Phytoestrogens are biologically active compounds derived from plants foods. It had been suggested that phytoestrogens, by inhibiting aromatase in peripheral and/or cancer cells and lowering estrogen levels, may play a protective role as antipromotional compounds during growth of estrogen-dependent cancers. Therefore, simultaneous analysis of estrogens and phytoestrogens is necessary to elucidate the possible involvement of phytoestrogens in estrogen metabolism. In this view, we developed a simple and reproducible procedure to quantitatively determine estrogen and phytoestrogen metabolites. The proposed method consisted of solid phase extraction using preconditioned Serdolit AD-2 resin, enzyme hydrolysis with ${\beta}$-glucuronidase/arylsulfatase from Helix pomatia, liquid-liquid extraction and TMS-ether derivatization. And the final determination was carried out by gas chromatography/mass spectrometry (GC/MS) in selected ion monitoring mode (SIM). The precision and accuracy of this method was evaluated through within-a-day and day-to-day test. Recovery range and detection limit were 71.96~105.66%, 2~4 ng/mL, respectively. Using this method, 17 estrogen and 5 phytoestrogen compositions in urine of normal subjects were analyzed. It was found that amounts and relative distribution of urinary phytoestrigens and estrogens showed different pattern in male and female subjects.
Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation procedure for the phalaenopsis orchid, established by using Protocorm-like bodies (PLBs), was aimed at the introduction of target genes into individuals with divergent genetic backgrounds. PLBs obtained from the axillary bud of a peduncle were maintained on a hyponex medium supplemented with 1 g/l of activated charcoal, 30 g/l of sucrose and 0.1 mg/l thiamine. The multiplication rate of PLBs was about 90% in case of subculture PLBs to be cut transversely into 1/3 part from top position. The PLBs were inoculated with Agrobacterium strain EHA105 harboring both $\beta$-glucuronidase (GUS) and hygromycin-resistant genes for 20 minutes after dipping treatment. Transformation efficiency was the highest with a Agrobacterium culture medium and dipping treatment of O.D. 0.8. Newly induced PLBs were put on selection medium containing 1 mg/l hygromycin for 2 months. Hygromycin-resistant phalaenopsis plants that regenerated after the selection culture of PLBs showed histochemical blue staining due to GUS. Transgene integration of the hygromycin-resistant plants was confirmed by PCR and Southern blot using GUS specific primers and probe.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.40
no.1
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pp.94-101
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2011
Squid (Todarodes pacificus) is processed as dried or seasoned-dried products and its catch gradually increased from 270,298 M/T in 2005 to 367,940 M/T in 2008 in Korea. Squid processing by-product (viscera) was usually discarded as a waste resulting in environmental problem. In order to utilize squid viscera for more value-added products, a natural squid seasoning was developed by fermenting with Aspergillus oryzae koji. Squid viscera at 5, 10 and 15% salt concentrations with fixed levels of 5% koji and 30% water was fermented at room temperature. The quality properties of squid fermented products such as amino-N, TMA, VBN, total viable cell count, pH and total acidity were determined at different fermentation periods. The contents of amino-N, TMA, and VBN of squid seasoning at 5% salt concentration fermented for 14 days were the highest. Based on amino-N content, squid viscera at 5% koji fermented for 14 days was selected for further assays: the content of moisture, crude protein, crude lipid, crude ash, and carbohydrate were 5.98, 35.19, 33.08, 11.30, and 14.45%, respectively. The content of glutamate, alanine, leusine and lysine were 7.06, 12.34, 9.90 and 10.22%, respectively. The $IC_{50}$ values of DPPH scavenging and $\beta$-glucuronidase inhibitory activity were 12.89 and 12.58 mg/mL, respectively. A natural squid seasoning was manufactured by mixing fermented squid viscera and an ingredient. Based on the results of sensory evaluation, the fermented squid viscera seasoning was almost equal to other natural complex seasonings such as anchovy, cow meat, and fisheries seasoning.
In this report, several factors such as infection time and concentration of bacterial suspension, influencing on transient gene expression in Agrobacterium-mediated transformation were evaluated. An appropriate concentration (O.D 600nm = 1.0-1.2) of bateria and 30 min of infection time showed a higher level of GUS expression. To improve transformation efficiency (TE), friable embryogenic calli (FEC) were bombarded by tungsten particles without plasmid DNA, and then co-cultivated with A. tumefaciens LBA4404 which contains pTOK233 super binary vector, carrying neomycin phosphotransferase (NPTII), hygromycin phosphotransferase (hpt) and$\beta-glucuronidase$ (GUS) genes. Three days after co-cultivation with A. tumefaciens and particle bombardment, FEC cultures were transferred to the selection medium (SM: MS medium supplemented with BA 1mg/l, hygromycin 100mg/l, cefotaxime 250 mg/l and vancomycin 200mg/l). They were cultured for 2 weeks and then transferred to the second SM containing hygromycin 50mg/l, cefotaxime 200 mg/l and vancomycin 100mg/l. Later, stable GUS expression was detected 4 to 6 weeks after transfer to the SM. Further, TE from Agrobacterium-mediated transformation after particle bombardment increased to about 3-folds compared with Agrobacterium-mediated transformation without particle bombardment. In the present study, we established an efficient transformation protocol of zoysiagrass by using A. tumefaciens in the combination with particle bombardment for the first time.
Soo In LEE;Hyun Jin CHUN;Chae Oh LIM;Jeong Dong BAHK;Moo Je CHO
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.22
no.3
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pp.175-182
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1995
Rice is one of the most successful monocot in regenerating fertile and genetically stable transgenic plants. However there is no report of a rice line developed in Korea that can be used for regeneration of fertile and genetically stable transformants. In this paper we first demonstrate that a Korean variety Nakdongbyeo, is suitable to obtain transgenic rice plants. Protoplasts from embryogenic suspension cultures were co-transformed with HPT (hygromycin phosphotransferase) and GUS ($\beta$-glucuronidase) genes in separate plasmids in the presence of PEG (polyethylene glycol). In 5 independent experiment, the average frequency of calli showing hygromycin resistance were 1.73%. Plantlets were regenerated from the Hy $g^{R}$ calli. The average efficiency of plantlet regeneration was apprbximately 27%. Based on the GUS activities of hygromycin resistant calli, ca.35% of the resistant calli carried active GUS genes. The R0 transgenic plantlets were grown to maturity and Rl seeds were obtained. By examining the in siぉ activity of GUS in Rl seeds and seedlings, we confirmed that the GUS transgene driven by a CaMV 35S (cauliflower mosaic virus) promoter showed proper expression patterns. We also confirmed Mendelian segregation of the HPT transgene in the Rl generation.n.
Seo, Mi-Suk;Bae, Chang-Hyu;Choi, Dae-Ock;Rhim, Seong-Lyul;Seo, Suk-Chul;Song, Pill-Soon;Lee, Hyo-Yeon
Journal of Plant Biotechnology
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v.29
no.2
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pp.85-92
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2002
This study has been focused on improving transformation efficiency of rice using Agrobacterium tumefaciens. We have demonstrated the effect of this system when the GPAT gene related to the cold-resistance was transferred by Agrobacterium tumefaciens in rice. Transformation conditions were modified using intron $\beta$-glucuronidase (GUS) expression as a reporter gene in the rice. In this study, mature seed-derived calli of rice (Oruza sativa L. cv. Dongjin) were pre-cultured for 3 days and then infected with Agrobacterium. When this infected calli were cultured in the dark for 10 days on co-cu]lure medium containing 50 mg/L of CaCl$_2$, 30 mg/L of acetosyringone, 2 mg/L of 2,4-D, 120 mg/L of betaine, high GUS expression was observed. In the present transformation system, the efficiency of transformation of GPAT gene was about 54%. Stable integration of GPAT gene into chromosomal DNA was proven by southern blot analysis of genomic DNA isolated from T$_{0}$ progenies. The progenies (T1 generation) derived from primary transformant of 5 lines were segregated with a 3 (resistant) : 1 (sensitive ratio) in medium containing hygromycin. This high frequency transformation system can be used as a useful tool in transformation of another monocotyledon.n.
Kim, Soo-Jung;Lee, Jee-Young;Kim, Chung-Ho;Choi, Yang-Do
Applied Biological Chemistry
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v.38
no.5
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pp.387-392
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1995
To study the regulatory expression mechanism of soybean glycinin gone, Gy2, the 5' upstream region of the gene was searched for the presence of putative regulatory elements by nucleotide sequencing. It revealed various kinds of regulatory sequence elements commonly found in plant storage protein genes. There were canonical promoter sequences, TATA box (TATAAT) and AGGA box (GAAT) which are common in the 5' upstream region of the plant genes. The embryo factor binding sequence, RY repeat, CACA sequences, ${\alpha}$-conglycinin enhancer-like sequences were also found. To delineate the function of these sequences, 5' upstream deletion mutants of Gy2 were prepared and fused to the ${\alpha}$-glucuronidase (GUS) gene. Each chimeric construct was transferred into soybean protoplasts for transient assay, which led to the identification of the sequences between -281 and -223, -170 and -122, of Gy2 promoter as negative regulatory elements, and the sequences between -223 and -170, -122 and -16 as positive regulatory elements. These results are consistent in transformed tobacco plants as well. The serially deleted promoter fragments fused to the GUS were transformed into Nicotiana tabacum by Agrobacterium tumefaciens using the binary vector system. GUS activity of Gy2 promoter deletion constructs was detected only in seeds but not in leaves with different levels of expression as in transient assay. These results suggest that the glycinin Gy2 promoter drives a tissue-specific expression in transgenic tobacco plants.
Sikhae is a traditional Korean fermented seafood with a 7-10% salt concentration. Consumers have begun to look for low-salt food because excess salt is known to cause hypertension and gastric cancer. The quality characteristics of low-salt squid sikhae were investigated at different fermentation temperatures and periods, so as to determine its shelflife. The shelf-life of the low-salt (5%) squid sikhae at $-1^{\circ}C$ based on pH was 142 days. The functional activities of the ethanol extract of squid sikhae such as its antioxidant activity and inhibitions on ${\alpha}$-glucosidase, ${\beta}$-glucuronidase, and elastase were stronger than those of the water extract. Based on the results of sensory evaluation, the low-salted squid sikhae was very similar to fermented seafood. In conclusion, low-salt sikhae is commercially viable.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.42
no.5
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pp.721-729
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2013
To improve the quality and functionality of the low salt squid Jeot-gal, extracts from three types of medicinal and edible plants (bay leaf, green tea, pine needle) were added. The quality characteristics, bioactivities, and shelf-lives of these preparations were determined at three different fermentation temperatures. The pH decreased more rapidly at higher temperatures, while the amount of volatile basic nitrogen (VBN), total viable cells, and amino nitrogen ($NH_2$-N) increased. The shelf-lives of Jeot-gal with natural plant extracts at $10^{\circ}C$ were 34~35 days, similar to the control. The major free and compositional amino acids of Jeot-gal were glutamic acid, proline, and alanine, while the major nucleotides (and related compounds) were hypoxanthine and inosine. In bioactivity assays, samples supplemented with plant extracts showed higher bioactivities than the control. The DPPH radical scavenging activity of ethanol extracts from Jeot-gal were stronger than the water extracts; in contrast, the water extracts were stronger for hydrogen peroxide scavenging activity. However, superoxide dismutase (SOD)-like activity and ${\beta}$-glucuronidase inhibitory activity were moderately low at 20 mg/mL. Based on sensory evaluation results, the quality of low salt squid Jeot-gal with natural plant extracts is similar to the control. Therefore, low salt squid Jeot-gal with natural plant extracts can be commercialized as a functional fermented food.
The process to acquire intron-GUS gene-expressed transformants from somatic embryos (including embryogenic calli) of Rosa hybrida cv. 'Sweet Yellow' using Agrobacterium-meditated transformation method was reported in this study. Somatic embryos including embryogenic calluses were infected with Agrobacterium tumefaciens AGL1 strain (O.D = 0.7~1.6) including intron-GUS gene for 30 min, and were co-cultured for 3 days. After co-cultivation, they were cultured on embryo germination medium (EGM) supplemented with $250\;mg{\cdot}L^{-1}$ cefotaxim at $4^{\circ}C$ for 7 days. Then, transient GUS gene expression was observed. Shoots were regenerated from the shoot primodia induced from the intron-GUS gene-transferred either somatic embryos or embryogenic calli cultured on EGM supplemented with both cefotaxim $250\;mg{\cdot}L^{-1}$ and ppt $2\;mg{\cdot}L^{-1}$. Before induction of rooting from shoots cultured on shoot growing medium supplemented with both cefotaxim $250\;mg{\cdot}L^{-1}$ and ppt $2\;mg{\cdot}L^{-1}$, the shoots were cultured on multi-shoot induction medium supplemented with both cefotaxim $250\;mg{\cdot}L^{-1}$ and ppt $2\;mg{\cdot}L^{-1}$ to induce multi-shoots. When expression of the gene from a part of the multi-shoots was identified by GUS transient assay, the putative transgenic multishoots were transferred to rooting medium supplemented with cefotaxim $250\;mg{\cdot}L^{-1}$. After the formation of healthy roots, transgenic plantlets were transferred to the greenhouse after acclimatization. The expression rate of the intron-GUS gene in the multi-shoots was 100%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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