol and methlamine, but not of methane, formaldehyde, formate, dimethylamine, or trimethylamine, as the sole source of carbon and energy. The doubling times of the bacterium growing on methanol (0.5%, v/v) and methylamine (0.5%, w/v) at 3$0^{\circ}C$ and pH 6.8 were 4.8 h and 5.7 h, respectively. Cells grown on methanol, however, failed to show typical methanol dehydrogenase and oxidase activities. The cell was found to contain no c-type cytochromes. Cells grown on methanol exhibited higher catalase activity than those grown on pyruvate or glucose. The catalase present in the cells also exhibited peroxidase activity. The catalase activity, growth on methanol of the cell, and oxygen consumption by methanol-grown maldehyde dehydrogenase, formaldehyde reductase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, and 6-phosphogluconate dehydrogenase activities were detected from cells grown on methanol.
LEE Eung-Ho;AHN Chang-Bum;OH Kwang-Soo;LEE Tae-Hun;CHA Yong-Jun;LEE Keun-Woo
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.19
no.5
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pp.459-468
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1986
This study was attempted to process low-sodium salt fermented small shrimp as substitutes for traditional high-sodium salt fermented one which has widely been favored and consumed in Korea. Low-salt fermented small shrimp was prepared with $4\%$ sodium chloride and $4\%$ potassium chloride, and various additives such as $0.5\%$ lactic acid, $6\%$ sorbitol and $4\%$ ethylalcohol extract of red pepper as preservatives and flavor enhancers. And the changes of taste compounds, volatile compounds and fatty acid composition in low-salt fermented small shrimp were analyzed and compared with those of conventional $20\%$ sodium salt fermented one during the fermentation of 120 days at $25{\pm}3^{\circ}C$. The most favorable taste for fermented small shrimp were reached at 60 days of fermentation. Judging from sensory evaluation, little difference of taste was detected between the low-salt fermented small shrimp and high-sodium salt fermented one. The principal taste compounds in fermented small shrimp were free amino acids, and betaine and nucleotides and their related compounds played an assistant role. The major amino acids in fermented small shrimp were glutamic acid, leucine, proline, glycine, lysine and aspartic acid. The major fatty acids in fermented small shrimp samples were 16:0, 20:5, 22:6, 16:1 and 18:1, and unsaturated fatty acids decreased slightly while saturated fatty acids increased during fermentation. At 60 days of fermentation 8 kinds of volatile fatty acids (acetic acid, propionic acid, isobutyric acid, butyric acid, isovaleric acid, valeric acid, isocarproic acid, carproic acid), 6 kinds of carbonyl compounds (ethanal, propanal, 2-methylpropanal, 3-methylbutanal, pentanal, 2-methylpentanal), and 3 kinds of volatile amines (methylamine, trimethylamine, isopropylamine) were identified.
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