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Effects of Scutellariae Radix on Gene Expression of Human Cervical Cancer Cells(SNU-703)

황금추출물이 인간 유래 자궁경부암세포의 유전자발현에 미치는 영향

  • Jo, Hyun-Jung (Dept. of Gynecology, College of Oriental Medicine, Dongshin University) ;
  • Gu, Hee-Jun (Dept. of Gynecology, College of Oriental Medicine, Dongshin University) ;
  • Cho, Seong-Hee (Dept. of Gynecology, College of Oriental Medicine, Dongshin University) ;
  • Park, Kyung-Mi (Dept. of Gynecology, College of Oriental Medicine, Dongshin University) ;
  • Yang, Seung-Jeong (Dept. of Gynecology, College of Oriental Medicine, Dongshin University)
  • 조현정 (동신대학교 한의과대학 한방부인과교실) ;
  • 구희준 (동신대학교 한의과대학 한방부인과교실) ;
  • 조성희 (동신대학교 한의과대학 한방부인과교실) ;
  • 박경미 (동신대학교 한의과대학 한방부인과교실) ;
  • 양승정 (동신대학교 한의과대학 한방부인과교실)
  • Published : 2009.08.31

Abstract

Purpose: In the theory of traditional medicine, Scutellariae Radix (SR) can clear away heat and remove dampness, purge the sthenic fire and remove toxic materials, cool blood and stop bleeding to prevent miscarriage. Recently, SR is known to have anti-cancer activity. For this reason, the present author designed to investigate the effect of SR on proliferation rates of cervical cancer cell line, then effects on genetic profile by SR. Methods: The genetic profile for the effect of SR on human derived cervical cancer cell line, SNU-703, was measured using microarray technique, and the functional analysis on these genes was conducted. Results: Total 519 genes were up-regulated and 606 genes down-regulated in cells treated with SR. Genes induced or suppressed by SR were all mainly concerned with metabolic process, regulation of biological process and protein binding. The network of total protein interactions was measured using cytoscape program, and some key molecules, such as TNFRSF1A, AKT1, MAPK3, and STAT3 that can be used for elucidation of therapeutical mechanism of medicine in future were identified. Conclusion: These results suggest possibility of SR as anti-cancer drug and also suggest that related mechanisms are involved in TNFRSF1A, AKT1, MAPK3, and STAT3 related signalling pathways.

Keywords

References

  1. 한국중앙암등록본부, 보건복지부. 한국 중앙 암 등록 사업 연례보고서(2002.1-2002.12). 보건복지부. 2003.
  2. 대한부인종양.콜포스코피학회. 부인종양학. 서울:도서출판 칼빈서적. 1996: 1-30, 46-95.
  3. 문구, 정병학, 김병주. 암 동서의 결합 치료 2. 서울:원광대학교출판국. 1999:379-406.
  4. 김병기 등. 대한부인종양 ? 콜포스코피학회의 4가 인유두종 바이러스 백신 접종 권고안. 부인종양. 2007;18(4): 259-81.
  5. 대한산부인과학회. 부인과학 제3판. 서울: 도서출판 칼빈서적. 1997;924-5, 980-1027.
  6. 韓醫婦人科學 敎材編纂委員會. 韓方婦人科學(上). 서울:도서출판 정담. 2002: 260-9, 303-7, 322-9.
  7. 박명원 등. 當歸芍藥散이 HeLa Cell의 增殖抑制와 死滅에 미치는 影響. 大韓韓方婦人科學會誌. 2006;19(2):34-48.
  8. 金倫槿 등. 桂枝茯笭丸이 子宮癌細胞 의 成長抑制와 MAP kinase 活性에 미치는 影響. 大韓韓方婦人科學會誌. 2002;15(1):31-43.
  9. 박경미 등. 濟川煎이 子宮頸部癌細胞(HeLa cell)에 미치는 影響. 大韓韓方婦人科學會誌. 2003;16(2):161-76.
  10. 김주연 등. 生地黃이 子宮頸部癌細胞(Hela cell)에 미치는 影響. 대한한방부인과학회지. 2006;19(1):69-80.
  11. 하지연 등. 半枝蓮이 HeLa Cell의 增殖抑制와 死滅에 미치는 影響. 大韓韓方婦人科學會誌. 2006;19(4):47-60.
  12. 최변탁 등. 虎杖根이 子宮頸部癌細胞의 成長抑制 및 細胞枯死에 미치는 영향. 大韓韓方婦人科學會誌. 2006;19(1):1-13.
  13. 신민교. 임상본초학. 서울:도서출판영림사. 1997:400-2.
  14. 馬繼與 主編. 神農本草經輯注. 北京:人民衛生出版社. 1995:215-6.
  15. 新文豊出版公司. 新編 中藥大辭典(下). 壹北:新文豊出版公司. 1981:2092-7.
  16. 신숙정, 이정호. 삼릉, 황금, 살송편버섯 혼합추출물의 항종양 작용. 생약학회지. 2004;35(4):324-9.
  17. 서운교, 정지천. Melanoma B-16에서 IL-1$\beta$유발 GnT-Ⅲ,Ⅴ활성에 대한 과루인, 황금 추출물의 영향. 대한한방종양학회지. 1999;5(1);103-18.
  18. 김석창 등. 황금으로부터 항산화 활성성분의 분리. 한약작지. 2006;14(4): 212-6.
  19. 양재헌 등. 황금 및 생강복합 수용성겔 제제의 항산화 활성 및 피부염 치료효과. 약제학회지. 2006;36(4):253-62.
  20. 최영광 등. 황금약침액이 LPS로 유도된 RAW 264.7 대식세포에서의 항염증효과. 2003;6(3):5-14.
  21. 박길병, 박양춘. 황금이 천식모델 생쥐의 폐조직내 면역세포에 미치는 영향. 대전대학교한의학연구원논문집. 2005;14(1):35-42.
  22. 김명규 등. 황금이 사람 비만세포의 사이토카인 및 케모카인 분비에 미치는 영향. 대한본초학회지. 2007;22(4): 233-8.
  23. 하기태 등. 황금의 간세포 보호활성 및 cytochrome P450 발현 조절에 관한 연구. 동의생리병리학회지. 2008;22(1):155-61.
  24. Blanchard AP, Kaiser RJ, Hood LE. High-density oligonucleotide arrays. Biosensors Bioelectron. 1996;11:687-90. https://doi.org/10.1016/0956-5663(96)83302-1
  25. N. Iizuka et al. Comparison of gene expression profiles between hepatitis B virus- and hepatitis C virusinfected hepatocellular carcinoma by oligonucleotide microarray data on the basis of a supervised learning method. Cancer Res. 2002;62:3939-44.
  26. Roslev P, King GM. Application of a Tetrazolium Salt with a Water -Soluble Formazan as an Indicator of Viability in Respiring Bacteria. Appl Environ Microbiol. 1993;59(9):2891-6.
  27. Florell SR et al. Preservation of RNA for functional genomic studies: a multidisciplinary tumor bank protocol. Mod Pathol. 2001;14(2):116-28. https://doi.org/10.1038/modpathol.3880267
  28. Weis S et al. Quality control for microarray analysis of human brain samples: The impact of postmortem factors, RNA characteristics, and histopathology. J. Neurosci Methods. 2007;165(2):198-209. https://doi.org/10.1016/j.jneumeth.2007.06.001
  29. Kwon KH et al. Analysis of gene expression profiles in cholesteatoma using oligonucleotide microarray. Acta Otolaryngol. 2006;126(7):691-7. https://doi.org/10.1080/00016480500475633
  30. Zahurak M et al. Pre-processing Agilent microarray data. BMC Bioinformatics. 2007;8:142. https://doi.org/10.1186/1471-2105-8-142
  31. Pavlicek A, Hrda S, Flegr J. Free-Tree-freeware program for construction of phylogenetic trees on the basis of distance data and bootstrap/jackknife analysis of the tree robustness. Application in the RAPD analysis of genus Frenkelia. Folia Biol (Praha). 1999;45(3):97-9.
  32. 대한산부인과학회 부인종양위원회. 한국 부인암 등록 사업 조사 보고서 (2004.1.1-2004.12.31). 대한산부회지. 2007;50:28-78.
  33. 傳統文化硏究所 裵秉哲 譯. 今釋黃帝內經素問. 서울:成輔社. 1994:471-2.
  34. 張介賓 著 李泰均 編譯. 景岳全書 婦人規. 서울:법인문화사. 2004:251-64.
  35. 宋炳基. 韓方婦人科學. 서울:행림출판사. 1978:230-9.
  36. 許浚. 對譯 東醫寶鑑. 서울:법인문화사. 1999:370-4.
  37. 常敏毅編著. 抗癌本草. 湖南:湖南科學技術出版社. 1987:258-9.
  38. 조종관. 한방임상종양학. 대전:주민출판사. 2001;799-818.
  39. 하지영 등. 胡桃藥鍼液의 DNA chip을 이용한 유전자 발현 분석. 대한침구학회지. 2007;24(1):151-63.
  40. 이응경, 강성길, 고형균. 봉독약침액이 비만세포주의 CD/cytokine 유전자 발현에 미치는 영향. 대한침구학회지. 2003;20(5):50-62.
  41. 한상원 등. 녹용약침액의 DNA chip을 이용한 유전자 발현 분석. 대한침구학회지. 2003;20(6):34-44.
  42. Hong X et al. Gene expression profiling reveals novel targets of estramustine phosphate in prostate cancer cells. Cancer Lett. 2004;209(2):187-95. https://doi.org/10.1016/j.canlet.2004.02.008
  43. Kistler J et al. Structure and function of an acetylcholine receptor. Biophys. J. 1982;37(1):371-83. https://doi.org/10.1016/S0006-3495(82)84685-7
  44. Yiu G, Zhigang H. Glial inhibition of CNS axon regeneration. Nature Reviews Neuroscience. 2006;7:617-27. https://doi.org/10.1038/nrn1956
  45. Ridley A. Rho GTPases and actin dynamics in membrane protrusions and vesicle trafficking. Trends Cell Biol 2006;16(10):522-9. https://doi.org/10.1016/j.tcb.2006.08.006
  46. Thompson MD. and Monga S.P. WNT/beta-catenin signaling in liver health and disease. Hepatology. 2007; 45(5):1298-305. https://doi.org/10.1002/hep.21651
  47. Ramakers GJ. Rho proteins, mental retardation and the cellular basis of cognition. Trends Neurosci. 2002;25(4):191-9. https://doi.org/10.1016/S0166-2236(00)02118-4
  48. Rath PC, Aggarwal BB. TNF-induced signaling in apoptosis. J. Clin. Immunol. 2000;19(6):350-64. https://doi.org/10.1023/A:1020546615229
  49. Hemmings BA. Akt signaling: linking membrane events to life and death decisions. Science. 1997;275(5300):628-30. https://doi.org/10.1126/science.275.5300.628
  50. Ruscica M et al. Modulatory actions of neuropeptide Y on prostate cancer growth: role of MAP kinase/ERK 1/2 activation. Adv. Exp. Med. Biol. 2007;604:96-100. https://doi.org/10.1007/978-0-387-69116-9_7
  51. Chen CM et al. I-mf, a novel myogenic repressor, interacts with members of the MyoD family. Cell. 1996;86(5):731-41. https://doi.org/10.1016/S0092-8674(00)80148-8
  52. Hebenstreit D, Horejs-Hoeck J, Duschl A. JAK/STAT-dependent gene regulation by cytokines. Drug News Perspect. 2005;18(4):243-9. https://doi.org/10.1358/dnp.2005.18.4.908658