서 론
산화스트레스는 독성 산화물질의 축적, 병원균 감염, 염증반응과 같이 활성산소(Reactive oxygen species, ROS)의 생성으로 유발되며 높은 산화스트레스는 핵산과 단백질과 같은 세포 내 구성요소에 심각한 손상을 준다[17, 18]. 생명체는 산화스트레스로부터 세포를 보호하기 위하여 peroxiredoxins (Prxs), catalase (CAT), superoxide dismutase (SOD)와 같은 항산화효소를 이용한 생체방어 메커니즘을 발달시켰다[17, 44, 49]. Prx는 thioredoxin (Trx), thioredoxin reductase (TrxR), nichtinamicd adenine dinucleotide phosphate (reduced form, NADPH)의 존재 하에서 과산화수소를 환원시키는 항산화효소인 peroxidase family중 하나이다[22, 47, 48]. 최근에는 Prx가 세포 내 과산화수소의 신호조절인자 또는 redox sensor로 작용한다는 보고가 있다[39, 40].
Prxs는 효모에서 처음 보고된 후, 미생물부터 식물, 동물에도 존재하고 있음이 밝혀졌다[4, 5, 31, 45]. Prxs는 종에 따라 그리고 조직에 따라 발현되는 동형(isoform)이 다르며, 현재까지 알려진 포유류의 Prx에는 6가지 동형(1-6)이 있다. Prx 1과 2는 주로 세포질에 존재하며, Prx 3은 미토콘드리아 내에 있고, Prx 4는 세포 밖으로 분비되며, Prx 5는 미토콘드리아 및 퍼옥시솜(peroxisome)에, Prx 6은 주로 세포질에 존재한다[1, 14, 21, 46, 48]. 포유류의 Prx는 cysteine잔기의 수에 따라 크게 2-Cys Prxs와 1-Cys Prx로 구분되고 촉매 반응의 메커니즘에 따라 2-Cys Prxs는 다시 typical 2-Cys Prxs (Prx 1-4), atypical 2-Cys Prxs (Prx 5)로 분류된다[10, 11, 14, 22, 43, 48]. Typical 2-Cys Prxs에는 가장 일반적으로 알려진 Prx로 Prx 1부터 4가 포함되며 N-말단과 C-말단 부위에 2개의 cysteine잔기를 가지며 두 종류의 subunit간에 disulfide bond를 형성하면서 dimer를 이루는 것이 특징이다[22]. Atypical 2-Cys Prx는 Prx 5가 포함되며 2개의 cysteine잔기를 갖지만 typical 2-Cys Prx와 달리 내부의 disulfide bond를 형성해서 monomer형태로 작용한다는 것이 특징이다[14, 43]. 마지막으로 1-Cys Prxs에는 Prx 6가 포함되며 N-말단에 하나의 cysteine (peroxidatic Cys) 잔기를 가지며 효소내의 다른 cysteine잔기와 disulfide bond를 형성하지 않아 thioredoxin에 의한 과산화물의 환원이 일어나지 않는다는 차이가 있다[10].
진핵생물의 typical 2-Cys Prxs는 항산화효소로 작용할 뿐 만 아니라 과산화수소에 의한 세포 내 신호전달을 조절하고 면역반응에 관여한다[24, 25, 39, 40]. 사람의 Prxs는 세포내 신호절달계와 상호작용하여 tumor necrosis factor (TNF)-α에 의해 유도되는 nuclear factor (NF)-κB 전사활성을 조절할 뿐만 아니라 platelet-derived growth factor (PDGF)와 epidermal growth factor (EGF) 자극에 의한 H2O2 생성을 억제하기도 한다[27]. 또는 apoptosis signal-regulating kinase 1 (ASK1)과 상호작용하여 ASK 1 신호전달을 억제하거나, c-Myc의 타겟유전자의 발현을 억제하고, Toll-like receptor (TLR 4)와 상호작용하여 TNF-α와 interleukin (IL)-6와 같은 염증성 cytokine의 분비를 촉진한다[29, 41]. Prxs는 항산화효소로 작용하지만 어류를 포함한 해양생물에서는 natural killer cell enhancing factors (NKEF)로도 알려져 있다[7, 8, 16, 28, 34].
전복(Haliotis discus)은 예로부터 고급 식재료로 소비되어 왔으며 최근 중국의 해산물 소비 증가에 따라 해양수산부에서 10대 전략 수출 품목으로 지정되었다(Korean National Statistical Office, 2012). 해상가두리 양식을 통한 전복 생산량 증가로 우리나라는 중국에 이어 세계 2위의 전복 생산국이나 해상 가두리 양식에 의한 대량 폐사로 인해 안정적 생산에 어려움이 있다. 전복의 대량 폐사의 원인으로 수온, 부유토사와 같이 유생 단계의 부착 문제뿐만 아니라 유생 단계 이후 병원균의 감염이 주요 원인으로 작용하고 있다[30, 42]. 최근에는 감성돔 (Sparus aurata), 연어(Salmo sala), 방어(Seriolala landi), 까막전복(Haliotis discus discus)과 같은 해양생물의 Prx가 보고되고 있다[33, 34, 37, 38]. 감성돔과 연어에서 대사스트레스와 병원균감염에 의한 Prx의 발현 변화[34, 37]와 까막전복에서의 과산화수소 자극에 의한 Prx의 발현변화가 보고된 바 있으나[38], 참전복에서 병원균감염에 의한 항산화효소의 발현 및 기능에 대한 연구는 부족한 실정이다.
본 연구에서는 참전복(Haliotis discus hannai)의 Prx 2 유전자의 단편을 대용량 염기서열 분석으로 확보한 후, 유전자의 전체 염기서열을 확인하고 아미노산 서열을 분석하였다. 정상 전복조직에서 Prx 2 mRNA의 발현과 비브리오균을 감염시킨 전복의 간췌장과 혈구에서 시간에 따른 Prx 2의 발현변화를 분석하였다. 본 연구를 통하여 참전복의 선천성면역 반응에 관한 기초 자료로 활용하고자 하며 향후 병원균 감염에 대한 바이오마커로의 활용 가능성에 대해 알아보고자 한다.
재료 및 방법
실험동물
본 연구에 사용된 참전복(Haliotis discus hannai)은 국립수산과학원 육종연구센터에서 공급받아, 40리터 수조 내에서 18~20℃의 흐르는 해수에 일주일간 순치시킨 후, 외관상 건강한 개체(평균 중량; 50 g, 평균 각장; 62 mm, 평균 각폭; 45 mm, 평균 각고; 15 mm)를 선별하여 사용하였다.
미생물 배양 및 감염
Vibrio parahemolyticus는 25℃에서 brain-heart infusion medium (BD Biosciences, USA) 배지에 배양하였다. 배양된 균은 phosphate buffered saline (PBS)에 희석한 후 sub-lethal dose (1.2×108 cells)의 농도로 근육 주사하였으며, 대조군은 동량의 PBS를 근육 주사하였다. 균을 주사한 후 0, 1, 3, 6, 9, 12시간마다 세마리씩 선별하여 외투막, 아가미, 근육, 패각근, 간췌장, 족부, 소화관 조직을 적출하였다. 그 후 즉시 액체질소로 고정하였으며 RNA 분리를 위해 −80℃에 보관하였다. 혈액은 주사기로 채취한 후 원심분리(4℃, 3,000 rpm, 5분)로 혈구 세포만을 분리하여 액체질소에 고정한 후 다른 조직과 마찬가지로 RNA 분리를 위해 −80℃에 보관하였다.
참전복 Prx 2 유전자의 전장 cDNA 클로닝
참전복 조직(외투막, 아가미, 근육, 간췌장, 혈구)에서 RNAseq 분석을 수행하였다(data not shown). De novo assembly를 진행한 후 Basic Local Alignment Search Tool (BLAST)을 이용한 대용량 시퀀스 분석을 통하여, 까막전복 Prx 2 유전자(EF103377.1)와 아미노산 수준에서 상동성을 가지는 약 303 bp의 Prx 2 cDNA단편을 찾았다. 전장 Prx 2 cDNA 클로닝을 위해서, 303 bp의 Prx 2 cDNA단편의 염기서열을 기초로 한 Prx 2 유전자 특이프라이머를 디자인하였으며 (Prx 2 ORF-F1 : 5’-ATG GCC CAA GTC GGA AAC CTC CA-3’, Prx 2 ORF-F2 : 5’-ATG AAG ATT CCT CTC CTG GC-3’, Prx 2 ORF-R : 5’-TCA GTT GAC CTT GGA GAA GT-3’), SMART RACE cDNA amplification kit (Clontech)를 이용하여 5’-과 3’-말단의 염기서열을 확보하였다. 확보된 5’-과 3’-말단의 유전자 단편을 pGEM-T easy vector (Promega)에 클로닝하여, Escherichia coli strain XL1-blue로 형질전환하였다. Plasmid purification kit (Intron)로 plasmid를 정제한 후 자동염기 서열분석기(AB-3730XL, Applied Biosystems)로 염기서열을 결정하였다.
RNA 분리및 RT-PCR 과 qPCR을 이용한 발현분석
−80℃ 에 보관한 각각의 샘플은 TRIzol reagent (Invitrogen) 를 사용하여 RNA를 분리하였다. 1 ug의 RNA로부터 transcriptor first strand cDNA synthesis kit (Roche)와 oligo (dT) primer를 이용하여 cDNA를 합성하였다. 참전복의 조직에서 Prx 2 유전자의 발현은 cDNA 서열을 기초로 제작한 프라이머를 이용하여 RT-PCR과 quantitative real time-PCR (qPCR)로 확인하였다. 내재 표준 유전자로는 참전복 18S rRNA 유전자 accession no. AY319433; 18S rRNA F : 5’-CTC ACG GAA AGA GCG CGT TTA-3’, 18S rRNA R : 5’-GAC TTG CCC TCC AAT AGA TC-3’)를 사용하였다. RT-PCR 조건은 다음과 같다: Pre-denaturation 95℃, 5분; denaturation, annealing, extension 각각 95℃ 30초, 55℃ 30초, 72℃ 30초, 35회; extention 72℃, 10분. 증폭된 PCR산물은 ethidium bromide (100 ng/ml)이 섞인 3% 아가로즈젤에 전기영동하여 확인하였다. qPCR은 FastStart DNA Master SYBR Green I을 이용하여 LightCycler system (Roche Diagnostics)에서 수행하였다. qPCR 조건은 다음과 같다: Taq activation step, 95℃, 10분; denaturation, annealing, extension 각각 95℃ 10초, 57℃ 5초, 72℃ 30초; 40회 반복. PCR cycle이 끝난 후, 온도를 단계적으로 증가시켜 melting-curve를 분석하였다. 참전복 Prx 2 유전자의 상대적인 발현량은 2−ΔΔCT 방법[32]으로 결정하였고 참전복 18S rRNA 유전자를 내재 표준 유전자로 이용하였다. 모든 실험은 3반복하였으며 데이터는 mean ± SD로 나타내었다.
바이오인포메틱스 분석
참전복의 전장 Prx 2 cDNA염기서열을 완성하기 위하여 Prx 2 단편과 5’- 및 3’-Rapid amplification of cDNA ends (RACE)로부터 확보된 염기서열을 조합하는 작업과 이로부터 아미노산 서열을 유추하는 작업은 GENETYX8.0 (SDS Software Development, Japan)프로그램을 이용하였고, 등전점과 분자량 예측은 ExPASy 웹사이트(http://web.expasy.org/compute_pi/)에서 예측된 아미노산 서열을 이용해서 분석하였다. Prx 2의 염기서열과 아미노산서열의 비교를 위해 NCBI의 BLAST 프로그램을 사용하였다. NCBI 데이터베이스에서 연체동물문에 속하는 생물 및 기타 생물들의 유사서열을 찾은 후, 상동성이 높은 아미노산 서열을 참고서열로 활용하였다. 참전복의 Prx 2와 참고서열을 MEGA 4.0 프로그램의 CLUSTALW 모듈을 이용하여 다중서열비교를 수행하였으며, phylogenetic analysis는 아미노산 서열에 기초한 Neighbor-Joining 알고리즘으로 분석하여 제작하였다.
결 과
참전복 Prx 2 cDNA 염기서열 및 아미노산서열 분석
참전복(Haliotis discus hannai)의 대용량 유전체 분석 사업을 통하여 100개의 아미노산을 코딩하는 303 bp의 Prx유전자 염기서열 일부를 확보할 수 있었다. BLAST search 결과, 확보된 염기서열은 참전복의 thioredoxin peroxidase 유전자의 부분서열(accession no. DQ118780.1)과 까막전복의 thioredoxin peroxidase 2 유전자(accession no. EF103377.1)와 99%의 상동성을 보였다. 확보된 303 bp의 염기서열을 바탕으로 유전자 특이프라이머를 제작한 후, 이를 이용하여 5’-및 3’-RACE 방법으로 총 1,052 bp의 전장 cDNA를 완성하였다. 참전복 Prx 유전자는 597 bp의 open reading frame (ORF)에 199개의 아미노산을 코딩하고 있었으며 81 bp 의 5’-untranslated region (UTR)과 371 bp 의 3’-UTR로 구성되었다. ORF로 부터 번역된 아미노산 서열을 BLASTP 프로그램으로 분석한 결과 참전복 Prx는 두 개의 cysteine 잔기를 가진 typical 2-Cys Prx로 밝혀졌다(Fig. 1). ExPASy (http://web.expasy.org/compute_pi/) 웹사이트에서 분자량과 등전점을 분석한 결과 분자량은 22 kDa으로 등전점은 7.58로 예측되었다.
Motif scan프로그램을 이용하여 참전복 Prx의 아미노산 서열을 분석한 결과, peroxiredoxin의 특징적인 motif 두 군데를 발견할 수 있었다. 효소활성을 조절하는 motif I (FYPLDFTFVCPTEI)과 motif II (GEVCPA)가 존재하였으며, 각각의 motif 내의 52, 173번 위치에 효소활성에 중요한 역할을 하는 2개의 cysteine잔기가 보존되어 있었다(Fig. 1). 일반적으로 Prxs는 cysteine잔기의 수와 위치에 따라 분류하며 typical 2-Cys Prx는 과산화 활성을 갖는 cysteine잔기가 peroxidatic Cys는 50번, resolving Cys는 170번 근처에 위치하므로 참전복 Prx는 typical 2-Cys Prx로 볼 수 있다. Cysteine 잔기 외에도 N-말단의 cysteine 잔기 근처에 존재하면서, 주변의 과산화수소와 반응하기 쉽도록 loop-helix 구조를 안정화시켜 효소활성을 증가시킨다고 알려진[11, 19, 36] Pro44, Thr48 그리고 Arg127잔기가 존재하였다(Fig 1). 또한 참전복 Prx 2의 N-말단 부위에는 올리고머화(oligomerization)에 매우 중요한 motif I, regionI과 region II가 잘 보존되어 있었다(Fig. 2). 이외에도 높은 농도의 과산화물질로 인한 Prx 2의 과다활성화를 억제시키는 GGLG motif와 YF motif가 존재하였다(Fig. 2).
Fig. 1.The full-length cDNA and deduced amino acid sequences of Prx 2 from abalone Haliotis discus hannai. Start (ATG) and stop codons (TAA) are underlined. The putative F motif (FYPLDFTFVCPTEI) and the hydrophobic region (VCPXXW) are bold shaded. Conserved cysteines (in the motif I and hydrophobic region) are circled. The GGLG and YF motifs are bold underline. The polyadenylation signal sequence (AATAAA) is underlined in italics.
Fig. 2.Multiple alignment of the amino acid sequences of abalone Prx 2 with those of other species using ClustalW. Sequences were obtained from GenBank: human (Homo sapiens; NP 005800), mouse (Mus musculus; NP 035693), rat (Rattus norvegicus; AAH58481), pig (Sus scrofa; NP 001231403), cow (Bos Taurus; AF305562), sheep (Ovis aries; NP 001159672), frog (Xenopus laevis; NP 001085414), zebrafish (Danio rerio; NP 001002468), salmon (Salmo salar; NP 001134858), croaker (Miichthys miiuy; AFX74861), tuna (Thunnus maccoyii; ABW88997), sea bream (Sparus aurata; ADI78065) and shellfishes (Pinctada fucata; ADC35419, Cristaria plicata; ADM88874, Scylla paramamosain; ACO36036).
참전복 Prx 2의 multiple sequence alignments와 phylogenetic analysis
BLASTP 프로그램을 이용하여 참전복의 Prx 아미노산 서열을 NCBI 데이터베이스와 비교해 본 결과, 패류(ABO26635.1), 어류(ABW88997; AFX74861), 개구리(NP001085414), 초파리 (AAF42986), 쥐(NP035693; AAH58481), 양(NP001159672), 돼지(NP001231403), 소(AAG53659), 사람(NP005800)를 포함한 다른 종과 약 64~99%의 유사성을 보였다(Table 1). 특히 참전복 Prx 2는 까막전복(Haliotis discus discus), 진주조개(Pinctada fucata) 그리고 귀이빨대칭이(Cristaria plicata)와 각각 99, 77, 80%의 유사성을 보였다(Table 1). NCBI 데이터베이스에서 18개의 참고 서열을 선정하고 Clustal W 프로그램으로 multiple sequence alignments를 구축하여 비교해 본 결과, Prx의 특징적인 motif I, II, 그리고 N-말단과 C-말단의 cysteine 잔기 또한 종간에 매우 보존되어 있었다(Fig. 2). Multiple sequence alignments 결과를 토대로 MEGA 4 프로그램을 이용하여 참고서열과의 계통관계를 분석해본 결과, 크게 포유류와 양서류, 어류와 무척추동물군으로 나누어졌고 참전복 Prx 2는 연체동물과 갑각류와 하나의 그룹을 형성했다(Fig. 3).
Table 1.Clustal W pair-wise identity results of abalone Prx 2 with selected Prx amino acid sequences
Fig. 3.Phylogenetic relationships of abalone Prx 2 proteins with those of other species, calculated using the neighbor-joining method. GenBank: human (Homo sapiens; NP 005800), mouse (Mus musculus; NP 035693), rat (Rattus norvegicus; AAH 58481), pig (Sus scrofa; NP 001231403), cow (Bos Taurus; AF305562), sheep (Ovis aries; NP 001159672), frog (Xenopus laevis; NP 001085414), zebrafish (Danio rerio; NP 001002468), salmon (Salmo salar; NP 001134858), croaker (Miichthys miiuy; AFX 74861), tuna (Thunnus maccoyii; ABW 88997), sea bream (Sparus aurata; ADI 78065) and shellfishes (Pinctada fucata; ADC35419, Cristaria plicata; ADM88874, Scylla paramamosain; ACO36036).
참전복 조직에서 Prx 2 mRNA 발현 분석
참전복 조직에서 Prx 2 유전자의 mRNA 발현을 확인하고 병원균 감염에 따른 Prx의 발현변화를 분석함으로써 Prx 2의 기능을 알아보기 위해 qPCR을 수행하였다. 참전복 Prx 2의 mRNA는 실험에 사용된 모든 조직에서 관찰되었으며 외투막, 아가미, 간췌장, 족부, 소화관에서 높게 근육에서 낮게 발현되었다(Fig. 4A). 특히 아가미, 소화관과 간췌장에서 Prx 2의 발현양은 근육보다 106.7배, 51.9배, 437.8배 더 높았다. 병원균 감염으로 항산화효소의 발현이 유도되는지 알아보기 위해 비브리오 균을 감염시킨 후, Prx 2 mRNA의 발현을 확인해 보았다. 비브리오균을 감염시킨 참전복의 간췌장과 혈구세포에서 Prx 2의 발현이 유도되었다(Fig. 4B). 간췌장에서 참전복 Prx 2의 발현은 병원균을 감염시킨 후 3시간부터 발현이 유도되었고 6시간 뒤 약 1.6배까지 증가한 후 감소하였다. 혈구에서는 감염 후 1시간 뒤 약 2.25배 증가했다가 9시간까지 서서히 감소했다.
Fig. 4.Quantitative PCR of abalone Prx 2. (A) Tissue distribution of abalone Prx 2 mRNA. The level of abalone Prx 2 mRNA was quantified relative to that of 18S rRNA. To determine tissue-specific expression levels, the expression level in each tissue was compared to that in the muscle, arbitrarily defined as 1. (B) Expression level of abalone Prx 2 mRNA in the liver and hemocyte after V. parahemolyticus infection. Abalone Prx 2 expression levels were calculated relative to that in the liver or hemocyte of un-infected control, arbitrarily defined as 1. Data are presented as means ± SD with three replicates from each sample. (M, Mantle; G, Gill; S, Shell muscle; L, Liver; F, Foot; D, Digestive duct; H, Hemocytes; Ms, Muscle)
고 찰
본 연구에서는 참전복의 Prx 2 염기서열을 동정하고 분석한 후 발현양상을 알아봄으로써 참전복 Prx 2의 기능을 알아보고자 하였다. 참전복의 597 bp 의 염기서열로부터 번역된 아미노산 서열에서 효소활성에 중요한 Prx의 특징적인 부분(motif I, motif II, region I과 region II)과 peroxidatic Cys와 resolving Cys를 포함한 주요 잔기들이 존재하였고 종간에 매우 보존되어 있었다. Prxs는 cysteine 잔기의 수와 위치에 따라 분류되며 Prx 활성에 중요한 잔기의 위치로 볼 때 참전복 Prx는 typical 2-Cys Prx로 볼 수 있다. 참전복 Prx 2는 근연관계의 연체동물과 갑각류와 서열의 유사도가 높았고 phylogenetic tree 분석 결과 무척추동물과 하나의 그룹을 형성하였다. Typical 2-Cys Prx 단백질은 작용기전에 따라 sensitive형과 robust형의 두 가지 타입으로 나눌 수 있다[4, 47]. 포유류의 typical 2-Cys Prx의 대부분은 sensitive형으로 GGLG와 YF motif가 있으며 높은 농도의 H2O2가 존재할 때 효소활성을 잃는 반면 원핵생물의 경우 robust형으로 보존된 motif가 없어서 높은 농도의 H2O2 가 있을 때에도 활성을 가진다[4, 47]. 그러므로 참전복 Prx 2 역시 외부의 H2O2농도에 민감하게 반응할 수 있음을 시사한다. 염기서열과 아미노산 서열 분석결과를 볼 때, 참전복의 Prx 2는 typical 2-Cys Prx 타입으로 진화적으로 잘 보존되어 있었으며, 현재까지 보고된 포유류의 Prx 2와 유사한 기능을 할 것이라 예상된다.
참전복 Prx 2의 조직 내 발현을 확인해 본 결과, 까막전복과 돌돔 (Oplegnathus fasciatus)을 포함한 어류와 유사한 결과를 얻을 수 있었다. 참전복 Prx 2의 mRNA는 정상조직의 외투막, 아가미, 간췌장, 족부, 소화관에서 높게 발현되었다(Fig. 4). 이와 유사하게 Prx의 높은 발현은 참전복 외에도 까막전복과 돌돔의 아가미, 소화관 그리고 각시붕어의 소화관에서 보고된바 있고[9, 28, 37, 38] 복어(Tetraodon nigroviridis), 은어 (Plecoglossus altivelis), 돌돔의 간췌장에서 Prx의 발현이 높다는 보고된 바 있다[7, 16, 28]. 특히 간췌장의 경우 대사과정에서 생성되는 물질과 산화물질의 해독작용을 담당하는 다양한 효소를 생성하는 주요기관[20]으로 참전복 또한 간췌장에서 Prx 2의 발현이 높은 것으로 생각된다.
병원균 감염으로 인한 패류의 면역반응으로 ROS 생성, 살균활성 변화, 식세포의 활성변화, 가수분해효소의 활성증가가 일어난다[2, 23, 26]. 그러나 과도한 양의 ROS는 산화스트레스를 유발하기 때문에 산화스트레스를 최소화하고 면역반응을 효율적으로 조절하기 위해 패류에도 항산화시스템이 존재한다[2, 23, 35]. 참전복에서 병원성미생물 감염에 따른 항산화 효소의 발현변화를 확인해본 결과, 비브리오균을 감염시킨 참전복의 간췌장과 혈구세포에서 Prx 2의 발현이 유도되었다 (Fig. 4.). 이와 유사하게 Aeromonas hydrophila에 감염된 은어와 각시붕어, V. anguillarum에 감염된 가자미(Scophthalmus maximus)와 새우(Fenneropenaeus chinensis)의 간췌장에서도 병원균 감염 후 Prx의 발현이 증가한다는 보고가 있었다[7, 8, 9, 51]. 또한 병원균을 감염시킨 새우와 지중해담치(Mytilus galloprovincialis)의 혈구에서, 그리고 까막전복의 아가미와 혈구에서도 Prx를 비롯한 glutathione peroxidase (Gpx), SOD, CAT, Trx-2와 같은 항산화효소의 발현이 증가하였다[2, 13]. 지중해 담치의 혈구에서는 V. splendidus 감염 후 CAT와 GST-π의 발현이 증가했으나 V. anguillarum 감염시켰을 경우 두 유전자의 발현이 크게 증가하지 않거나 늦게 증가하였다. 그러나 실제 효소활성은 두 종류의 병원균 감염 시 증가하였다[2]. 또한 까막전복의 경우 병원균 감염 시 아가미에서 SOD, CAT와 Gpx의 발현은 증가했으나 Trx-2의 발현은 감소하였다[13]. 병원균 감염 시 항산화효소의mRNA 전사체의 발현이 변화한다는 것은 병원균 감염에 의한 산화스트레스 증가로 항산화효소의 전사가 증가할 것을 암시한다. 그러나 패류에서 병원균 감염 시 ROS가 생성되는 정도와 항산화효소의 발현과 활성은 종, 조직, 병원균의 종류에 따라 달랐고 mRNA발현 정도와 단백질 발현에도 차이가 있기 때문에 참전복 Prx 2의 발현뿐만 아니라 실제 효소활성도 알아보아야 할 것이며 특히 Prx와 같은 항산화효소의 경우 다양한 isoform이 있기 때문에 각 isoform의 발현과 활성에 대한 연구도 필요하다고 생각된다.
연체동물은 개방혈관계를 순환하는 혈구세포가 척추 동물의 단핵구 혹은 대식세포와 유사한 구조와 기능을 하며 pathogen associated molecular patterns (PAMPs) 을 인식하고 chemotaxis와 phagocytosis에 관여한다[12, 15, 26]. 특히 지중해 담치의 혈구세포는 병원균 감염 시 외투막과 아가미로 이동하고 침투하였고 병원균과 상호작용한다는 연구결과가 보고된 바 있다[2]. 최근 연구에 의하면 포유류에서transforming growth factor (TGF)-β, IL-1과 같은 cytokine의 자극에 의해 Prx 2가 분비된다는 연구결과가 있었다[3, 6, 29]. TNF-α와 IL-6과 같은 cytokine의 자극으로 세포 밖으로 분비된 Prx는 NK세포막의 TLR 4와 상호작용해서 NK활성을 증가시킨다 [41]. 해양생물의 Prx 2는 NKEF로 알려져 있을 뿐만 아니라 참조기(Pseudosciaena crocea)의Prx는 NF-κB의 활성을 감소시켜 pro-inflammatory response를 조절하고 미생물 감염으로부터 어류를 보호한다고 알려져 있다[50]. 그러므로 비브리오균 감염 시 전복 혈구에서 Prx의 발현이 증가하는 것은 참전복의 혈구 역시 병원균 감염에 의한 산화스트레스에 반응하며 Prx가 면역반응에 관여할 가능성을 시사한다. 실제 참전복 Prx 2가 간췌장과 혈구세포에서 효소 활성을 갖는지, 그리고 전복의 혈구세포가 PAMPs를 인지하여 면역반응을 하는데 관여하는지에 대한 연구는 후속연구로 필요할 것이다.
본 연구결과를 정리해보면 참전복의 Prx 2는 아미노산 서열상에 항산화효소의 특징을 잘 보존하고 있었으며, 병원균의 인위감염 후 시간에 따른 발현 변화를 관찰한 결과, 병원균 감염에 대한 면역반응에도 관여함을 알 수 있었다. 본 연구를 통해 무척추동물의 선천성 면역반응을 알아봄으로써 무척추 동물에서 척추동물로의 선천성 면역시스템의 발달과정을 이해하는데 유용할 것이라 생각된다.
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