Detection of Chlorotoluene and Nitrotoluene Compounds by Recombinant Microbial Biosensors

재조합 미생물 바이오센서를 이용한 chlorotoluene과 nitrotoluene 화합물의 검출

Abstract

Aromatic hydrocarbons are toxic environmental pollutants that are detrimental to the ecosystem and human health. Among them, chlorotoluene and nitrotoluene are toxic to hydrobios and irritate the skin, eyes, and respiratory organs of humans. We herein report the development of recombinant microbial biosensors for cheap and rapid monitoring of chlorotoluene and nitrotoluene compounds. Plasmids were constructed by inserting the xylR regulatory gene for BTEX (benzene, toluene, ethylbenzene, and xylene) degradation into upstream of Po' (the DmpR activator promoter Po with the deletion of its own upstream activating sequences) or Pu (the cognate promoter of XylR)::lacZ (the ${\beta}$-galactosidase gene) and transformed into Escherichia coli $DH5{\alpha}$. In the presence of inducers, the biosensor cells immobilized in agarose developed a red color in 1-2 h due to the hydrolysis of chlorophenol red ${\beta}$-D-galactopyranoside (CPRG), a substrate of ${\beta}$-galactosidase that was expressed by the inducers. Among BTEX, high responses were specifically observed with o-, m-, p-chlorotoluene ($0.1{\mu}M-100 mM$) and o-, m-, p-nitrotoluene (0.1 mM-100 mM). Po' demonstrated higher responses than those with Pu. The biosensors immobilized in agarose showed good stability after 21 days' storage at $4^{\circ}C$, and responses in untreated wastewater spiked with chlorotoluene and nitrotoluene, suggesting they can be used to detect compounds in wastewater.

방향족 화합물은 독성 환경오염물질로 생태계와 인간의 건강에 해로운 영향을 미친다. 그중 chlorotoluene과 nitrotoluene 화합물은 수생생물에 독성을 나타내며 인간의 피부, 눈, 호흡기를 자극한다. 본 연구에서는 폐수의 chlorotoluene과 nitrotoluene 화합물을 저렴하고 간단하게 검출하고자 재조합 미생물 바이오센서를 개발하였다. BTEX (benzene, toluene, ethylbenzene, xylene) 분해 조절 유전자 xylR를 Po' (upstream activating sequences를 제거한 DmpR 조절단백질 promoter Po) 또는 Pu (XylR 고유의 프로모터)::lacZ 유전자(${\beta}$-galactosidase 유전자)의 upstream에 연결한 플라스미드를 제작한 후, E. coli $DH5{\alpha}$에 형질 전환하였다. 유도 화합물 존재 하에서, 아가로스에 고정된 이 재조합 바이오센서 세포는 유도 화합물에 의해 ${\beta}$-galactosidase를 발현하고 기질인 chlorophenol red ${\beta}$-D-galactopyranoside (CPRG)를 분해하여 1~2시간에 붉은색을 나타내었다. BTEX 화합물 중, 특이적으로 o-, m-, p-chlorotoluene ($0.1{\mu}M-100 mM$) 그리고 o-, m-, p-nitrotoluene (0.1 mM-100 mM)에서 높은 반응을 나타내었으며 Po'가 Pu보다 높은 반응성을 보여주었다. 아가로스에 고정된 바이오센서는 $4^{\circ}C$에서 21일간 보존 후에도 활성의 큰 변화 없이 안정하였으며, chlorotoluene과 nitrotoluene 화합물들로 spike된 전처리 하지 않은 폐수 시료 중에서도 좋은 반응을 보여 주어 폐수 중 chlorotoluene과 nitrotoluene 화합물의 간단한 초기 검출에 활용될 수 있음을 제시하였다.

서 론

모든 살아있는 세포들은 주변 환경에 민감하게 반응한다. 이 반응은 주변 환경에 존재하는 신호물질인 특정 ligands와 전사인자들(transcriptional factors) 사이의 인식과 결합에 의해 시작된다. 결합된 복합체는 RNA 중합효소가 프로모터에 결합하게 하여 mRNA가 발현되도록 한다[18]. 이러한 전사인자들은 세포 바이오센서에서 중요한 센서 요소로 활용되어왔다[14].

XylR 단백질은 Pseudomonas에서 BTEX (benzene, toluene, ethylbenzene, 그리고 xylene) 화합물의 분해에 관여하는 전사인자이다. BTEX 화합물이 있을 때 XylR 조절 단백질은 upper operon을 위해 Pu를, XylS 유전자를 위해 Ps 프로모터를 활성화시켜 분해관련 유전자들을 발현시킨다. XylR은 σ54 의존성 RNA 중합효소에 활용하는 NtrC 패밀리에 속하는 조절 단백질로 먼 자리에서도 프로모터에 작용한다[17]. XylR은 또한 Pseudomonas sp. CF600에서 유래된 페놀분해 관련 DmpR 조절단백질의 σ54 의존성 Po 프로모터와도 상호 작용하여 활성화시킨다[5]. Pu와 Po의 유전자배열은 다르지만, 이들은 공통적으로 조절단백질이 결합하는 upstream activating sequences (UASs), σ54 의존성 RNA 중합효소가 결합하는 −12/−24 자리, 그리고 최적의 활성을 위한 integration host factor (IHF) 결합자리를 가진다[19].

방향족 화합물에 의해 유도된 XylR은 올리고 형태로 전환되고 UASs와 잘 결합하게 된다. 조절단백질과 결합된 UASs와 먼 거리의 프로모터 자리가 DNA 루프를 형성하면서 가까워진다고 보고되었다. 이 과정은 IHF가 UASs와 프로모터 사이에 있는 IHF 결합자리에 결합하므로 이루어진다[2]. 방향족화합물이 없을 시, 활성화 되지 않은 XylR이 전사의 시작을 위한 ATP 결합을 방해하거나 XylR 조절단백질의 ATPase 활성을 방해한다고 알려져 있다[12]. 그러나 방향족 화합물 없이도 조절단백질은 전사를 활성화시키기에 충분한 본질적인 ATPase 활성을 가지고 있으며 방향족 화합물의 유도에 의해 4~5배 더 활성화된다[11]. 대장균에 클로닝 된 XylR은 방향족 화합물의 유도 없이도 Pu을 통해 전사한다는 보고가 있다[3]. 우리 또한 지난 연구에서 XylR 유전자와 고유의 Pu 프로모터를 luciferase 표지 유전자와 함께 클로닝 하여 대장균에 형질전환하였을 때 방향족 화합물의 유도 없이도 의미 있는 수준의 바탕 활성을 나타내는 것을 관찰하였다[10]. 이 문제를 해결하기 위하여 xylR 유전자를 UASs을 제거한 돌연변이 Po’ 또는 Ps 프로모터와 함께 luciferase 표지 유전자와 클로닝 하였으며, Po’에서 가장 적은 바탕 활성과 큰 반응을 얻었다[10].

본 연구에서는 현장에서 사용하기 쉬운 발색 근거 바이오센서를 제작하기 위하여 xylR-Pr-Pu와 xylR-Pr-Po’을 β-galactosidase 표지 유전자와 클로닝 하여 비교 분석하였다.

 

재료 및 방법

실험재료 및 시약

아가로스는 USB corporation (Cleveland, OH, USA)에서, 배지와 agar는 Difco회사(Kansas, MO, USA)에서 구입하였다. CPRG와 BTEX 화합물, 암피실린은 Sigma (St. Louis, MO, USA)에서 구입하였다. 플라스미드 DNA 정제 키트는 Qiagen (Hilden, Germany)에서, pGL3 basic vector와 pSV-βgal vector은 Promega (Madison, WI, USA)에서, 각종 제한효소들, T4-DNA ligase는 Takara (Shiga, Japan)에서 구입하여 사용하였다. 그 외 다른 시약들도 분석용도 수준의 시약을 구입하여 정제 없이 사용하였다.

미생물과 배양조건

플라스미드를 가진 대장균 DH5α은 30 µg/ml 암피실린을 포함하는 TYS배지(1％ tryptone, 0.5％ yeast extract, 0.5％ NaCl)로 37℃에서 키웠다.

pLZXylR 제작

BTEX 화합물 검출용 luciferase 바이오센서 플라스미드 pXRBTEX-Pu 또는 pXRBTEX-Po’ [10]을 제한효소 Kpn I으로 처리하고 xylR/Pr/Pu 또는 xylR/Pr/Po’가 포함된 약 2.1 kb을 분리 정제하여 같은 효소로 잘린 β-galactosidase 리포터 시스템인 6.6 kb의 pGLacZ 벡타 플라스미드에 ligation하여 약 8.7 kb의 pLZXylR 바이오센서 플라스미드를 제작하였다(Fig. 1). pGLacZ 벡타 플라스미드는 다음과 같이 제작하였다. 1 µg의 pGL3 basic vector와 pSV-βgal vector를 Hind III와 Sal I을 처리하여 0.7％ 아가로스겔 전기영동하여 pGL3 basic vector의 경우 2.9 kb를, pSV-β-gal vector의 경우 3.7 kb을 분리 정제하여 ligation한 후 CaCl2 방법으로 E. coli DH5α에 형질 전환하였다. 양끝말단이 동일한 제한효소 Kpn I으로 cloning 되었으므로 원하는 방향임을 확인하기 위해 RV3 primer와 Pu-R primer을 이용하여 PCR을 수행하거나 β-galactosidase의 발색반응으로 올바르게 클로닝된 콜로니를 선별하였다. 플라스미드는 Qiagen spin column 키트로 정제하였으며 클로닝, ligation, 형질전환은 표준 방법으로 수행하였다[13].

Fig. 1.Construction of plasmids. The xylR-Pr-Pu or xylR-Pr-Po’ fragments were isolated from pXRBTEX-Pu or pXRBTEXPo’ and introduced upstream of β-galactosidase lacZ in the pGL-β-gal [10] to generate about 8.7 kb of the pLZXylR-Pu or pLZXylR-Po’. The arrows indicate the transcription or processing direction for genes.

세포고정, 세포수, 및 색발현시간

pLZXylR biosensor plasmid을 갖는 재조합 E. coli DH5α를 최종농도 50 µg/ml 되도록 4 ml의 30 µg/ml 암피실린이 들어있는 TYS 배지에 접종하여 37℃에서 16 시간 진탕 배양하였다. 약 30-50 µl 세포와 아가로스(0.2％, 40℃)를 1:1 혼합하여 96-wells microplate에 β-galactosidase 기질인 CPRG (3 mM)와 함께 고정하였다. 고정한 바이오센서 세포는 에탄올에 녹인 방향족 화합물과 섞은 후 정해진 시간 동안 배양하였다. β-galactosidase 활성은 CPRG 분해에 의해 나타나는 붉은색을 눈으로 검출하거나 microplate reader (Biorad, CA, USA) 로 570 nm에서 흡광도로 정량하였다[4]. 최적 실험 조건을 결정하기 위해 다양한 세포수(10-80 µl) 및 색발현시간(1-6 hr)을 조사하였다.

방향족 화합물의 처리 및 민감도 분석

다양한 방향족 화합물들(benzene, toluene, ethylbenzene, o-, m-, p-xylene, o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-methylbenzylalcohol, o-, m-, p-nitrotoluene)은 에탄올에 녹여 원하는 농도로 희석하였다. β-galactosidase 활성 확인을 위해 에탄올에 녹인 방향족 화합물들을 최종농도가 1 mM이 되도록 아가로스에 고정된 바이오센서 세포에 넣고 정해진 시간 동안 배양하였다. 눈으로 관찰 가능한 붉은색은 세포의 양에 따라 다소 차이가 있으나 1-2시간부터 나타나기 시작하였다. 또한 높은 반응성을 보이는 o-, m-, p-chlorotoluene과 o-, m-, p-nitrotoluene은 다양한 농도 범위(0.1 µM-100 mM)에서 반응을 관찰하였다.

Spiked된 폐수 분석 및 바이오센서 세포의 안정성 검사

현장 시료 분석을 위하여 아가로스에 고정된 바이오센서 세포를 포함하는 96-wells microplates을 현장에서 전처리 없이 폐수에 노출한 후 눈으로 발색을 확인하거나 실험실로 가져와 microplate reader로 흡광도를 읽어 정량하였다. 양성 데이터를 얻기 위하여 폐수를 1:1로 희석한 후 반응성을 보이는 1 mM o-, m-, p-chlorotoluene와 o-, m-, p-nitrotoluene을 spike하여 고정된 바이오센서로 측정한 결과를 같은 화합물로 spike한 완충용액 결과와 비교하였다. pLZXylR을 포함하는 아가로스 고정 바이오센서 세포의 안정성 검사를 위해 같은 날 같은 세포로 고정된 바이오센서 세포를 0.5 mM phosphate 완충용액(pH 7.0)으로 덮고 밀봉한 후 4℃에 보관하고 3, 7, 14, 21일에 β-galactosidase 활성을 관찰하였다.

통계분석

실험결과에 대한 유의성은 p-value＜0.05를 유의성이 있는 값으로 인정하며, 실험결과는 means ± SD로 제시하였다.

 

결과 및 고찰

플라스미드 pLZCapR 및 바이오센서시스템 제작

조절 단백질 XylR은 고유의 프로모터인 Pu와 UAS가 결손된 Po’를 활성화시키며 고유의 Pu보다 Po’와 융합되어 보다 더 높은 활성을 가진다고 보고되었다[10]. 본 연구에서는 기존연구를 재확인하고 현장에서 간단하게 발색으로 화합물의 존재여부를 확인하기 위하여 β-galactosidase 바이오센서 시스템을 제작하였다(Fig. 1). Luciferase 플라스미드, pXRBTEXPu, pXRBTEX-Po’로부터 xylR/Pr/Pu 또는 xylR/Pr/Po’ (약 2.1 kb)를 분리 정제하여 β-galactosidase 리포터 시스템인 pGLacZ 벡타 플라스미드(6.6 kb)에 ligation하여 pLZXylR-Pu 또는 pLZXylR-Po’ 바이오센서 플라스미드(약 8.7 kb)을 제작하였다(Fig. 1). 이 플라스미드들을 대장균 DH5α에 형질전환하고 아가로스와 β-galactosidase 기질인 CPRG와 함께 96-wells microplate에 고정하여 β-galactosidase 발색근거 바이오센서 시스템을 구축하고 그 반응 결과를 luciferase 시스템과 또는 두 프로모터간에 비교 분석하였다. 유도 화합물에 의한 모든 바이오센서 반응은 바탕실험에서 나타나는 β-galactosidase 반응을 보정하여 나타내었다.

고정, 세포수, 발현 시간 최적화 실험

재조합 바이오센서 세포는 변환기나 지지 매트릭스 고정에 의해 내성, 안정성, 오랜 기간 사용성 등이 증가 된다고 보고되었다[1, 6]. 지난 연구에서 바이오센서 세포를 0.2％ 아가로스에 고정하였을 때 2주간 활성의 큰 변화 없이 안정하게 사용할 수 있음을 보고하였다[16]. 따라서 pLZXylR 플라스미드를 갖는 바이오센서 세포를 아가로스와 혼합하여 96-wells microplate에 고정하였다. 현장에서 보다 간단하고 신속한 반응을 위하여 β-galactosidase 기질인 CPRG (3 mM)와 함께 고정하여 현장 시료만 주입하여 발색으로 관찰하게 하였다. 분석물질에 BTEX 유도 화합물이 존재할 경우, XylR 조절단백질이 활성화되고 조절단백질은 프로모터와 반응하여 downstream에 위치한 β-galactosidase을 발현하며 기질 CPRG는 분해되어 노란색에서 붉은색으로 발색된다. 이를 현장에서 눈으로 확인하거나 microplate reader에 의해 정량적으로 분석하였다.

최적의 실험조건을 구하기 위하여 세포수와 발현시간을 조사하였다(Fig. 2A, 2B). 세포의 양이 증가할수록 β-galactosidase에 의한 분해가 증가하여 흡광도가 증가하였다(Fig. 2A). Po’와 Pu 모두 비슷한 결과를 보여주었으며 세포는 직선구간에 있는 30-50 µl를 최적 세포량으로 모든 실험에서 사용하였다(Fig. 2A).

Fig. 2.Effects of cell density (A) and incubation time (B) on the activity of the biosensor. (A) Various amount of E. coli DH5α cells harboring plasmid pLZXylR-Po’ were immobilized with 3 mM CPRG in agarose, dispensed to 96-well plates, exposed to 1 mM p-chlorotoluene for 6 hr, and tested for β-galactosidase activity (closed circles) by absorbance at OD570 nm. The cell density (open circles) was measured by absorbance at OD600 nm. (B) β-galactosidase activities of biosensor cells containing pLZXylR-Po’ were measured for the indicated time with 50 µl cell density.

CPRG와 함께 고정된 바이오센서 세포에 1 mM p-chlorotoluene을 넣고 CPRG가 분해되어 발색되는데 필요한 시간을 측정하기 위해 시간별로 흡광도를 조사하였다(Fig. 2B). CPRG 분해로 인한 붉은색은 세포 양에 따라 다소 차이가 있으나 대략 1-2시간부터 눈으로 관찰 되었으며(OD570=0.5) 보다 높은 흡광도(~ 1)을 얻기 위하여 모든 실험에서 약 5-6시간 정도 유도 발현시켰다. 발현되는 시간은 Pu와 Po’ 모두 비슷한 양상을 나타내었다.

방향족 화합물의 처리 및 민감도 분석

pLZXylR을 갖는 바이오센서 세포의 바이오 인지 능력을 BTEX 포함하여 15개의 다양한 방향족 화합물(1 mM)에 노출하여 조사하였다(Fig. 3). 조사에 사용된 방향족 화합물들은 benezene, toluene, ethylbenzene, o-, m-, p-xylene, o-, m-, pmethylbenzylalcohol, o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene으로 구성되었다. Po’와 Pu 모두 o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene에 반응성을 보여주었으며 Po’ 가 o-, m-, p-chlorotoluene에서 Pu와 거의 비슷하거나 약간 높은 반응을 보이나 o-, m-, p-nitrotoluene에서는 약 2배 정도 더 높은 반응성을 보였다. 또한 Po’는 p-xylene, o-, m-, p-methylbenzylalcohol에서도 반응을 나타내었다(Fig. 3). 이는 지난 luciferase system [10]과 달리 Pu와 Po’가 β-galactosidase 시스템에서 특이하게도 o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene에 높은 반응성을 보인 반면 BTEX에는 거의 반응을 보이지 않았다. 지난 연구에서 luciferase 시스템으로 o-, m-, p-xylene, o-chlorotoluene에서 비교적 높은 bioluminescence 활성을 나타내었으며 o-methylbenzylalcohol, p-chlorotoluene, toluene에서 약간의 반응성을, 그리고 나머지 화합물들에 아주 약한 반응성을 보였다[10]. 이러한 차이점은 firefly luciferase 시스템과 β-galactosidase 시스템의 차이 또는 유전자 구조체계에서 비롯될 것으로 사료된다. 즉, 대장균에서 진핵 반딧불이 luciferase 유전자와 원핵 β-galactosidase 유전자의 다른 발현 기작으로 인한 결과의 차이로 유추 되어 진다. Keane 그룹[7] 또한 진핵유전자 firefly luciferase가 대장균 안에서 불안정하게 발현된다고 보고하였다. 이러한 반응성의 차이점은 다른 논문에서도 나타나는데 Willardson 그룹[20]은 pGL3 basic vector 대신 pGL2를 사용하였으며 p-methylbenzylalcohol 과 ethylbenzene이 Pu에 의해 인지되지 않는다고 보고하였다 [20]. 종합적으로, 본 연구에서 제작한 pLZXylR 두 프로모터 시스템은 지난 연구에서 검출이 되지 않거나 약한 o-, m-, pchlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene의 검출에 특이적으로 반응함을 보여주었다(Fig. 3).

Fig. 3.Specificity of recombinant E. coli biosensor cells containing pLZXylR. Biosensor cells (50 µl) containing pLZXylR were exposed to 1 mM of the various aromatic compounds for 6 h and their β-galactosidase activities were detected as described in Fig. 2A.

Fig. 4는 방향족 화합물 중에서 pLZXylR에 의해 높은 반응성을 나타내는 o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene 의 다양한 농도 범위별 반응을 조사하였다. 바이오센서의 유도에 필요한 농도들은 다양하게 나타났으며 대략적으로 o-, m-, p-nitrotoluene은 약 0.1 µM에서 100 mM 범위에서, 그리고 o-, m-, p-chlorotoluene은 약 0.1 mM에서 100 mM 범위에 서 Po’ 프로모터가 Pu에 비해 비슷하거나(o-, m-chlorotoluene 에서) 더 높은 반응(나머지 화합물들에서)을 보여준다(Fig. 4). Luciferase 시스템과 비교하면, luciferase 시스템에서는 0.1 µM 에서 10 mM까지 반응성을 나타내고 10 mM 이상에서는 전혀 반응하지 않지만 본 β-galactosidase system에서는 상당히 높은 농도(100 mM)에서도 반응성을 보인다. 이는 β-galactosidase 시스템에서는 손상되지 않는 세포를 이용하여 반응을 검출하므로 높은 농도의 페놀에서도 반응을 보이지만 luciferase 시스템에서는 세포를 깨어 반응을 검출하므로 높은 농도에서는 효소가 비활성화되어 반응이 나타나지 않을 것으로 보인다. 반면, luciferase 시스템은 β-galactosidase system 보다 검출 농도 범위에서 더 민감하게 반응한다고 보고되었다 [15]. 따라서 본 연구에서 제작한 β-galactosidase 시스템은 luciferase 시스템을 보완하며 비교적 높은 농도범위에서 o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene의 검출에 활용될 수 있다.

Fig. 4.Responses of the biosensor to various concentrations of chlorotoluene and nitrotoluene compounds. Biosensor cells containing pLZXylR-Po’ (open circles) or pLZXylR-Pu (closed circles) were treated with 0.1 µM-100 mM o- (A), m- (B), p-chlorotoluene (C) and o- (D), m- (E), p-nitrotoluene (F), and β-galactosidase activities were measured as described in Fig. 2A.

Spiked된 폐수 분석 및 바이오센서 세포의 안정성 검사

플라스미드 pLZXylR 함유 바이오센서 세포를 현장에서 활용하기 위하여 환경 폐수 중에서도 이러한 o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene 화합물들을 인지하는지 조사하였다(Fig. 5). 폐수에 o-, m-, p-chlorotoluene, o-, m-, p-nitrotoluene을 spike한 후에 고정된 바이오센서 세포에 주입하여 발색을 확인하였다. 바이오센서 세포는 실험실 완충용액에서와 같이 폐수에 spike된 화합물들을 인지하며 비슷하거나 약간 낮은 반응을 나타내었다(Fig. 5). Po’가 Pu에 비해 보다 높은 반응성을 나타내었으며, 특히 o-, p-chlorotoluene에서 가장 높은 반응성을 보여 주었다. 이 결과는 pLZXylR을 갖는 바이오센서가 현장폐수에서의 화합물 초기검출(존재유무)에 이용될 수 있음을 보여준다. 세포 바이오센서는 독성물질의 독성 및 생유용성 등 다양한 양상을 나타내는 것으로 알려져 있으며 [8], 정밀검출보다는 초기검출에 활용되어지며 따라서 보다 정확한 페놀계 화합물의 농도결정에는 정밀한 기기분석이 필요하다.

Fig. 5.Assessment of chlorotoluene and nitrotoluene compounds in buffer or wastewater. Biosensor cells were exposed to buffer (black bars) or wastewater (grey bars) spiked with 1 mM of o-, m-, p-chlorotoluene, and o-, m-, p-nitrotoluene. β-galactosidase activities were measured as described in Fig. 2A. A: Po’, B: Pu.

플라스미드 pLZXylR을 갖는 바이오센서의 안정성 조사를 하였다(Fig. 6). 플라스미드 pLZXylR을 포함하는 아가로스 고정 바이오센서 세포를 0.5 mM phosphate 완충용액(pH 7.0)으로 덮고 밀봉한 후 4℃에 보관하고 21일간 β-galactosidase 활성을 검사하였다. 두 프로모터는 비슷하게 21일까지 큰 변화없이 바이오센서 활성을 유지하는 것으로 관찰되었다. 이 안정성은 기존 보고[16]와 유사하며 보다 장기간 바이오센서 세포의 안정성은 표면 처리한 섬유상 망(fibrous matrices)에 고정한 재조합 효모 세포에서 관찰되었다[9]. 또한 세포 반응은 통계적으로 받아들일 수 있는 표준편차(±4.2％; n=6)로 재현성을 나타내었다.

결론적으로, 본 연구에서는 BTEX 분해 조절단백질 xylR 유전자와 두 프로모터(Pu 또는 Po’)를 β-galactosidase 표지 유전자와 결합하고 아가로스에 고정하여 방향족 화합물에 대한 반응성을 비교 분석하였다. 이 바이오센서는 BTEX 방향족 화합물에 의해 β-galactosidase를 발현하고 기질인 chlorophenol red β-D-galactopyranoside (CPRG)를 분해하여 붉은색을 발색함으로 검출한다. BTEX 방향족 화합물 중에서 o-, m-, pchlorotoluene (0.1 µM-100 mM), o-, m-, p-nitrotoluene (0.1 mM-100 mM) 화합물들에 큰 반응을 보였으며 기존 luciferase 시스템과 같이 Po’ 프로모터가 Pu에 비해 더 높은 반응을 나타내었으며, 기존 luciferase 시스템에 비해 높은 농도에서의 활성을 보여 luciferase 시스템을 보완하여 활용될 수 있음을 제시하였다. 아가로스에 고정된 바이오센서는 4℃에서 21일간 보존 후에도 안정적인 반응을 보였으며 chlorotoluene과 nitrotoluene 화합물로 spike한 폐수 시료 중에서도 전처리 없이 활용될 수 있음을 보여주어 폐수 중 chlorotoluene과 nitrotoluene 화합물의 간단한 초기 검출에 활용될 수 있음을 보여주었다.

Fig. 6.Stability of the immobilized biosensor cells. Cells (50 µl) were immobilized in 0.2% agarose and overlain with 100 µl of 50 mM KPO4 buffer (pH 7.0), and stored at 4℃. The cells were withdrawn after 3, 7, 14, and 21 days, and incubated for 6 h in the presence of 1 mM p-chlorotoluene. β-galactosidase activities were measured as described in Fig. 2A.