Han, Bong-Deok;Lee, Sang-Lyul;Park, Moon-Hwan;Chae, Quae
BMB Reports
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v.28
no.6
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pp.499-503
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1995
In our previous studies (Chae et al., 1990; Chae et a1., 1993), we found that a phytochrome signal was clearly connected with the change in cytosolic free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in oat cells. It was determined that the $[Ca^{2+}]_i$ change occured both by mobilization out of the intracellular $Ca^{2+}$ store and by influx from the medium. The specific aim of this work is to elucidate the processes connecting $Ca^{2+}$ mobilization and influx. The cells treated with thapsigargin (increasing $[Ca^{2+}]_i$ by inhibition of the $Ca^{2+}$-ATPase in the calcium pool) in the presence of external $Ca^{2+}$ showed the same increasing pattern (sustained increasing shape) of $[Ca^{2+}]_i$ as that measured in animal cells. Red light irradiation after thapsigargin treatment did not increase $[Ca^{2+}]_i$ These results suggest that thapsigargin also acts specifically in the processes of mobilization and influx of $Ca^{2+}$ in oat cells. When the cells were treated with TEA ($K^+$ channel blocker), changes in $[Ca^{2+}]_i$ were drastically reduced in comparison with that measured in the absence of TEA. The results suggest that the change in $[Ca^{2+}]_i$ due to red light irradiation is somehow related with $K^+$ channel opening to change membrane potential. The membrane potential change due to $K^+$ influx might be the critical factor in opening a voltage-dependent calcium channel for $Ca^{2+}$ influx.
To clarify the effect of extracellular ATP in cultured C6 glioma cells, ATP-induced cytosolic free calcium ($[Ca^{2+}]_i$) mobilization and cell proliferation were investigated. ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increased in a dose-dependent manner $(10^{-7}\;M{\sim}10^{-3}\;M)$. ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increases were slightly slowed in extracellular calcium-free conditions especially in sustained phase. ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increment was also inhibited by the pretreatment of U73122, a phospholipase C (PLC) inhibitor, in a time-dependent manner. Suramin, a putative $P_{2Y}$ receptor antagonist, dose-dependently weakened ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ mobilization. Significant increases in cell proliferation were observed at 2, 3, and 4 days after ATP was added. Stimulated cell proliferation was also observed with adenosine at days 2 and 3. This cell proliferation was significantly inhibited by the treatment with suramin. Ionomycin also stimulated cell proliferation in a concentration-dependent manner. In conclusion, we suggest that extracellular ATP stimulates C6 glioma cell proliferation via intracellular free calcium mobilization mediated by purinoceptor.
Oral squamous cell carcinoma (OSCC) metastasis is characterized by distant metastasis and local recurrence. Combined chemotherapy with cisplatin and 5-fluorouracil is routinely used to treat patients with OSCC, and the combined use of gefitinib with cytotoxic drugs has been reported to enhance the sensitivity of cancer cells in vitro. However, the development of drug resistance because of prolonged chemotherapy is inevitable, leading to a poor prognosis. Therefore, understanding alterations in signaling pathways and gene expression is crucial for overcoming the development of drug resistance. However, the altered characterization of Ca2+ signaling in drug-resistant OSCC cells remains unclear. In this study, we investigated alterations in intracellular Ca2+ ([Ca2+]i) mobilization upon the development of gefitinib resistance in human tongue squamous carcinoma cell line (HSC)-3 and HSC-4 using ratiometric analysis. This study demonstrated the presence of altered epidermal growth factor- and purinergic agonist-mediated [Ca2+]i mobilization in gefitinib-resistant OSCC cells. Moreover, Ca2+ content in the endoplasmic reticulum, store-operated calcium entry, and lysosomal Ca2+ release through the transient receptor potential mucolipin 1, were confirmed to be significantly reduced upon the development of apoptosis resistance. Consistent with [Ca2+]i mobilization, we identified modified expression levels of Ca2+ signaling-related genes in gefitinib-resistant cells. Taken together, we propose that the regulation of [Ca2+]i mobilization and related gene expression can be a new strategy to overcome drug resistance in patients with cancer.
Shin, Jung-Hae;Kwon, Hyuk-Woo;Cho, Hyun-Jeong;Rhee, Man Hee;Park, Hwa-Jin
Journal of Ginseng Research
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v.39
no.4
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pp.354-364
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2015
Background: Intracellular $Ca^{2+}$($[Ca^{2+}]_i$) is a platelet aggregation-inducing molecule. Therefore, understanding the inhibitory mechanism of $[Ca^{2+}]_i$mobilization is very important to evaluate the antiplatelet effect of a substance. This study was carried out to understand the $Ca^{2+}$-antagonistic effect of total saponin from Korean Red Ginseng (KRG-TS). Methods: We investigated the $Ca^{2+}$-antagonistic effect of KRG-TS on cyclic nucleotides-associated phosphorylation of inositol 1,4,5-trisphosphate receptor type I ($IP_3RI$) and cyclic adenosine monophosphate (cAMP)-dependent protein kinase (PKA) in thrombin (0.05 U/mL)-stimulated human platelet aggregation. Results: The inhibition of $[Ca^{2+}]_i$ mobilization by KRG-TS was increased by a PKA inhibitor (Rp-8-BrcAMPS), which was more stronger than the inhibition by a cyclic guanosine monophosphate (cGMP)- dependent protein kinase (PKG) inhibitor (Rp-8-Br-cGMPS). In addition, Rp-8-Br-cAMPS inhibited phosphorylation of PKA catalytic subunit (PKAc) ($Thr^{197}$) by KRG-TS. The phosphorylation of $IP_3RI$ ($Ser^{1756}$) by KRG-TS was very strongly inhibited by Rp-8-Br-cAMPS compared with that by Rp-8-BrcGMPS. These results suggest that the inhibitory effect of $[Ca^{2+}]_i$ mobilization by KRG-TS is more strongly dependent on a cAMP/PKA pathway than a cGMP/PKG pathway. KRG-TS also inhibited the release of adenosine triphosphate and serotonin. In addition, only G-Rg3 of protopanaxadiol in KRG-TS inhibited thrombin-induced platelet aggregation. Conclusion: These results strongly indicate that KRG-TS is a potent beneficial compound that inhibits $[Ca^{2+}]_i$ mobilization in thrombin-platelet interactions, which may result in the prevention of platelet aggregation-mediated thrombotic disease.
Acetylcholine receptors (AChR) including muscarinic and nicotinic AChR are widely expressed and mediate a variety of physiological cellular responses in neuronal and non-neuronal cells. Notably, a functional cholinergic system exists in oral epithelial cells, and nicotinic AChR (nAChR) mediates cholinergic anti-inflammatory responses. However, the pathophysiological roles of AChR in periodontitis are unclear. Here, we show that activation of AChR elicits increased cytosolic $Ca^{2+}([Ca^{2+}]_i)$, transient cytotoxicity, and induction of receptor activator of nuclear factor kappa-B ligand (RANKL) expression. Intracellular $Ca^{2+}$ mobilization in human gingival fibroblast-1 (hGF-1) cells was measured using the fluorescent $Ca^{2+}$ indicator, fura-2/AM. Cytotoxicity and induction of gene expression were evaluated by measuring the release of glucose-6-phosphate dehydrogenase and RT-PCR. Activation of AChR in hGF-1 cells by carbachol (Cch) induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in a dose-dependent manner. Treatment with a high concentration of Cch on hGF-1 cells caused transient cytotoxicity. Notably, treatment of hGF-1 cells with Cch resulted in upregulated RANKL expression. The findings may indicate potential roles of AChR in gingival fibroblast cells in bone remodeling.
Purpose: It is generally accepted that smooth muscle contraction is triggered by intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) released from intracellular $Ca^{2+}$ stores such as sarcoplasmic teticulum (SR) and from the extracellular space. The increased $[Ca^{2+}]^i$ can phosphorylate the 20,000 dalton myosin light chain $(MLC_{20})$ by activating MLC kinase (MLCK), and this initiates smooth muscle contraction. In addition to the $[Ca^{2+}]_i$MACK-tension pathway, a number of intracellular signal molecules, including mitogen-activated protein kinase (MAPK), protein kinase C (PKC) and others, play important roles in the regulation of smooth muscle contraction. However, the mechanisms regulating contraction of depletion of SR $Ca^{2+}$ in mouse gastric smooth muscle strips is not still clear. Methods: To investigate the rotes of $Ca^{2+}$ influx and SR $Ca^{2+}$ release channel on gastric motility, isometric contraction and $[Ca^{2+}]_i$ were examined in mouse gastric smooth muscle strips. Results: High KCl, ryanodine, an activator of $Ca^{2+-}$induced $Ca^{2+}$ release channel, and cyclopiazonic acid (CPA), an inhibitor of SR $Ca^{2+-}$ATPase evoked a sustained increase in muscle contraction and $[Ca^{2+}]_i$. These increases induced by high KCl, ryanodine, and CPA were partially blocked by application of verapamil ($10{\mu}M$), a L-type $Ca^{2+}$ channel inhibitor. Additionally, in $Ca^{2+-}$free solution (1 mM EGTA), ryanodine and CPA had no effect contraction and $[Ca^{2+}]_i$ in fundic muscle strips. Conclusion: These results that extracellular $Ca^{2+}$ influx and depletion of SR trigger $Ca^{2+}$ influx through verapamil-sensitive $Ca^{2+}$ channel, and extracellular and SR $Ca^{2+}$ store may functionally involve in the subcellular $Ca^{2+}$ mobilization in mouse gastric muscle.
Cordycepin (3'-deoxyadenosine) is an adenosine analogue isolated from Cordyceps militaris, and it has been used as an anti-cancer and anti-inflammation ingredient in traditional Chinese medicine. We investigated the effects of cordycepin on human platelet aggregation induced by thapsigargin, and determined the cytosolic free $Ca^{2+}$ levels ($[Ca^{2+}]_i$), an aggregation-stimulating factor. Cordycepin significantly inhibited thapsigargin-induced platelet aggregation. Its inhibitory effect was continually sustained at the maximal aggregation concentration of thapsigargin. The thapsigargin-induced $[Ca^{2+}]_i$ were clearly reduced by cordycepin in the presence of exogenous $CaCl_2$ or extracellular $Ca^{2+}$-chelator (EDTA). These results suggest that cordycepin inhibited thapsigargin-induced $Ca^{2+}$-influx from extracellular domain and thapsigargin-induced $Ca^{2+}$-mobilization from intracellular $Ca^{2+}$ storage. Accordingly, our data demonstrated that cordycepin may have a beneficial effect on platelet aggregation-mediated thrombotic diseases by inhibiting a $[Ca^{2+}]_i$-elevation.
The extract of Cudrania tricuspidata is used in ethnomedicine throughout Eastern Asia in China, Korea and Japan. In Korean traditional medicine, Cudrania tricuspidata has been used to treat eczema, mumps, tuberculosis, contusions, insomnia and acute arthritis. In addition, it has been reported that root extract of Cudrania tricuspidata has anti-platelet effects. Therefore, we investigated which compound in Cudrania tricuspidata has inhibitory effect on platelet aggregation. In this study, we tried to explain the inhibitory mechanism of steppogenin from Cudrania tricuspidata on human platelet aggregation. Collagen-induced human platelet aggregation and [Ca2+]i mobilization were dose-dependently inhibited by steppogenin and we determined the inhibition by steppogenin is due to the down regulation of extracellular-signal-regulated kinase(ERK) and inositol-1,4,5-triphosphate receptor type I(IP3RI) phosphorylation. In addition, steppogenin inhibited collagen-induced fibronectin adhesion to αIIb/β3 and thromboxane A2 generation. Thus, in the present study, steppogenin showed an inhibitory effect on human platelet aggregation, suggesting its potential use for preventing platelet-induced cardiovascular disease.
Park, Boryung;Yang, Yu-Mi;Choi, Byung-Jai;Kim, Min Seuk;Shin, Dong Min
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.17
no.5
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pp.427-433
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2013
Receptor activator of NF-${\kappa}B$ ligand (RANKL)-induced osteoclastogenesis is accompanied by intracellular $Ca^{2+}$ mobilization in a form of oscillations, which plays essential roles by activating sequentially $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase, calcineurin and NFATc1, necessary in the osteoclast differentiation. However, it is not known whether $Ca^{2+}$ mobilization which is evoked in RANKL-independent way induces to differentiate into osteoclasts. In present study, we investigated $Ca^{2+}$ mobilization induced by aluminum fluoride ($AlF_4^-$), a G-protein activator, with or without RANKL and the effects of $AlF_4^-$ on the osteoclastogenesis in primary cultured mouse bone marrow-derived macrophages (BMMs). We show here that $AlF_4^-$ induces intracellular $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) oscillations, which is dependent on extracellular $Ca^{2+}$ influx. Notably, co-stimulation of $AlF_4^-$ with RANKL resulted in enhanced NFATc1 expression and formation of tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) positive multinucleated cells. Additionally, we confirmed that mitogen-activated protein kinase (MAPK) is also activated by $AlF_4^-$. Taken together, these results demonstrate that G-protein would be a novel modulator responsible for $[Ca^{2+}]_i$ oscillations and MAPK activation which lead to enhancement of RANKL-mediated osteoclastogenesis.
The secretion of insulin from pancreatic ${\beta}$-cells is triggered by the influx of $Ca^{2+}$ through voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels. The resulting elevation of intracellular calcium ($[Ca^{2+}]_i$) triggers additional $Ca^{2+}$ release from internal stores. Less well understood are the mechanisms involved in $Ca^{2+}$ mobilization from internal stores after activation of $Ca^{2+}$ influx. The mobilization process is known as calcium-induced calcium release (CICR). In this study, our goal was to investigate the existence of and the role of caffeine-sensitive ryanodine receptors (RyRs) in a rat pancreatic ${\beta}$-cell line, INS-1 cells. To measure cytosolic and stored $Ca^{2+}$, respectively, cultured INS-1 cells were loaded with fura-2/AM or furaptra/AM. $[Ca^{2+}]_i$ was repetitively increased by caffeine stimulation in normal $Ca^{2+}$ buffer. However, peak $[Ca^{2+}]_i$ was only observed after the first caffeine stimulation in $Ca^{2+}$ free buffer and this increase was markedly blocked by ruthenium red, a RyR blocker. KCl-induced elevations in $[Ca^{2+}]_i$ were reduced by pretreatment with ruthenium red, as well as by depletion of internal $Ca^{2+}$ stores using cyclopiazonic acid (CPA) or caffeine. Caffeine-induced $Ca^{2+}$ mobilization ceased after the internal stores were depleted by carbamylcholine (CCh) or CPA. In permeabilized INS-1 cells,$Ca^{2+}$ release from internal stores was activated by caffeine, $Ca^{2+}$, or ryanodine. Furthermore, ruthenium red completely blocked the CICR response in perrneabilized cells. RyRs were widely distributed throughout the intracellular compartment of INS-1 cells. These results suggest that caffeine-sensitive RyRs exist and modulate the CICR response from internal stores in INS-1 pancreatic ${\beta}$-cells.
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