DOI QR코드

DOI QR Code

대장 상피세포에서 p-Hydroxycinnamic Acid의 항염증 효과와 염증성 장질환에 대한 치료 효과

Anti-inflammatory Effect of p-Hydroxycinnamic Acid on HT-29 Intestinal Cells and Its Therapeutic Effect of Immune Bowel Disease

  • 투고 : 2020.06.09
  • 심사 : 2020.06.18
  • 발행 : 2020.06.30

초록

Inflammatory bowel disease (IBD) is a chronic inflammatory disorder on the large intestine that has been considered as an incurable not only in Western society but also in Eastern Asia in recent years. Despite enormous efforts to develop novel therapeutics for this disease, strategy using bioactive compounds from natural product is still considered as important. p-hydroxycinnamic acid (HCA) is an intermediate substance found in several plants and has been known to possess anti-inflammation but little evidence is reported whether HCA has an inhibitory effect on intestinal inflammation. In the present study, we observed HCA does not show cytotoxic and apoptotic in HT-29 cells. Quantitative PCR analysis revealed that HCA effectively blocks the activity of HT-29 cells stimulated with TNF-α treatment. HCA inhibits translocation of p65 and MAPK pathways in activated HT-29 cells by TNF-α treatment. Besides, oral administration of HCA attenuates manifestation of DSS-induced inflammatory disease in vivo. Histological analysis exhibited that oral administration of HCA recovers IBD symptoms. The expression of pro-inflammatory cytokines were reduced by oral administration of HCA on intestinal tissues. Therefore, these results suggest that HCA has a potent anti-inflammatory effect on intestinal cells as well as show a therapeutic potential for treating IBD in vivo.

키워드

염증성 장질환은 만성 염증 질환으로써 주로 대장에서 발병하는 병이다. 염증성 장질환은 크게 병인에 따라 크게 2개로 분류되는데 크론병(Crohn’s disease, CD)과 궤양성 대장염(Ulcerative colitis, UC)으로 구분된다.1) CD는 소화관 전체에 걸쳐서 발생한다고 알려져 있지만 UC는 주로 대장과 직장의 가장 안쪽에서 발생한다고 알려져 있다.2) 임상적으로 IBD의 주요 증상은 심한 설사, 통증, 피로, 체중감소 및 림프절의 확대와 관련이 있다고 보고 되었다.3) 또한, 계속되는 염증으로 인한 IBD는 대장암의 위험을 증가시킨다는 보고와 관련해 다양한 면역관련 매개인자들이 CD와 UC의 진행에 중요한 역할을 한다는 보고가 있다.4) 종양괴사인자(tumor necrosis factor-α; TNF-α), 인터루킨(interleukin1β; IL-1β, interleukin-6; IL-6, interleukin-8; IL-8), 그리고 nitric oxide(NO)등이 염증성 장질환에 관여한다고 알려져 있다.5,6) 이러한 면역관련 매개인자들의 과도한 발현은 일반적인 염증성 장질환의 증상을 촉진하기 때문에 IBD 치료에는 염증 요인의 분비에 대한 효과적인 조절이 필수이다.

p-hydroxycinnamic acid(HCA)는 phenolic acid의 한 종류로써 다른 여러가지 phenolic compounds의 전구체로써 역할을 하는 화합물로써 tyrosine으로부터 생합성 되어 진다고 알려져 있다. Turnip tops, corn bran, oregano를 포함한 여러 식물에서 발견되는 HCA는 anti-inflammatory, antioxidant, anti-mutagenic, anti-platelet, anti-ulcer 그리고 anticancer를 포함한 여러 가지 활성을 가지고 있다고 보고되었다.7-9) 특히 HCA는 염증반응에서 중요한 세포 중 하나인 T세포의 활성을 효과적으로 억제 함으로써 마우스를 이용한 아토피 피부염 모델에서 탁월한 치료 효과를 나타냈다는 연구 결과가 발표되었다.10,11) 이러한 탁월한 항염 효과에도 불구하고 HCA가 대장세포의 염증을 억제하고 염증성 장질환에서 완화효과를 나타낸다는 보고는 없기 때문에 본 연구에서는 HCA가 어떠한 메카니즘으로 대장세포의 염증매개 인자의 발현을 조절하는지 그리고 마우스를 이용한 염증성 장질환 모델에서 HCA의 치료 효과를 확인하였다.

HKSOBF_2020_v51n2_107_f0001.png 이미지

Fig. 1. The chemical structure of p-hydroxycinnamic acid.

재료 및 방법

세포 배양 및 MTT 분석

HT-29 대장 상피 세포는 American Type Culture Collection(ATCC, Rockville, MD, USA)에서 구입하였으며, 10% FBS, 100 units/ml 페니실린 및 100 mg/ml streptomycin이 첨가된 RPMI 배지로 5% CO2환경에서 37oC로 배양 하였다.

실험 동물(마우스)

생후 8주 된 암컷 BALB/c 마우스는 Samtako에서 구입하여 특정 병원균이 없는(SPF) 조건에서 사육 되었다. 모든 실험은 계명대학교 약학대학 동물보호 및 사용위원회(승인번호: KM2020-004)에 의해 승인되었다.

시약 및 기기

본 실험에서 p-hydroxycinnamic acid는 영남대학교 이승호 교수와 최혁재 교수에 의해 계지(桂枝)에서 분리되어 사용되었다. Recombinant Human TNF-α는 PeproTech EC Ltd.(London, UK)사의 제품을 사용하였으며, ECL western blotting detection reagents와 PVDF membranes, BCA protein assay kit는 Thermo Scientific(Rockford, IL, USA)에서 구입하였다. RPMI 1640 media와 fetal bovine serum(FBS)은 Welgene Inc.(Gyeongsan, Korea)사의 제품을 사용하였다. 2′, 7′-dichlorofluorescin diacetate와 NE-PER kit는 Thermo Scientific(Rockford, IL USA)사의 제품을 사용하였으며, 3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5 diphenyltetrazoliumbromide(MTT)시약은 Amresco Inc.(OH, USA)사의 제품을 사용하였다. Mesalazine(MSZ)는 Sigma-Aldrich(St. Louis, MO, USA)에서 구매하였고 dextran sulfate sodium(DSS)는 MP biomedicals(Irvine, CA, USA)에서 구매하였다. 또한 phospho-JNK, JNK, phospho-ERK, ERK, phospho-p38, p-38, p65, PARP, phospho-IκBα, IκBα, β-actin의 1차 항체와 각각의 2차 항체는 Cell Signaling Technology Inc.(Beverly, MA, USA)사의 제품을 사용하였다. Western blot 단백질 분석을 위해 LAS 4000(GE Healthcare Life Science, Tokyo, Japan) 감광 검출기를 사용하였으며, Infinite m200 pro 흡광도 측정기(Tecan, Männedorf, Switzerland), 냉장 초고속 원심분리기(Labogene, Seoul, Korea), BX-51 편광현미경(Olympus, Tokyo, Japan), 세포 이미징 시스템 IncuCyte(Essenbioscience, Ann hrbor, MI)를 사용하였다.

세포독성 확인

HT-29 세포를 96 well plate에 5×103 cells/ml의 농도로 배양한 후 IncuCyte imaging을 위하여 AnnexinV 염색 시약과 caspase3/7 염색시약을 동시에 넣어주고 HCA를 5, 10, 20, 40 μM로 24 hr 동안 처리하였다. 처리 후 IncuCyte imaging system을 통해 AnnexinV와 caspase3/7의 발현양을 각각 확인하였고 세포 confluency를 IncuCyte software를 통해 확인하였다. 세포 생존율을 구하기 위해 MTT 분석을 진행하였다.

Quantitative PCR 분석을 통한 유전자 발현 확인

염증 인자 발현을 확인 하기 위해 quantitative PCR 분석을 수행하였다. 세포 및 조직을 얻은 후 T RIZOL에 녹였다. Total RNA를 얻은 후 cDNA 합성을 진행하였고 표기된 유전자들의 발현을 확인하기 위해 primer와 함께 quantitative PCR을 이용해 분석했다. 사용된 primer의 sequence는 Table I에 정리되어 있다.

Table I. Primer sequences used for detection of expressions of pro-inflammatory cytokines by qPCR analysis

HKSOBF_2020_v51n2_107_t0001.png 이미지

세포질 및 핵 단백질 추출

p65의 세포핵 내로의 전좌(translocation)를 확인하기 위한 세포질 및 핵의 단백질 추출을 위해 Thermo Scientific.(Rockford, IL USA)사의 NEPER kit 제품을 사용하여 분리하였다. HT-29 세포를 1×10cells/ml의 밀도로 60 mm 세포 배양 접시에 배양 후 40 μM의 HCA를 1 hr 처리한 뒤 10 ng/ml의 TNF-α를 1 hr 처리하였다. 그 후 얻어진 세포를 kit 제조사의 지시에 따라 사용, 분리하여 세포질 단백질과 세포핵 단백질을 각각 추출하였다.

Western Blot Analysis

HT-29 세포를 RIPA 버퍼에 용해시키고 13,000 rpm에서 20 min 원심 분리 하였다. 농도정량을 통해 동일한 농도의 세포 용해액(lysate)을 만든 후 sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE)로 분리 하였다. 전기 영동 후 단백질을 PVDF막을 사용하여 옮겼다. 5% Skim milk를 함유 한 T BS-T로 blocking 한 후, Membrane에 각각의 1차 항체를 밤새 처리한 다음 PBS-T로 5분마다 3회 세척하고, 2차 항체를 사용하여 상온에서 1.5 hr 반응시킨 후, PBS-T로 5분마다 3회 세척하였다. 그 후 ECL 용액을 처리하고 LAS 4000(GE Healthcare Life Science, Tokyo, Japan)에서 감광시켜 단백질 발현을 확인하였다.

염증성 장질환 모델의 유도

DSS를 이용해 염증성 장질환 모델을 마우스에서 유도하였다. 마우스를 임의적으로 5마리씩 각 그룹으로 나눈 뒤 10일 동안 3% DSS가 함유된 식용수를 자유투여 함으로써 IBD를 유도하였다. Control 그룹은 DSS가 함유 되지 않은 식용수를 투여한 그룹, DSS 그룹은 3% DSS가 함유된 식용수를 투여한 그룹, DSS+HCA_20 그룹은 3% DSS가 함유된 식용수를 투여와 동시에 매일 1회 20 mg/kg의 HCA를 구강 투여한 그룹, DSS+HCA_50 그룹은 3% DSS가 함유된 식용수를 투여와 동시에 매일 1회 50 mg/kg의 HCA를 구강 투여한 그룹, DSS+MSZ 그룹은 3% DSS가 함유된 식용수를 투여와 동시에 매일 1회 70 mg/kg의 meslalzine을 구강 투여한 그룹으로 나누어 실험하였다. 매일 구강투여가 끝난 후 몸무게 측정과 대변 상태 확인을 진행하여 질병 유도의 추이를 확인하였다. 실험 종료 시 마우스 마취 후 개복 하여 대장 조직을 적출하였고 실험을 진행하였다.

질병 활동성 지표 계산(Disease Activity Index)

DSS를 이용한 IBD 유도 중 질병 활동 지수 점수를 평가하여 대장염의 임상 진행을 평가하였다. 질병 활동 지수는 초기체중, 대변의 일관성 및 출혈과 비교하여 체중 감량의 총점인데 다음과 같이 정의된다: 체중감소: 0(무감소), 1(1-5%), 2(5-10%), 3(10-20%), 4(>20%); 대변 일관성: 0(정상), 2(진대변), 4(설사); 출혈: 0(정상), 1(출혈), 2(출혈 및 시각적 피응고), 4(출혈 및 항문 주위의 혈액 자국).12)

조직 검사

대장을 약 1 cm3의 크기로 잘라 5 ml의 4% paraformaldehyde에 넣어 하룻동안 고정시킨다. 고정된 대장을 조직은 물을 제거하기 위해 에탄올에 수 차례 담그었다 빼기를 반복한다. 에탄올을 제거 후 xylene을 이용해 조직을 세척한 후 녹여진 paraffin wax에 넣고 굳힌다. Paraffin wax에 의해 침투된 조직을 임베딩 한 뒤 단면 두께 5 μm로 잘라 슬라이드를 준비한다. 조직학적 분석을 위해 hematoxylin과 eosin(H&E)으로 염색하였다.

통계분석

모든 실험은 평균과 표준오차로 표시하였으며, SPSS(Version 22.0, IBM, Armonk, NY, USA)를 사용하여 one-way analysis of variance(ANOVA) test를 실시한 뒤, 유의수준 p-value<0.05에서 검증하였다.

결과 및 고찰

이전 많은 연구에서 HCA는 세포독성을 일으키지 않는것으로 확인되었다.10) HT-29 대장 상피세포에서 HCA의 세포독성을 확인하기 위해 HCA를 농도 의존적으로 처리한 후 AnnexinV, caspase3/7의 발현을 IncuCyte imaging system과 MTT 분석을 통해 확인하였다(Fig. 2). 세포독성 실험을 통해 HCA가 80 μM의 농도까지 세포 독성에 영향을 주지 않음을 확인하였다. HT-29 대장 상피세포에서 TNF-α에 의한 자극은 여러 가지 염증과 관련된 염증 매개 인자들의 분비를 촉진하는데 IL-8, T NF-α, IL-1β와 같은 사이토카인을 포함한다고 알려져 있다.13) 따라서 TNF-α에 의해 염증 반응이 유도되었을 때 HCA가 염증 사이토카인의 발현을 억제하는지 확인하기 위해 HCA를 시간 의존적, 농도 의존적으로 처리한 후 il8, tnfa 그리고 il1b의 mRNA 수준을 확인하였다. Fig. 3을 통해서 HCA가 염증 사이토카인의 발현을 감소 시킴으로써 효과적으로 HT-29 대장 상피세포 활성을 억제하는 것을 확인할 수 있다. HT-29 대장 상피세포는 TNF-α에 의한 자극이 있을 때 NF-κB 전사인자를 통해서 염증성 사이토카인의 발현을 유도한다고 알려져 있다.14HCA의 염증인자 발현 억제 효과가 NF-κB 전사인자를 통해서 일어나는지 확인하기 위해 p65의 핵 내로의 전좌(translocation)를 확인하였다(Fig. 4A). 뿐만 아니라 HCA는 IκB의 분해(degradation)와 IκB의 인산화를 효과적으로 억제함을 확인하였다. NF-κB 전사인자의 하위 신호경로인 MAPK는 염증성 사이토카인의 발현에 굉장히 중요한 신호 경로로 알려져 있기 때문에15), EKR, p38, JNK의 인산화 수준을 western blot으로 확인하였다. 농도 의존적으로 HCA를 처리한 후 TNF-α 자극을 주었을 때 MAPK의 인산화수준이 농도 의존적으로 감소함을 확인하였다(Fig. 4B). 이러한 세포수준의 연구결과를 토대로 HCA의 구강투여가 실제로 DSS로 유도된 염증성 장질환에서 완화 또는 치료 효과를 나타내는지 동물실험을 수행함으로써 확인했다. Mesalazine은 실제 IBD 환자들에게 처방되는 약으로써 이 실험에서는 양성 대조군으로 사용되었다.16) HCA를 일주일동안 투여한 결과 DSS에 의해 유도되는 염증성 장질환의 증상이 완화가 됨을 농도 의존적으로 확인하였다(Fig. 5B). 대변의 변형 정도나 몸무게, 질병 활동성 지표 모두 유의하게 염증성 장질환의 증상이 완화됨을 나타내었다(Fig. 5C, 5D와 5E). 실험 종류 후 대장을 적출해서 비교했을 때 HCA구강투여 한 그룹에서 염증으로 인한 대장의 길이 감소가 농도 의존적으로 완화되었음을 확인하였고 증가된 대장의 길이 대비 무게가 상대적으로 줄어들었음을 검증하였다(Fig. 6A와 6B). 조직학적 변화를 확인하기 위해 H&E 염색을 수행하였는데 HCA를 구강 투여한 그룹에서 DSS가 일으킨 염증에 의한 대장 세포의 손상 정도가 상대적으로 줄어들었음을 확인하였다(Fig. 6C와 6D). 마지막으로 HCA를 구강 투여한 그룹에서 DSS에 의해 유도되는 염증 인자들의 발현에는 어떤 변화가 있는지 살펴보기 위해 대장 조직에서 염증 사이토카인의 유전자 발현을 확인하였다. il8을 비롯하여 il1b, tnfa, il6 그리고 inos의 유전자 발현이 HCA를 구강 투여한 그룹에서 농도 의존적으로 현저히 감소되어 있음을 확인하였다(Fig. 7A). 본 연구 결과는 HCA가 대장 상피세포에서 TNF-α 자극에 의해 유도된 염증 반응에서 염증 사이토카인의 발현을 NF-κB 전사인자의 활성 억제와 MAPK 신호전달을 억제함으로써 항염증 작용이 있다는 것을 나타내었다. 또한 이를 토대로 DSS로 유도된 염증성 장질환에서 여러 증상들이 유의성 있게 완화됨을 확인하였다. 이러한 결과는 HCA가 염증성 장질환 치료제로서 충분한 가능성을 가지고 있음을 시사한다.

HKSOBF_2020_v51n2_107_f0002.png 이미지

Fig. 2. HCA does not show cytotoxic and apoptotic in HT-29 cells. (A-D) HT-29 cells(5×103) were seeded in 96-well plate and treated with 5 to 80 μM of HCA for 24 hr. Before incubation, AnnexinV and caspase3/7 staining reagents were added to HT-29 cells for IncuCyte cell imaging analysis. For (A-C), microscopic images including DIC (A), AnnexinV (B) and caspase3/7 (C) were obtained by IncuCyte imaging system and cell confluency, integrated intensities of AnnexinV and caspase3/7 were calculated in IncuCyte software. Normalized values with control were presented in bottom panel. For (D), cell viability was determined by MTT assay. Normalized value was presented in bar graph.

HKSOBF_2020_v51n2_107_f0003.png 이미지

Fig. 3. HCA effectively blocks TNF-α induced activation of HT-29 cells. (A) HT-29 cells were pre-treated with HCA(40 μM) for 1 hr and stimulated with TNF-α(10 ng/ml) for 3 and 6 hr. After harvested, cells were lysed and genes expressions indicated were determined by quantitative PCR. (B) HT-29 cells were pre-treated with the indicated concentrations of HCA for 1 hr and stimulated with TNF-α(10 ng/ml) for 6 hr. After harvested, cells were lysed and genes expressions indicated were determined by quantitative PCR. Mean values of three experiment ±SEM were presented in bar graph. *p<0.05 compared to the group treated with TNF-α.

HKSOBF_2020_v51n2_107_f0004.png 이미지

Fig. 4. HCA inhibits translocation of p65 and MAPK pathways in HT-29 cells stimulated with TNF-α. (A) HT-29 cells were pretreated with HCA(40 μM) for 1 hr and stimulated with TNF-α(10 ng/ml) for 30 min. After harvested, nucleic extract was isolated from cytosolic extract to measure the translocation of p65. The level of indicated proteins were detected by western blot analysis. Protein levels were normalized with PARP for nucleic proteins and β–actin for cytosolic proteins. (B) HT-29 cells were pre-treated with the indicated concentration of HCA for 1 hr and stimulated with TNF-α(10 ng/ml) for 30 min. After harvested, cells were lysed for western blot analysis to assess the phosphorylated level of the indicated proteins. The phosphorylated levels were normalized with total proteins. Mean values of three experiment ±SEM were presented in bar graph. *p<0.05 compared to the group treated with TNF-α.

HKSOBF_2020_v51n2_107_f0005.png 이미지

Fig. 5. Oral administration of HCA attenuates manifestation of DSS-induced IBD in vivo. (A) The experimental scheme of animal experiment. ●: 3% DSS in drinking water, □: oral administration of HCA or MSZ. (B) The pictures of mice anus at day 7. (C) The progress of stool score from each group. (D) The progress of body weight from each group. Body weight was normalized with weight at day 0. (E) The progress of disease activity index from each group. Mean values of five mice ± SEM were presented in a line graph. *p<0.05 compared to the group treated with DSS.

HKSOBF_2020_v51n2_107_f0006.png 이미지

Fig. 6. Oral administration of HCA histologically attenuates IBD manifestations. (A) Large intestines were removed at day 7 postinduction of IBD and images were obtained from each group. (B) The length and weight were measured after removal of large intestine. The ratio of weight per length was determined and presented in dot graph. (C) Removed large intestines were treated for histological analysis and sliced tissues were prepared with 5 μm thickness for H&E staining. Large intestines were cut in axial (top panel) and transverse section(bottom). (D) Histological scores were measured from H&E stained slides from each group. Mean values of five mice±SEM were presented in a scattered dot graph. *p<0.05 compared to the group treated with DSS.

HKSOBF_2020_v51n2_107_f0007.png 이미지

Fig. 7. Oral administration of HCA decreases the expression of pro-inflammatory cytokines in IBD induced mice. (A) Large intestines were removed at day 7 post-induction of IBD and mRNA levels of pro-inflammatory cytokines were observed by quantitative PCR analysis. Mean values of five mice±SEM were presented in a bar graph. *p<0.05 compared to the group treated with DSS.

결론

본 연구는 p-hydroxycinnamic acid가 대장 상피세포와 염증성 장질환에 미치는 보호 효과에 대해 평가하였다. HT29 세포에서 독성을 나타내지 않았던 HCA는 TNF-α에 의해 유도된 염증인자들의 유전자 발현을 농도의존적으로 억제 하였고 이런 억제 효과는 NF-κB와 MAPK 신호 전달의 감소를 통해 일어난 다는 것을 확인하였다. DSS를 이용한 IBD 모델 마우스에서 HCA의 구강투여가 IBD의 증상 완화에 효과가 있음을 검증하였고 조직학적으로 염증 정도가 완화됨을 확인하였다. 이러한 염증완화는 구강 투여된 HCA가 염증인자들의 유전자 발현을 억제함으로써 일어난 것을 검증하였다.

사사

본 논문은 2020년도 정부(교육부)의 재원으로 한국연구재단의 지원을 받아 수행된 기초연구사업임(과제번호: 2016R1A6A1A03011325).

참고문헌

  1. Choi, E. J., Lee, H. J., Kim, W. J., Han, K. I., Iwasa, M., Kobayashi, K., Debnath, T., Tang, Y., Kwak, Y. S., Yoon, J. H. and Kim, E. K. (2019) Enterococcus faecalis EF-2001 protects DNBS-induced inflammatory bowel disease in mice model. PLoS One 14: e0210854. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0210854
  2. Kaser, A., Zeissig, S. and Blumberg, R. S. (2010) Inflammatory Bowel Disease. Annu. Rev. Immunol. 28: 573-621. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-030409-101225
  3. Horsthuis, K., Stokkers, P. C. F. and Stoker, J. (2008) Detection of inflammatory bowel disease: Diagnostic performance of cross-sectional imaging modalities. Abdom. Imaging 33: 407-416. https://doi.org/10.1007/s00261-007-9276-3
  4. Baumgart, D. C. and Sandborn, W. J. (2007) Inflammatory bowel disease: clinical aspects and established and evolving therapies. Lancet 369: 1641-1657. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(07)60751-X
  5. Moldoveanu, A. C., Diculescu, M. and Braticevici, C. F. (2015) Cytokines in inflammatory bowel disease. Rom. J. Intern. Med. 53: 118-127.
  6. Klampfer, L. (2011) Cytokines, Inflammation and Colon Cancer. Curr. Cancer Drug Targets 11: 451-464. https://doi.org/10.2174/156800911795538066
  7. Romani, A., Vignolini, P., Isolani, L., Ieri, F. and Heimler, D. (2006) HPLC-DAD/MS characterization of flavonoids and hydroxycinnamic derivatives in turnip tops(Brassica rapa L. Subsp. sylvestris L.). J. Agric. Food Chem. 54: 1342-1346. https://doi.org/10.1021/jf052629x
  8. Zhao, Z., Egashira, Y. and Sanada, H. (2005) Phenolic antioxidants richly contained in corn bran are slightly bioavailable in rats. J. Agric. Food Chem. 53: 5030-5035. https://doi.org/10.1021/jf050111n
  9. Pragasam, S. J., Venkatesan, V. and Rasool, M. (2013) Immunomodulatory and anti-inflammatory effect of p-coumaric acid, a common dietary polyphenol on experimental inflammation in rats. Inflammation 36: 169-176. https://doi.org/10.1007/s10753-012-9532-8
  10. Lee, H. S., Kim, Y. D., Na, B. R., Kim, H. R., Choi, E. J., Han, W. C., Choi, H. K., Lee, S. H. and Jun, C. D. (2012) Phytocomponent p-Hydroxycinnamic acid inhibits T-cell activation by modulation of protein kinase C-${\theta}$-dependent pathway. Int. Immunopharmacol. 12: 131-138. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2011.11.001
  11. Lee, H. S., Choi, E. J., Lee, K. S., Kim, H. R., Na, B. R., Kwon, M. S., Jeong, G. S., Choi, H. G., Choi, E. Y. and Jun, C. D. (2016) Oral Administration of p-hydroxycinnamic acid attenuates atopic dermatitis by downregulating Th1 and Th2 cytokine production and keratinocyte activation. PLoS One 11: e0150952. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0150952
  12. Kessler, S. P., Obery, D. R. and De La Motte, C. (2015) Hyaluronan synthase 3 null mice exhibit decreased intestinal inflammation and tissue damage in the DSS-induced colitis model. Int. J. Cell Biol. 2015: 745237. https://doi.org/10.1155/2015/745237
  13. Gross, V., Andus, T., Daig, R., Aschenbrenner, E., Scholmerich, J. and Falk, W. (1995) Regulation of interleukin-8 production in a human colon epithelial cell line(HT-29). Gastroenterology 108: 653-661. https://doi.org/10.1016/0016-5085(95)90436-0
  14. Kim, S., Domon-Dell, C., Kang, J., Chung, D. H., Freund, J. N. and Evers, B. M. (2004) Down-regulation of the tumor suppressor PTEN by the tumor necrosis factor-${\alpha}$/nuclear factor-${\kappa}B$(NF-${\kappa}B$)-inducing kinase/ NF-${\kappa}B$ pathway is linked to a default $I{\kappa}B$-${\alpha}$ autoregulatory loop. J. Biol. Chem. 279: 4285-4291. https://doi.org/10.1074/jbc.M308383200
  15. Zheng, Z., Jiang, H., Huang, Y., Wang, J., Qiu, L., Hu, Z., Ma, X. and Lu, Y. (2016) Screening of an anti-inflammatory peptide from Hydrophis cyanocinctus and analysis of its activities and mechanism in DSS-induced acute colitis. Sci. Rep. 6: 25672. https://doi.org/10.1038/srep25672
  16. Williams, C., Panaccione, R., Ghosh, S. and Rioux, K. (2011) Optimizing clinical use of mesalazine(5-aminosalicylic acid) in inflammatory bowel disease. Ther. Adv. Gastroenterol. 4: 237-248. https://doi.org/10.1177/1756283X11405250