Comparison of Protein DNA, and RNA Contents in Corpus Luteum without and with Central Cavity in Dairy Cow

젖소의 난소 황체에 있어서 중심강의 유무에 따른 Protein, DNA, RNA 함량의 비교

  • ;
  • Y. S. Kim ;
  • C. N. Lee ;
  • ;
  • ;
  • ;
  • ;
  • Published : 2002.03.01

Abstract

This study was conducted to investigate total protein, DNA, and RNA content in corpus luteum(CL) without and with central cavity in dairy cow. Stage of the estrous cycle of corpus luteum from slaughterhouse(CL3, days 11 to 17) was classified by method of Ireland et. al.(1980). Corpus luteum was classified into corpus luteum without(less than 2mm in diameter) and with central cavity(more than 2mm in diameter) by method of Kastelic et. al.(1990). 1 In total protein content, CL with central cavity did not differ from CL without central cavity. 2. In DNA content, CL with central cavity was significantly lower than CL without central cavity(p<0.05). 3. In protein: DNA ratios, CL with central cavity was significantly lower than CL without central cavity(p<0.05). 4. But in RNA content, protein:RNA and RNA:DNA ratios, CL with central cavity did not differ from CL without central cavity.

젖소 난소 황체에 있어서 중심강의 유무에 따른 황체 조직 중의 total protein, DNA 및 RNA 함량을 조사하여 중심강이 있는 황체와 중심강이 없는 황체간의 기능성을 구명하고자 수행한 시험에서 다음과 같은 결과를 얻었다. 1. 중심강이 없는 황체의 total, supernatant 및 Pellt protein의 함량은 각각 32.83, 16.87 및 15.96 mg/g wet tissue이었고, 중심강이 있는 황체의 그것들은 각각 29.62, 16.10 및 13.52 mg/g wet tissue으로서 중심강이 없는 황체와 중심강이 있는 황체간에 유의적인 차이를 나타내지 않았다(p〉0.05). 2. DNA 함량은 중심강이 없는 황체가 1.99mg/g wet tissue이었고 중심 강이 있는 황체가 1.32mg/g wet tissue으로 중심강이 없는 황체와 있는 황체간에 유의적인 차이(p<0.05)를 나타내었다. Protein : DNA ratios에 있어서도 중심강이 없는 황체가 16.63mg/g wet tissue이었고 중심강이 있는 황체가 22.99mg/g wet tissue으로 중심강이 없는 황체와 중심강이 있는 황체간에 유의적인 차이(p<0.05)를 나타내었다. 3. 중심강이 없는 황체의 RNA함량, Protein: RNA 및 RNA:DNA ratios는 각각 2.87, 12.24및 1.43mg/g wet tissue이었고, 중심강이 있는 황체의 그것들은 각각 2.47, 13.73 및 1.89mg/g wet tissue으로서 중심강이 없는 황체와 중심강이 있는 황체간에 유의적인 차이를 나타내지 않았다(p〉0.05).

Keywords

References

  1. Arthur, G. H., Noakes, D. E. and Pearson, H. 1982. Veterinary reproduction and obstetrics. $Bailli{\`{e}}re$ Tindall. London
  2. Ceriotti, G. 1952. A microchemical determina-tion of deoxyribonucleic acid unit. J. Biol. Chem. 198 : 297-303
  3. Donaldson, L. E. and Hansel, W. 1968. Cystic corpora lutea and normal and cystic Graafian follicles in the cow. Aust. Vet. J., 44:304-308 https://doi.org/10.1111/j.1751-0813.1968.tb09104.x
  4. Homma, S. and Sugawa, Y. 1960. Study on the duration of liquid in the antrum of the corpus luteum and its influence on the ovarian cycle in the cow. Japan J. Anim. Reprod., 5:127-132 https://doi.org/10.1262/jrd1955.5.127
  5. Ireland, J. J., Murphee, R. L. and Coulson, P. B. 1980. Accuracy of predicting stages of bo-vine estrous cycle by gross appearance of the corpus luteum. J. Dairy Sci., 63: 155-160 https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(80)82901-8
  6. Kaneda, Y. and Matsuda, K. 1970. Treatment for the cystic corpus luteum and its influence on fertility in the dairy cow. Japan J. Anim. Reprod., 15(4) : 134-139
  7. Kaneda, Y. and Domeki, I. and Nakahara, T. 1980. Effects of removal cystic fluid from cy-stic corpus luteum on luteinization and conception rate in dairy heifers. Japan J. Anim. Re-prod., 26(1):37-42
  8. Kastelic, J. P., Pierson, R. A. and inther, O. J. G. 1990a. Ultrsonic morphology of corpora lu-tea and central luteal cavities during the estrous cycle and early pregnancy in heifers. Therio-genology, 34:487-498
  9. Kastelic, J. P., Bergfelt, D. R. and Ginther, O. J. 1990b. Relationship between ultrasonic assesment of the corpus luteum and plasma proge-sterone concentration in heifers. Theriogenology, 33:1269-1278
  10. Kito, S., Okuda, K., Miyazawa, K. and Sato, K. 1986. Study on the appearance of the cavity in the corpus luteum of cows by using ultra-sonic scanning. Theriogenology, 25:325-332 https://doi.org/10.1016/0093-691X(86)90068-3
  11. Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L. and Randall, R. J. 1951. Protein measurment with the folin phenol reagent. J. of Biol. Chem., 193:265-275
  12. Okuda, K. 1982. Morphologische und endokri-nologische untersuchungen am corpus luteum periodicum und graviditatis des rindes. Dissertation, University of Munich, pp.104-109
  13. Okuda, K., Kito, S., Sumi, N. and Sato, K. 1988. A study of the central cavity in the bovine corpus luteum. Vet. Rec., 123:180-183 https://doi.org/10.1136/vr.123.7.180
  14. Pierson R. A. and Ginther, O. J. 1988. Ultra-sonic imaging of the ovaries and uterus in cat-tle. Theriogenology, 29:21-37 https://doi.org/10.1016/0093-691X(88)90029-5
  15. Schmidt, G. and Thanhauser, S. J. 1945. J. Biol. Chem., 161:83
  16. Son, C. H, Schwarzenberger, F. and Arbeiter, K. 1995. Relationship between ultrasonogra-phic assessment of the corpus luteum area and milk progesterone concentration during the estrous cycle in cows. Reprod. Dam. Anim., 30:97-100
  17. Staples, R. E. and Hansel, W. 1961. Luteal fuc-tion and embryo survival in the bovine. J. Dai-ry Sci., 44:2040-2048
  18. 성환후,오성종,양보석,백광수,곽수동,정진관. 1994. 한우 난소의 중심강이 있는 황체의 출현과 기능에 관한 연구. 한국가축번식학회지, 18(4):245-250
  19. 손창호,강병규,최한선,오기석,강현구,김남기. 1995. 젖소에서 prostaglandin $F_{2}{\alpha}$ 또는 Fenprostalene 투여후 초음파 진단장치로 측정된 황체의 크기와 혈장 progesterone 농도와의 관계. 한국임상수의학회지, 12(2):174-185