서 론
한천(agar)은 우뭇가사리 등 홍조류의 세포벽에 포함된 다당류 성분으로 중성다당류인 agarose와 산성다당류인 agaropectin 등으로 구성되어 있다[3]. 아가로스(agarose)는 한천 의약 70%를 차지하며 α (1→3) 결합으로 연결되어 있는 β-D-gal- actose와 β (1→4) 결합으로 연결되어 있는 3, 6-anhydro-α-L- galactose가 번갈아 연결되어 있는 중성다당류이다[3].
한천은 젤리나 양갱 또는 다이어트 식품의 원료로 널리 사용되고 있으며 응고력이 세고 세균의 작용으로 잘 분해되지 않기 때문에 정제 후에 분자생물학 실험과 미생물배지의 재료로도 쓰이고 있다[3].
한천 자체나 정제산물 외에 한천분해로 생성되는 한천 올리고당은 많은 기능성이 보고되어 있어 한천올리고당 생산을 위한 많은 연구가 진행되어 왔다[5, 7, 9]. 한천올리고당을 한천으로부터 분해할 수 있는 방법에는 한천분해효소를 이용하는 효소 가수분해법과 산가수분해법이 있다[6]. 산 가수분해법은 반응을 하고 난 후에 부산물이 생기고, 중화과정을 거쳐야 하며, 생성된 한천올리고당의 기능성이 떨어지는 문제점이 있다 [6]. 이로 인해 다당체의 특정부위에 효소가 특이적으로 작용하면서 선택적으로 한천을 분해하는 효소가수분해법이 더 유용한 것으로 알려져 있다.
한천분해효소로는 α-agarase와 β-agarase 두 종류가 있다 [2]. Agarooligosaccharides는 α-agarase를 이용한 분해 산물로 이는 항암 활성과 항산화 효과를 가지고 있는 것으로 알려졌다[1]. Neoagarooligosaccharides는 β-agarase를 이용한 분해 산물로 대식세포 활성화, 전분노화 방지, 세균성장 억제, 미백효과, 보습효과 등의 많은 유용한 기능을 나타내는 것으로 알려졌다[4].
본 연구진도 α-agarase와 β-agarase와 생산 균주에 대한 보고를 하였고[5, 8] agarase를 생산하는 연구를 지속적으로 수행하였다. 본 연구에서는 α-agarase를 생산하는 새로운 균주와 그 균주가 생산하는 α-agarase의 효소활성에 대해 보고하고자 하였다.
재료 및 방법
한천분해 균주의 분리 및 동정
인천시 영흥도에서 한천분해활성을 가지는 세균의 분리를 위한 시료를 채취하였으며, Marine broth 2216 배지(Difco, USA)에 1.5% (w/v)의 한천을 첨가한 Marine agar배지에 시료 액을 도말한 후 27℃에서 배양하면서 한천분해활성으로 Marine agar 배지를 함몰시키는 HY-1 균주를 3차례 이상 순수분리하여 선별하였다. 순수분리된 균체를 대상으로 Wizard Genomic DNA isolation Kit (Promega, Cat.#: A1120)를 사용하여 genomic DNA를 획득하고, 16S rRNA 유전자 단편을 증폭하기 위한 PCR 반응의 주형으로 사용하였다. PCR pri- mer로는 1492R (5'-TAC GGH TAC CTT GTT ACG ACT T-3') 와 27F (5'-AGA GTT TGA TCM TGG CTC AG-3')를 사용하였으며, 증폭된 DNA 단편은 PCR/Gel Combo Kit (Nucleo Gen, Siheung, Korea)로 정제하였다. DNA 염기서열 분석은 Cosmogenetech (Seoul, Korea)에서 수행하였다. 분석된 염기서열은 BLAST를 사용하여 보고된 균주들의 16S rRNA 유전자 염기서열과 유사도를 검토하였으며, ClustalX (ver. 2.1) 프로그램으로 다중염기배열(multiple alignment)을 수행한 후 Neighbor-joining method와 Bootstrap method (n=1, 000) 로분석하여 계통분류학적 위치를 파악하였다.
배양시간에 따른 한천분해 균주의 생육과 효소활성 측정
초대 배양으로 Marine broth 2216 배지 4 ml에 순수분리한 HY-1 균주를 접종한 후 27℃, 250 rpm에서 하루 동안 진탕 배양하였다. 이후 Marine broth 2216 배지 50 ml에 0.2% (w/v) 의 agar를 첨가한 후 초대배양액을 접종한 후 27℃, 250 rpm에서 진탕배양하면서 24시간마다 일부 배양액을 채취하여 시간에 따른 한천분해 균주의 생육과 효소의 활성을 측정하였다. 균주의 생육은 분광광도계로 600 nm에서 측정하였고 효소 활성은 조효소액을 제조하고 효소활성을 측정하였다.
조효소액의 제조
배양액을 원심분리하여(3, 000×g, 4℃, 15 min) 균체를 제거한 후 얻어진 상층액 15 ml를 Snake Skin Dialysis Tubing (Thermo Scientific, USA)에 넣고 l, 000 ml 비커에 20 mM Tris-HCl (pH 7.0) 완충용액 900 ml 첨가하고, 4℃의 냉장실에 2시간 정치하는 것을 2번 반복한 후 세번째에는 12시간 이상 투석을 시행하였다. 투석이 완료된 조효소액은 membrane filter (0.45 μm, Milipore, USA)를 통과시킨 후에 4℃에서 냉장 보관하였다.
효소활성 측정
Agarase 활성은 DNS법을 이용하여 측정하였다. DNS법은 3, 5-dinitrosalicylic acid method의 변형법으로 환원당을 측정하는 방법이다[1]. DNS solution은 NaOH 13.2 g, 3, 6-dini- trosalicylic acid 7.07 g, sodium sulfate 5.53 g, potassium tartrate (Rochelle salt) 204 g, phenol 5.07 g을 증류수 1, 000 ml에 녹여서 제조하였다. 최종농도 0.2% (w/v)의 agarose가 포함된 완충용액을 중탕 가열한 후 반응온도까지 냉각하고 반응 수조를 이용하여 온도를 유지하면서 기질용액 1 ml에 조효소액 0.5 ml을 첨가하여 30분간 반응시킨 후 효소활성을 측정하였다. 1 ml의 효소 반응액에 3 ml의 DNS solution을 첨가하여 100℃에서 10분간 가열한 후 550 nm의 파장에서 흡광도를 측정하였다. 표준적정곡선으로 D-galactose를 사용하였다. 한천분해 효소의 활성은 1분당 1 μM의 galactose를 생산하는 한천분해 효소의 양을 1 unit (U)으로 나타내었다.
반응온도에 따른 한천분해 효소의 활성측정
조효소액을 이용하여 온도에 따른 한천분해효소의 활성을 비교하였다. 표준 기질용액으로는 0.2% (w/v)의 agarose가 포함된 20 mM Tris-HCl (pH 7.0) 완충용액을 이용하였다. 기질 용액을 중탕 가열한 후 20-70℃의 온도별로 냉각한 후 효소 활성을 측정하였다.
pH에 따른 한천분해 효소의 활성측정
pH에 따른 한천분해 효소의 활성을 측정하기 위하여 20 mM sodium acetate 완충용액(pH 4.0-5.0), 20 mM Tris- HCl 완충용액(pH 5.0-8.0), 20 mM GTA (3, 3-dimethyl-glutamic acid, Tris (hydroxymethyl)-aminomethane, 2-amino-2-meth- yl-1, 3-propanediol) 완충용액(pH 8.0-9.0)을 이용하였다. 각 완충용액에 최종농도 0.2% (w/v)의 agarose를 첨가하고 40℃에서 효소활성을 측정하였다.
한천분해 효소의 열안정성 측정
조효소액을 이용하여 온도별 노출시간에 따른 한천 분해효소의 잔존활성을 비교하였다. 표준 기질용액으로는 0.2% (w/ v)의 agarose가 포함된 20 mM Tris-HCl (pH 7.0) 완충용액을 이용하였다. 조효소액 0.5 ml를 첨가하여 각 온도별로 0.5, 1.0, 1.5, 2.0시간 열처리한 후, 40℃에서 효소활성을 측정하였다. 측정된 효소활성은 열처리하지 않은 효소활성과 비교하였다.
한천가수분해산물의 thin-layer chromatography (TLC) 분석
조효소액을 이용한 agarose의 분해산물을 TLC로 분석하였다. 조효소액과 0.2% (w/v)의 agarose가 포함된 20 mM Tris- HCl (pH 7.0) 완충용액을 40℃에서 0, 0.25, 0.5, 1, 6, 12, 24시간 반응시킨 후, Silica gel 60 TLC plate (Merck, Darmstadt, Germany)로 분석을 수행하였다. n-Butanol/acetic acid/H2O (2/1/1 (v/v/v))를 이용하여 전개시켰고, 10% (v/v) H2SO4로가시화시켰다. 표준물질로는 D-galactose (Sigma) 및 neoagarooligosaccharides [14]를 사용하였다. TLC에서 나타난 가수분해 산물의 농도비율을 계산하기 위하여 Image J 1.44o (Wayne Rasband, Bethesda, USA)프로그램을 이용하여 측정하였다.
결과 및 고찰
한천분해균주의 분리 및 동정
인천 영흥도의 해수를 채취한 후 Marine agar 배지에 도말하여 한천분해 활성에 의해 배지를 함몰시키는 균주를 선발하였다. 선발된 균주는 백금이를 이용하여 3차례 이상 순수분리하고 추출된 Genomic DNA의 16S rRNA 유전자를 분석하니 Agarivorans litoreus 그리고 Agarivorans albus와 95%의 가장 높은 유사성을 나타내었다. 이에 분리 균주를 Agarivornas sp. HY-1으로 명명하였고 이 균주의 계통분류학적 위치를 Fig. 1에 나타냈다. Agarase를 생산하여 한천을 분해하는 Agarivorans 속 세균은 보고가 되어있다[7, 10].
Fig. 1. Phylogenetic position of isolated Agarivornas sp. HY-1 based on almost complete 16S rRNA gene sequence. The number of branch nodes is a percentage of the bootstrap value, and the number in parenthesis after the strain name is the NCBI's registration number.
시간에 따른 한천분해 균주의 효소활성과 생장 측정
0.2% (w/v)의 agar를 첨가한 Marine broth 2216 배지 50 ml에 순수분리한 Agarivornas sp. HY-1 균주를 접종하여 27℃, 250 rpm에 4일 동안 진탕배양하였다. 배양 시간에 따른 한천분해 균주의 생장과 효소활성을 Fig. 2에 나타냈다. 접종 후 1일까지 균의 수가 크게 증가하였으며, 이후 감소하는 것을 확인할 수 있었다. 효소활성은 2일째가 가장 높았지만 오차범위 내에서 1일째와 3일째와 차이가 없었고 4일째는 오차범위를 벗어나서 감소하는 것을 확인할 수 있었다. 최대활성은 591.91 units/l였다. 이후 연구에서는 1일 동안 진탕배양한 후 생성된 효소액을 이용하였다.
Fig. 2. Cell growths and agarase activities of Agarivornas sp. HY-1. (◯ cell growth [OD₆₀₀], ● agarase activity [unit/l])
온도에 따른 한천분해효소의 활성
각 온도별 한천분해 효소의 활성은 Fig. 3에 나타냈다. 실험에 사용된 효소의 한천분해활성은 40℃에서 최대 활성을 보였고, 40℃ 에서의 활성을 100%로 보았을 때, 20℃에서는 약 64% 를 나타내었고, 30과 50℃에서는 90% 이상, 60℃에서는 약 89%, 70℃에서는 약 59%를 나타내었다. 다른 균주들의 한천 분해효소의 최적 온도는 Agarivorans gilvus WH0801 [7], Simiduia sp. TM-2 [9], Agarivorans albus [10]에서 각각 30, 35, 40℃의 최적의 온도를 나타내었다. 본 연구와 동일한 Agarivorans 속 세균들이 생산하는 agarase의 최적온도가 균주마다 달랐다[7, 10].
Fig. 3. Effect of reaction temperature on agarase activity. The reaction was performed at 20, 30, 40, 50, 60, and 70℃ for 30 minutes with 1 ml of 20 mM Tris-HCl buffer (pH 7.0, 0.2% (w/v) agarose) and 0.5 ml of the raw enzyme solution. Error bars represent the standard deviation of 3 replicates.
최적온도에서의 pH별 한천분해효소의 활성
최적온도에서의 pH별 한천분해효소의 활성은 Fig. 4에 나타냈다. pH 6-7의 20 mM Tris-HCl 완충용액에서 높은 활성을 보였으며, 효소활성이 가장 높은 pH 7 에서의 활성을 100%로 보았을 때, pH 5와 6에서 90% 이상의 활성을 보였다. pH 5 에서는 20 mM sodium acetate 완충용액과 20 mM Tris-HCl 완충용액 중에 20 mM sodium acetate 완충용액에서 더 높은 활성을 나타냈으며, pH 8에서는 20 mM Tris-HCl 완충용액과 20 mM GTA 완충용액 중에 20 mM Tris-HCl 완충용액에서 더 높은 활성을 나타냈다. 다른 균주들의 한천분해효소 최적 pH는 Agarivorans gilvus WH0801 [7]는 pH 6.0을 보였으며, Simiduia sp. TM-2 [9]은 pH 8.0을 보였다. Agarivorans albus [10]에선 pH 7.0을 보여, 다양한 최적pH를 보이는 것을 알 수 있다. 본 연구와 동일한 Agarivorans 속 세균이 생성하는 agarase 의 최적 pH가 온도처럼 서로 다른 것을 알 수 있었다[7, 10].
Fig. 4. Effects of pH on the agarase activity. Sodium acetate buffers (20 mM pH 4.0-5.0, ▲), Tris-HCl buffer (20 mM pH 5.0-8.0, ◯) and GTA (3,3-dimethyl-glutamic acid, Tris (hydroxymethyl)-aminomethane, 2-amino-2-methyl-1,3-propanediol) buffer (pH 8.0-9.0, ●) were used. Each buffer contained 0.2% (w/v) agarose. The reaction was carried out in 1 ml of buffer and 0.5 ml of raw enzyme solution for 30 minutes at 40℃. Error bars represent the standard deviation of 3 replicates.
한천분해효소의 열안정성
한천분해효소의 열안정성은 Fig. 5에 나타냈다. 40℃에서 열처리 없이 반응시킨 것을 100%로 보았을 때, 20, 30, 40℃에서는 해당 온도에 2시간 노출되었을 때 86% 이상의 활성을 보였다. 50℃에서는 시간에 따라 활성이 계속 떨어지는 것을 볼 수 있었으며, 2시간 노출되었을 때 44%의 잔존활성을 보였다. 60, 70℃에서는 활성이 급격히 떨어져 0.5시간부터 잔존활성을 보이지 않았다. 따라서 Agarivorans sp. HY-1가 생산하는 한천 분해효소는 내열성을 가지고 있지 않다는 것을 확인할 수 있다.
Fig. 5. Remaining activity of agarase after heat treatment. The live enzyme solution was pre-incubated at 20 (◯), 30 (□), 40 (△), 50 (●), 60 (■) and 70℃ (▲) for 0, 0.5, 1.0, 1.5 and 2.0 hr. The reaction was carried out at 50℃ for 30 minutes in 1 ml of 20 mM Tris-HCl (pH 6.0) buffer containing 0.2% (w/v) agarose and 0.5 ml of heat-treated raw enzyme solution. Error bars represent the standard deviation of 3 replicates.
한천가수분해산물의 TLC분석
Agarivorans sp. HY-1 균주를 2일 동안 배양하여 제조된 조 효소액에 0.2% (w/v)의 agarose가 첨가된 20 mM Tris-HCl (pH 7.0) 완충용액을 첨가하여 시간별로 반응시킨 후 TLC로 분석한 결과를 Fig. 6에 나타냈다. 현재 한천분해효소에는 α- agarase와 β-agarase 두 가지가 존재한다고 알려져 있기 때문에 β-agarase의 산물인 neoagarooligosaccharides를 이용하여 한천 분해효소의 산물을 추정한 후에 이 한천분해효소가 α- agarase와 β-agarase 중 어디에 속하는지 파악하였다. Fig. 6에서 NA4와 NA6 사이는 agarotriose로, NA6 아래는 agar- opentaose로 판단되었다[11]. Agarivorans sp. HY-1 균주가 생산한 한천분해효소의 산물을 TLC로 분석한 결과를 보면 β- agarase가 아닌 α-agarase인 것을 알 수 있었다. α-Agarase의분해산물은 항암 및 항산화 효과가 보고되어 있어[1], Agarivorans sp. HY-1 균주와 해당 균주가 생산하는 agarase는 유용하게 이용될 수 있을 것이다.
Fig. 5. Remaining activity of agarase after heat treatment. The live enzyme solution was pre-incubated at 20 (◯), 30 (□), 40 (△), 50 (●), 60 (■) and 70℃ (▲) for 0, 0.5, 1.0, 1.5 and 2.0 hr. The reaction was carried out at 50℃ for 30 minutes in 1 ml of 20 mM Tris-HCl (pH 6.0) buffer containing 0.2% (w/v) agarose and 0.5 ml of heat-treated raw enzyme solution. Error bars represent the standard deviation of 3 replicates.
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